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Artículo de método

Habilidades microquirúrgicas para establecer la canulación permanente de la vena yugular en ratas para el muestreo de sangre en serie del medicamento administrado por vía oral

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DOI:

10.3791/63167

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14 de diciembre de 2021

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En este artículo

Resumen

Se han demostrado técnicas microquirúrgicas detalladas para establecer un modelo de rata de canulación de vena yugular a largo plazo para la recolección secuencial de sangre en el mismo animal. Los parámetros fisiológicos y hematológicos han sido monitoreados durante la fase de recuperación de la rata. Este modelo se ha aplicado para estudiar la farmacocinética del polifenol administrado por vía oral sin inducir estrés animal.

Resumen

El muestreo de sangre en pequeños animales de laboratorio es necesario para la optimización del plomo farmacéutico, pero puede causar un gran daño y estrés a los animales de experimentación, lo que podría afectar los resultados. La canulación de la vena yugular (JVC) en ratas es un modelo ampliamente utilizado para la recolección repetida de sangre, pero requiere un entrenamiento adecuado de las habilidades quirúrgicas y el cuidado de los animales. Este artículo detalla los procedimientos microquirúrgicos para establecer y mantener un modelo permanente de rata JVC con un enfoque específico en la colocación y sellado de la cánula yugular. Se destacó la importancia de monitorear los parámetros fisiológicos (por ejemplo, peso corporal, ingesta de alimentos y agua) y hematológicos, con resultados presentados durante 6 días después de la cirugía durante la recuperación de la rata. El perfil fármaco-concentración plasmática-tiempo del ácido elágico fenol natural administrado por vía oral se determinó en el modelo de rata JVC.

Introducción

La adquisición repetida de muestras de sangre de pequeños animales de laboratorio, como roedores, cobayas y conejos, es un aspecto importante para la optimización del plomo farmacéutico y también para reducir el número de animales utilizados en la investigación 1,2. La cartera para desarrollar nuevas herramientas de diagnóstico y formulación de medicamentos (por ejemplo, vacunas) requiere acceso a diferentes volúmenes de sangre para evaluar su robustez y rendimiento in vivo, como la farmacocinética (PK), la toxicidad y la sensibilidad 3,4,5

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Protocolo

Los procedimientos que se describen a continuación se realizaron como parte de un protocolo aprobado por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales de la Universidad Politécnica del Noroeste (No. 202101117).

1. Preparación preoperatoria (el día antes de la cirugía)

NOTA: Soluciones requeridas: solución salina normal (cloruro de sodio al 0,9% p/v), solución salina heparinizada (1% p/v heparina sódica), solución de bloqueo del catéter, fármaco antiinflamatorio no esteroideo (AINE), como solución de meloxicam (2 mg/ml).

  1. Preparación de la solución
    1. Alícuota de 200 μL de sol....

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Resultados

Este protocolo ha demostrado a fondo cómo establecer un modelo JVC a largo plazo utilizando habilidades microquirúrgicas para la recolección de sangre en serie. La Figura 1A muestra los instrumentos y materiales quirúrgicos esenciales utilizados para llevar a cabo la cirugía. También se ilustra la especificación del catéter de PU con tres marcas azules, lo que es útil para guiar al investigador a colocar la cánula venosa en el paso 3.3., cómo usar las marcas en el catéter de PU para.......

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Discusión

Dominar la técnica de canulación de vasos requiere una práctica significativa y aprender la lección de cada operación. Christakis et al. utilizando el análisis de suma acumulativa (CUSUM), encontraron que un investigador necesita practicar 200 ratas durante un período de un año antes de estar listo para la evaluación pk de los candidatos a fármacos20. Sin embargo, el tiempo de operación requerido para la canulación de la vena puede reducirse significativamente por el número de ratas realizadas

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Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Este trabajo cuenta con el apoyo de la Fundación Nacional de Ciencias Naturales de China (No. 82003692) a R.X. Zhang; Beca Académica Superior en la Universidad Politécnica del Noroeste a R. Miao.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Tubo de ensayo de 0,5 mL que contiene anticoagulante EDTAXinkangN/ARecogida de muestras de sangre para pruebas de hematología
0,5*20 mm Jeringa de 1,0 mLKLMEDICALN/Alavado o sustitución del líquido por solución salina
0,6*28,5 mm Jeringa de 5,0 mLHDN/AInyección subcutánea
de 1,0 mL Jeringa de punta roma (22G)skillsmodelS4-PKT22GInyecte la solución salina y recoja muestras de sangre a través del catéter
1,5 mL tubo de microcentrífuga estérilAxygenMCT-150-C-SAlmacene la solución de bloqueo de catéter estéril solución salina heparinizada y meloxicam
1.5  mL tubos de microcentrífuga BiosharpBS-15-M extracción desangre
1/2  corte circular 5*12 mm aguja de suturaskillsmodeloS4-FHZEnhebrar la capa muscular para fijar el catéter
corte circular 3/8 7*17 mm aguja de suturahabilidadesmodeloS5-FHZSutura la incisión de la corteza de rata
6-0 estéril hilo de sutura de seda no absorbibleJUNSHENGN/A
75% de alcohol medicinalHONGSONGN/ADesinfección
Cintaadhesiva LIUTAIN/Aposicionamiento de la rata
Cinta de esterilización en autoclaveBiosharpBS-QT-028Marcar artículos esterilizados
Contador de células sanguíneas automatizadoSysmexXN-550 Prueba dehematología
Castroviejo micro tijerashabilidadesmodeloWA1010Cortar la abertura en el vaso sanguíneo
CentrífugaThermo Fisher Scientific75002402Preparación de plasma
Cojín limpioQingjieN/APreparar el área de operación
Bolasde algodón HCN/ADesinfección y esterilización de heridas
Bastoncillos de algodónBEITAGOGON/ADesinfección
HemostáticocurvoskillsmodelN/Aligadura
DN50 Restricción de ratas de acero inoxidableskillsmodelS4-RGDQ1Restrinja el movimiento de las ratas para facilitar la operación
Ácido elágicoAladdinE102710-25gfenol natural para administración oral
Pinzas semicurvadasskillsmodel53072Levante la capa muscular y el tejido, aísle la vena yugular y ate la sutura
Almohadilla térmicaWarm mateN/Aevitando la pérdida de calor de los animales
Heparina sódicaSolarbioH8060anticoagulante
YodoforoXidebaoN/ALimpiar la herida
Tijeras de irishabilidadesmodelo54002Bluent separación de la capa muscular
IsofluranoRWDR510-22-16anestesia
lámparaLEDEMPERORFEELN/Asugery
Cromatografía líquida-espectroscopia de masasThermo Fisher ScientificVQF01-20001/ TSQ02-10002detección de la concentración de fármaco en plasma
MeloxicamHongqiangN/AAnalgésico
Solución salina normalKLN/APrepare la solución y proteja los vasos sanguíneos de la desecación
Maquinilla de afeitar para mascotasCodos3180Afeitar el pelaje
Solución salina tamponada con fosfatoZHHCPW012Preparación de solución de ácido elágico
Catéter de PUskillsmodelRJVC-PUCanulación de la vena yugular Operación
animales pequeños consola de anestesiaRWD68620Estación de trabajo de operación
Botella de sprayOtroN/Aestación de trabajo aséptica
Tapón de acero inoxidable (22G)skillsmodelS4-PKD22GTapar el catéter para asegurar su sellado
Trochar de acero inoxidablehabilidadesmodeloS$-PKDGZGuía la exteriorización del catéter
Habilidades de solución de bloqueo estérilmodeloSK-FBbloquear el catéter para garantizar su esterilidad
Habilidades de aguja de alimentación rectamodeloN/ASondógama bucal
Bolsa quirúrgicaBKMAMN/AContenedor para la esterilización de instrumental quirúrgico
Tijeras quirúrgicashabilidadesmodeloJ21070Incisión de corte en piel
rata Dilatador de vasos fórceps equilibradohabilidadesmodeloWA3020Expanda el vaso sanguíneo y guíe la cánula para que se deslice en
ZS-MV Máquina de anestesia para animales pequeñosZSLab1057003inducir y mantener la anestesia
de de

Referencias

  1. Parasuraman, S., Raveendran, R., Kesavan, R. Blood sample collection in small laboratory animals. Journal of Pharmacology and Pharmacotherapeutics. 1 (2), 87-93 (2010).
  2. Sadler, A. M., Bailey, S. J. Validation of a refined techni....

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