El Sistema de Secreción Tipo VI (T6SS) es un mecanismo crucial que media las interacciones intercelulares en bacterias Gram-negativas, particularmente en especies patógenas como Acinetobacter baumannii. Estudios previos han demostrado que el plásmido grande pAB3 en la cepa ATCC 17978 de A. baumannii codifica una proteína similar a TetR que inhibe la expresión de los genes T6SS centrales. Por el contrario, la cepa WTR- , que carece de pAB3, puede expresar y secretar de manera estable la proteína efectora T6SS Hcp y exhibe la capacidad de matar E. coli. El gen tssM , uno de los genes centrales de T6SS, es esencial para su actividad; su eliminación conduce directamente a la inactivación de T6SS. Sin embargo, los métodos tradicionales de detección de actividad T6SS, como los ensayos de eliminación, adolecen de un bajo rendimiento y una sensibilidad insuficiente. Para abordar estas limitaciones, hemos desarrollado métodos de detección cuantitativa basados en el marcaje fluorescente.
Para mejorar la detección de la actividad de T6SS, desarrollamos tres métodos de marcaje fluorescente: (1) Un método de detección cuantitativo basado en el marcaje con luciferasa, que se caracteriza por su alta especificidad, sensibilidad y reproducibilidad, lo que lo hace adecuado para el análisis de alto rendimiento; (2) Un método de detección basado en el marcaje de proteínas fluorescentes verdes (GFP), que, a pesar de ser susceptible a las interferencias ambientales, ofrece la ventaja de un alto rendimiento; (3) Detección por citometría de flujo, que puede evaluar cuantitativamente la viabilidad bacteriana pero es operativamente compleja y costosa. Después de una comparación exhaustiva, el método de etiquetado basado en luciferasa demostró ser el más preciso, sensible y fácil de usar. Cuando se aplicó a 20 aislados clínicos de A. baumannii, se confirmó que este método evaluó de manera rápida y precisa la actividad de T6SS.