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Implantación de un dispositivo de telemetría inalámbrico en un modelo ovino de Fontan para la monitorización hemodinámica continua y a largo plazo

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DOI:

10.3791/68068

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2 de mayo de 2025

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1Center for Regenerative Medicine, Abigail Wexner Research Institute at Nationwide Children's Hospital, 2Department of Surgery, The Ohio State University Wexner Medical Center, 3Biomedical Sciences Graduate Program, The Ohio State University College of Medicine, 4Department of Pediatric Cardiology, Nationwide Children's Hospital, 5Department of Pediatric Surgery, Nationwide Children's Hospital

En este artículo

Resumen

Este protocolo describe la metodología quirúrgica para implantar un dispositivo de telemetría inalámbrico para animales grandes que permita la recopilación continua y a largo plazo de datos hemodinámicos, incluida la frecuencia cardíaca, la presión arterial, las presiones de la vena cava inferior y superior y el ritmo cardíaco.

Resumen

Si bien el procedimiento de Fontan mejora drásticamente la esperanza de vida de los pacientes con ventrículo único, es bien sabido que la circulación resultante causa una carga significativa de enfermedad a largo plazo como consecuencia de presiones venosas centrales crónicamente elevadas y disminución del gasto cardíaco. Los modelos animales crónicos de Fontan son un activo valioso para estudiar los resultados fisiológicos tardíos asociados con esta operación y una herramienta necesaria en la evaluación de futuros dispositivos diseñados para aliviar el fracaso de Fontan. Sin embargo, los intentos anteriores de crear modelos de Fontan crónico se han visto obstaculizados por las bajas tasas de supervivencia. Además, la recopilación eficaz de datos hemodinámicos plantea un desafío significativo en los animales que se mueven libremente. Con este fin, el uso de sistemas de telemetría inalámbricos implantables proporciona una solución novedosa para la monitorización en tiempo real y a largo plazo de los datos cardiovasculares. Este protocolo describe la metodología para la implantación quirúrgica de un dispositivo de telemetría inalámbrico en un modelo ovino de supervivencia de Fontan, facilitando el registro continuo y continuo de varios parámetros hemodinámicos, incluyendo la frecuencia cardíaca, la presión arterial y las presiones localizadas en la vena cava inferior (IVC) y superior (VCS). Se implantaron dispositivos de telemetría con canulación de la arteria carótida y la vena yugular interna o de la arteria y la vena femoral, para la colocación de catéteres sensores de presión en la aorta ascendente y la VCS o la aorta abdominal y la VCI, respectivamente. El uso de los sistemas de telemetría inalámbricos permitió una estrecha monitorización postoperatoria después de una operación de Fontan de una sola etapa, lo que contribuyó a mejorar el bienestar y la supervivencia de los animales.

Introducción

El desarrollo del procedimiento de Fontan en 1971 condujo a mejoras significativas en los resultados para los pacientes con ventrículo único1. El propósito de esta operación es separar el retorno venoso sistémico y pulmonar al corazón, aumentando así la oxigenación sistémica y aliviando la carga de volumen en el ventrículo sistémico. Desde su introducción, se han realizado numerosas modificaciones en el abordaje quirúrgico. En la actualidad, la derivación total del corazón derecho se logra con mayor frecuencia a través de la reconstrucción por etapas 2,3. Por lo general, la primera etapa se realiza durante la primera semana de vida4. A continuación, los pacientes se someten a una segunda etapa, que consiste en el procedimiento de Glenn o hemi-Fontan, para redirigir el flujo sanguíneo desde la vena cava superior (VCS) a la arteria pulmonar (AP)5. A esto le sigue el procedimiento de Fontan, que implica la creación de un conducto extracardíaco o túnel lateral entre la vena cava inferior (VCI) y la PA6. Avances quirúrgicos como los realizados a lo largo de la historia del procedimiento de Fontán no podrían haberse logrado sin el uso de modelos animales7.

Si bien el procedimiento de Fontan mejora drásticamente la esperanza de vida de los pacientes con ventrículo único, es bien sabido que la circulación resultante, que funciona sin una bomba subpulmonar, causa una carga significativa de enfermedad a largo plazo como consecuencia de presiones venosas centrales (CVP) crónicamente elevadas y disminución del gasto cardíaco 8,9,10,11,12 . Los modelos animales crónicos de Fontan son un activo valioso para el estudio de los resultados fisiológicos tardíos asociados con esta operación13. La recopilación activa de datos de parámetros cardiovasculares, como CVP, frecuencia cardíaca y otros signos vitales, para capturar los cambios hemodinámicos postoperatorios es esencial para una evaluación integral de la fisiopatología en desarrollo. Además, los modelos animales son una herramienta necesaria para probar la capacidad de nuevos dispositivos de asistencia ventricular diseñados para aliviar las deficiencias hemodinámicas de la circulación de Fontan in vivo 14,15,16,17,18,19.

Sin embargo, la recopilación eficaz de datos plantea un reto importante. Las técnicas invasivas basadas en catéteres están limitadas por su naturaleza transitoria, los riesgos asociados al procedimiento y la incapacidad de monitorear la condición del animal durante períodos prolongados. Por otra parte, los intentos previos de crear un modelo de Fontán de animales grandes se han visto obstaculizados por las bajas tasas de supervivencia, presumiblemente debido a la incapacidad de los corazones normales para adaptarse al establecimiento agudo de la circulación de Fontán 7,20. Con este fin, el uso de sistemas de telemetría inalámbricos proporciona una solución novedosa para la recopilación de datos cardiovasculares en tiempo real y a largo plazo en animales que se mueven libremente21,22. Estos dispositivos también pueden permitir un seguimiento postoperatorio estrecho, lo que podría conducir a una mejora del bienestar y la supervivencia de los animales.

En este trabajo se describe la metodología para la implantación y el uso exitoso de un sistema de telemetría inalámbrico23 en un modelo de ovino Fontan crónico. Esta técnica proporcionó un medio robusto y fiable para la recopilación continua de datos hemodinámicos, lo que permitió el estudio de las presiones venosas y otros parámetros fisiológicos clave. La implementación de esta tecnología en modelos preclínicos es fundamental para avanzar en nuestra comprensión de la fisiología de Fontan y el desarrollo de nuevas estrategias terapéuticas destinadas a mejorar los resultados a largo plazo de los pacientes con Fontan.

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Protocolo

Este protocolo experimental fue aprobado por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales del Instituto de Investigación Abigail Wexner del Hospital Nacional de Niños (AR20-00121). Todos los procedimientos se adhirieron a las pautas descritas en la Guía para el uso y cuidado de animales de laboratorio de los Institutos Nacionales de Salud. Esta investigación siguió las directrices de Animal Research: Reporting of In Vivo Experiments. Las ovejas Dorset, con un rango de peso de 23 a 38 kg y un rango de edad de 2 a 12 meses, se alojaron en un entorno específico libre de patógenos con libre acceso a alimentos y agua durante al menos 1 semana antes de la cirugía. Los equipos y reactivos utilizados en el estudio se enumeran en la Tabla de Materiales.

1. Preparación animal

  1. Haga que las ovejas se sometan a una evaluación por parte del equipo veterinario 1 semana antes de la cirugía para asegurarse de que puedan someterse a la anestesia de manera segura. Ayuna ovejas sanas y priva de agua durante 12 h antes del procedimiento quirúrgico.
  2. Sedado con una combinación de ketamina (4 mg/kg) y diazepam (0,5 mg/kg) inyectado a través de una vena yugular interna (IJ).
  3. Afeitar las ovejas de acuerdo con el procedimiento planificado (detallado a continuación) y sobre el muslo para la colocación de la almohadilla de conexión a tierra de electrocauterización. Limpie los sitios quirúrgicos con alcohol.
  4. Inserte un tubo endotraqueal de un solo lumen de 8-9 mm en la tráquea.
  5. Insertar una sonda orogástrica para la descompresión del estómago y el rumen.
  6. Inserte un catéter venoso de un solo lumen (16-18 G) en la vena yugular derecha o en una vena safena lateral para la administración continua de líquidos, la infusión de propofol a tasa continua (IRC) y la inyección de fármaco, según sea necesario.
  7. Colocar una vía arterial (22-24 G) en una arteria auricular para un control continuo de la presión arterial.
  8. Coloque un manguito de presión arterial en la extremidad delantera derecha para medir la presión arterial de manera no invasiva, una pinza en la oreja o la lengua para monitorear la saturación de oxígeno y electrocardiograma (ECG) en las cuatro extremidades.
  9. Durante el procedimiento, mantener la anestesia con isoflurano inhalado al 1%-3% con O2 al 100% y/o propofol CRI (20-45 mg/kg/h).
  10. Limpie asépticamente los sitios quirúrgicos con una preparación a base de clorhexidina y cúbralos de la manera estéril estándar.
  11. Administrar cefazolina (25 mg/kg) para la profilaxis antibiótica antes de la incisión y readministrar cada 4 h durante la operación según sea necesario.
  12. Administrar una inyección subcutánea de anestésico local, como bupivacaína al 0,25%, en todos los sitios de incisión planificados antes de la incisión.

2. Preparación del dispositivo de telemetría

  1. Abra el programa de software de telemetría y encienda el dispositivo de telemetría con el interruptor magnético mientras aún está sellado en su empaque original.
  2. Dentro del programa de software, haga clic en Hardware ubicado en la barra superior y seleccione Editar configuración de PhysioTel Digital (CLC) para asignar la unidad de telemetría a un controlador de enlace de comunicación (CLC).
  3. Una vez que se selecciona un CLC, se abrirá la página Detalles del CLC . Dentro de esta página, haga clic en Buscar implantes, lo que iniciará una búsqueda de dispositivos de implantes que estén encendidos cerca.
  4. Haga clic en Agregar para agregar la unidad de telemetría a la lista Implantes seleccionados . El dispositivo aparecerá ahora en la lista de implantes configurados en la página Detalles de CLC . Haga clic en Guardar y salir.
  5. Inicie la adquisición de datos pulsando el botón Reproducir junto al nombre de la unidad de telemetría en la pestaña Control de muestreo . El gráfico que muestra la adquisición de datos en vivo se abrirá automáticamente.
  6. Retire el dispositivo de su embalaje exterior y transfiéralo a su embalaje interior estéril en la mesa de operaciones.
  7. Ponga a cero el dispositivo mientras permanezca en su embalaje interior. Espere hasta que las mediciones del dispositivo hayan sido estables durante 30 s y utilice los valores de presión media no pulsátil estabilizada (NPMN) como compensación.
  8. Dentro de Configuración del sujeto, seleccione el icono de configuración junto al parámetro que se está poniendo a cero y abra la pestaña Desplazamientos . Introduzca el valor de desplazamiento obtenido de las mediciones NPMN en el cuadro de texto.
  9. Después de ingresar la compensación, verifique si las lecturas de NPMN son de 0 ± 0,1 mmHg. De lo contrario, repita el paso 2.7 hasta que los valores estén dentro del rango deseado.
  10. Realice los pasos 2.7-2.9 para ambos canales de presión.
  11. Antes de insertar los catéteres sensores de presión en un vaso sanguíneo, golpee la punta para identificar su canal correspondiente. Las pulsaciones se harán evidentes en la salida de la forma de onda.
  12. Utilice el catéter correspondiente al canal de presión ventricular izquierda (LVP) para la medición de la presión arterial y el canal de presión arterial (PA) para la medición de la presión venosa.
  13. En la pestaña Atributos estándar del cuadro de diálogo Atributos de análisis de presión arterial , establezca la altura mínima del pulso en 1 mmHg para el canal de PA.

3. Método 1: Canulación de arterias y venas femorales

  1. Afeita la oveja en un perímetro amplio alrededor de la ingle derecha y sobre el abdomen y el pecho.
  2. Coloque a la oveja en decúbito supino sobre la mesa de operaciones con las extremidades delanteras aseguradas en flexión con un cinturón de tela flexible y las extremidades traseras aseguradas en extensión con un lazo de nudo corredizo para permitir el acceso a la ingle (Figura 1A).
  3. Realizar una incisión transversal de 5 cm en la región inguinal derecha centrada sobre la arteria femoral palpable, aproximadamente 1 cm por debajo del pliegue inguinal.
  4. Usando una combinación de electrocauterización y disección roma, diseccione a través del tejido subcutáneo hasta el triángulo femoral. Localice los vasos femorales palpando el pulso arterial.
  5. Divida entre el músculo sartorio y el músculo aductor largo a lo largo de la dirección de las fibras musculares para exponer los vasos femorales (Figura 1B).
  6. Usando una combinación de disección roma y afilada, limpie el tejido conectivo de los vasos femorales circunferencialmente.
  7. Pase una brida de seda 2-0 de doble bucle alrededor de ambos vasos proximal y distal hasta el sitio de canulación para la ligadura temporal de los vasos.
  8. Realizar una incisión transversal de 6 cm a través de la piel en la parte inferior derecha del abdomen, aproximadamente 3 cm por encima del pliegue inguinal.
  9. Usando una combinación de electrocauterización y disección roma, diseccione a través de la grasa subcutánea y el tejido conectivo para crear una bolsa de 6 cm x 4 cm superficial al oblicuo externo.
  10. Inserte el dispositivo de telemetría en el bolsillo subcutáneo y asegúrelo en su lugar con una sutura de seda 2-0 (Figura 1C).
  11. Tunelice la antena del dispositivo de telemetría debajo del tejido subcutáneo y asegúrela en su lugar con una sutura de seda 2-0.
  12. Para la colocación de las derivaciones de biopotencial (ECG), realice contraincisiones de 1 cm en la piel sobre la parte media e inferior del abdomen, así como en la parte inferior y superior del tórax. Túnel subcutáneo para conectar estas incisiones al bolsillo del cuerpo del dispositivo y guiar las derivaciones del ECG hasta la ubicación deseada.
  13. Coloque el electrodo positivo en el tejido subcutáneo a la izquierda del esternón inferior. Asegúrese de quitar el tubo de silicona para revelar la punta del cable de acero que se encuentra debajo.
  14. Coloque el electrodo negativo en el tejido subcutáneo a la derecha del esternón superior.
  15. El cableado excesivo para ambos cables se puede enrollar y asegurar en la ubicación subcutánea con una sutura de seda 2-0.
  16. Cree un túnel subcutáneo desde el bolsillo del dispositivo abdominal inferior hasta la incisión inguinal y pase los dos catéteres de presión.
  17. Coloque una sutura de cuerda de bolso con una sutura de polipropileno 6-0 alrededor del sitio de canulación de la arteria y la vena femoral, que se puede asegurar con un torniquete de plástico.
  18. Llene las puntas de gel del catéter con gel no compresible de alta viscosidad para evitar la coagulación dentro de las puntas del catéter, asegurándose de que no haya burbujas de aire.
  19. Administrar una dosis de heparina intravenosa (100 unidades/kg) 3 min antes de la canulación.
  20. Apriete los torniquetes de seda 2-0 proximales y distales alrededor de la arteria femoral. Haga una incisión cuidadosa en el vaso en el centro de la puntada de la bolsa con un bisturí de hoja # 11 y dilate ligeramente con la punta de un hemostático curvo.
  21. Insertar el catéter de presión correspondiente al canal LVP y avanzarlo hacia la aorta abdominal, aflojando el torniquete de seda proximal para permitir el paso del catéter. Apriete la sutura del cordón de la bolsa y átela alrededor del catéter.
  22. Repetir los pasos 3.20 y 3.21 para la canulación de la vena femoral utilizando el catéter de presión correspondiente al canal de PA y avanzarlo hasta la VCI abdominal (Figura 1D).
  23. Confirme que las puntas de los catéteres estén ubicadas correctamente en la VCI y la aorta mediante fluoroscopia.
  24. Reaproxima el músculo sartorio con una sutura reabsorbible 2-0.
  25. Cierre la piel con suturas dérmicas y subcuticulares profundas utilizando suturas absorbibles 3-0 y 4-0, respectivamente.

4. Método 2: Canulación de la arteria carótida y de la vena yugular interna

  1. Afeita la oveja en un perímetro amplio alrededor del cuello izquierdo y hacia abajo sobre el pecho.
  2. Coloque las ovejas en decúbito lateral derecho en la mesa de operaciones con la extremidad delantera izquierda asegurada en flexión usando una brida de nudo corredizo para exponer el pecho (Figura 2A).
  3. Realizar una incisión cutánea longitudinal de 5 cm por encima de la arteria carótida izquierda y la vena IJ, aproximadamente 7 cm craneales hasta la entrada torácica.
  4. Mediante electrocauterización, diseccione a través de la grasa subcutánea, el tejido conectivo y el platisma para exponer los vasos del cuello (Figura 2B).
  5. Usando una combinación de disección roma y afilada, limpie el tejido conectivo de la arteria carótida izquierda y la vena IJ circunferencialmente.
  6. Pase una brida de seda 2-0 de doble bucle alrededor de ambos vasos proximal y distal hasta el sitio de canulación para la ligadura temporal de los vasos.
  7. Realiza una incisión longitudinal de 6 cm en la base del cuello izquierdo entre la escápula y la columna cervical.
  8. Usando una combinación de electrocauterización y disección roma, diseccione a través de la grasa subcutánea y el tejido conectivo para crear un bolsillo de 6 cm x 4 cm que se extiende hacia la columna vertebral.
  9. Inserte el dispositivo de telemetría en el bolsillo subcutáneo y asegúrelo en su lugar con una sutura de seda 2-0.
  10. Tunelice la antena del dispositivo de telemetría debajo del tejido subcutáneo y asegúrela en su lugar con una sutura de seda 2-0.
  11. Realizar incisiones cutáneas de 1 cm en la base del cuello, así como en la parte inferior izquierda y superior derecha del pecho, para la colocación de las derivaciones del ECG. Túnel subcutáneo para conectar estas incisiones al bolsillo del cuerpo del dispositivo y guiar las derivaciones del ECG hasta la ubicación deseada (Figura 2C).
  12. Coloque los cables de ECG de manera similar a los pasos descritos anteriormente para el procedimiento de implante femoral (sección 3).
  13. Cree un túnel subcutáneo desde el bolsillo lateral del dispositivo hasta la incisión medial del cuello y pase los dos catéteres de presión. Prepare estos catéteres de presión con gel antes de la canulación, como se detalla en el procedimiento de implante femoral.
  14. Con una sutura de polipropileno 6-0, coloque una sutura de cuerda alrededor del sitio de la canulación en ambos vasos y asegúrela con un torniquete de plástico.
  15. Administrar una dosis de heparina intravenosa (100 unidades/kg) 3 min antes de la canulación.
  16. Apriete los torniquetes de seda 2-0 proximales y distales alrededor de la arteria carótida. Haga una incisión cuidadosa en el vaso en el centro de la puntada de la bolsa con un bisturí de hoja # 11 y dilate ligeramente con la punta de un hemostático curvo.
  17. Insertar el catéter de presión correspondiente al canal LVP y avanzarlo hacia la aorta ascendente torácica, aflojando el torniquete de seda proximal para permitir el paso del catéter. Apriete la sutura del cordón de la bolsa y átela alrededor del catéter.
  18. Repetir los pasos 4.16 y 4.17 para la canulación de la vena IJ izquierda utilizando el catéter de presión correspondiente al canal de PA y avanzarlo hacia la VCS torácica.
  19. Confirmar la ubicación adecuada de las puntas de los catéteres en la VCS torácica y en la aorta ascendente mediante fluoroscopia (Figura 2D).
  20. Reaproximar el músculo platisma utilizando una sutura reabsorbible 2-0.
  21. Cierre la piel con suturas dérmicas y subcuticulares profundas utilizando suturas absorbibles 3-0 y 4-0, respectivamente.

5. Recuperación

  1. Suspenda los anestésicos. Retire la sonda orogástrica y extube cuando la oveja esté respirando sin la ayuda del ventilador. Esto suele ocurrir después de que la oveja muestra signos de excitación (movimiento, parpadeo, respuesta a estímulos dolorosos, tono de la mandíbula, masticación).
  2. Retire la línea arterial.
    NOTA: El dispositivo de telemetría puede proporcionar un control continuo de la presión arterial si se ha colocado uno de sus catéteres de presión en la aorta.
  3. Transfiera las ovejas a una unidad de alojamiento aislada para su recuperación. Ayude a las ovejas a permanecer en decúbito esternal y luego, finalmente, a ponerse de pie.
  4. Administrar banamina intravenosa (2,2 mg/kg) y buprenorfina subcutánea SR (0,03 mg/kg) para el dolor postoperatorio.

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Resultados

Resultados quirúrgicos
Un total de 13 ovejas se sometieron a cirugía de Fontan en una sola etapa que implicó conexión cavopulmonar total con desprendimiento de la VCS y la VCI de la aurícula derecha, anastomosis directa de extremo a lado de la VCS a la AP y la colocación de un conducto extracardíaco entre la VCI y la AP. Las ovejas se sometieron a este procedimiento a una edad media de 13,3 ± 7,6 meses. De estas, 3 ovejas se sometieron a la implantación de un disposit...

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Discusión

Hemos desarrollado dos métodos quirúrgicos para la implantación de un dispositivo de telemetría inalámbrico en un modelo ovino. El dispositivo se implantó con éxito en 5 ovejas para lograr un monitoreo y registro continuos y a largo plazo de varios parámetros cardiovasculares, incluida la frecuencia cardíaca, la presión arterial y las presiones venosas localizadas de la VCI abdominal y la VCS torácica. Todas las ovejas sobrevivieron a la cirugía para la implantación del dispositivo sin m...

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Divulgaciones

Este proyecto fue financiado por Additional Ventures Cures Collaborative, Palo Alto, California.

Agradecimientos

Agradecemos al dedicado personal veterinario del Centro de Investigación Animal. También deseamos expresar nuestro agradecimiento a Mary Walker, DVM, MS, por su invaluable experiencia y atención vigilante durante todo el estudio.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Solución de cloruro de sodio al 0,9%Corporación de Salud BaxterFarmaciaReanimación intraoperatoria de líquido y enjuague de heridas
16 G de catéter intravenosoBD382259Para la administración de líquidos y medicamentos
22 G de catéter intravascularBD381423Para arterial y nbsp; Monitorización de la presión arterial
Alcohol isopropílico al 70%Aspen Vet11795782Solución de limpieza tópica
Cartucho ACTAbbot Diagnostics03P86-25Tiempo de coagulación activado
Abrazadera para toalla BackhausMedlineMDS1411111Para fijar el drapeado estéril 
BanaminaHospira PharmaceuticalsFarmaciaControl del dolor postoperatorio: concentración 50 mg/mL, dosis 2,2 mg/kg
Manguito de presión arterialRoyal Philips9.89803E+11Monitorización no invasiva de la presión arterial
Bupivacaína clorhidratoHospira PharmaceuticalsFarmaciaAnestésico local: concentración 2,5 mg/mL, dosis 2,5 mg/kg
BuprenorfinaHospira PharmaceuticalsFarmaciaControl del dolor postoperatorio: concentración 0,3 mg/mL, dosis 0,03 mg/kg
Portaagujas CastroviejoMedlineMDS0750386Soporte para agujas al suturar vasos sanguíneos
Almohadilla limpiadora de cautéreosCardinal Health300-2SSPara limpiar cautery, punta de lápiz
Lápiz de cauteryMedlineESRK3002LPara disección mediante electrocauterización
CefazolinaHospira PharmaceuticalsFarmaciaProfilaxis antibiótica
CetacaínaCetilita220Spray anestésico tópico para intubación
ChloraprepBD930825Antiséptico tópico
Fórceps atraumáticos debaqueMedlineMDS1130630FPara manipulación de tejidos
DiazepamHospira PharmaceuticalsFarmaciaSedante: concentración 5 mg/mL, dosis 0,5 mg/kg
Derivaciones de ECG3M2570Monitorización por ECG
Trompa endotraqueal, tamaño 8-9Covidien86452, 86114 o 86454Para asegurar las vías aéreas
Pinzas hemostáticas de HartmannMedlineMDS1221109Para pinzar vasos sanguíneos y sujetar pequeñas suturas
HeparinaHospira PharmaceuticalsFarmaciaAnticoagulante: 1.000 unidades USP/mL
Kit de transductor de presiónEdwards Ciencias de la VidaVSYPX12NPara arterial y nbsp; Monitorización de la presión arterial
Clip lingual para pulsioxímetroNellcorPO736Para la oximetría de pulso
IsofluranoCorporación de Salud BaxterFarmaciaAnestésico: dosis 1-3%
Pinza Kantrowitz (ángulo recto)MedlineMDS1243528Para disección roma alrededor de vasos sanguíneos
KetaminaHospira PharmaceuticalsFarmaciaSedante: concentración 100 mg/mL, dosis 4 mg/kg
Drapeado de laparotomíaMedlineDYNJP3008Drapeado estéril
Gelatina lubricanteMedlineMDS0322273ZLubricante para tubo endotraqueal
Portaagujas Mayo HegarMedlineMDS2418420FSoporte para agujas al suturar tejidos blandos
Tijeras MayoMedlineMDS0816121Para cortar sutura
Tijeras curvas MetzenbaumMedlineMDS3223226Para disección aguda
Agujas y jeringuillasCardinal Health309604Para la administración de medicamentos intravenosos y subcutáneos  
OptixcareAventixOPX-4252Lubricante córneal
Sutura de seda permanente de manoEthiconC016DPara la ligadura de vasos sanguíneos y la inserción subcutánea del dispositivo de telemetría
Dispositivo digital de telemetría inalámbrica PhysioTelCiencias de Datos InternacionalModelo L21Implante de dispositivo de telemetría inalámbrica
Microfórceps de PierceMedlineMDG384908Manejo de agujas pequeñas y pizca de manos pequeños;
Torniquete de plástico y caja de suturaMedtronic 79013Para facilitar la hemostasia durante la canulación de vasos
Bolsa de presiónCarefusion64-10029Para el control de la presión arterial
Sutura Prolene 6-0Ethicon8307HPuntada de cordón para canulación de vasos
PropofolFresenius KabiFarmaciaAnestésico: concentración 10 mg/mL, dosis 20-45 mg/kg/h
Bisturí #10MedlineMDS15310Para incisiones en la piel
Bisturí #11MedlineCISION11CSPara la incisión en los vasos sanguíneos
Pinzas de amígdalas SchnidtMedlineMDS5018719Para disección contundente a través de tejido subcutáneo
Camilla SoftCarryCuatro banderas sobre AspenSSTR-4Para el transporte de animales
Toalla estéril desechable para quirófanoMedlineMDT2168201Drapeado estéril
Cuenco estérilLSL Industries5232Para retener solución salina
Esponja de gasa de algodón estéril detectable por rayos XMedlineNON21430LFAbsorción de fluidos
Trompa orogástricaJorgensen Lab, Inc.J0348RPara la descompresión del estómago y el rumen
Puerto en TMedlineDYNDTN0001Conector de tubo de catéter intravenoso
Bolsa de drenaje de orinaCovidien3512Se conecta a un tubo orogástrico para recoger los líquidos gástricos
Trocar veterinario con estileteBraintree Scientific, Inc.TRO-STY 7B-12Guiar los cables de telemetría a través del tejido subcutáneo
Sutura Vicryl 2-0EthiconVCPB269HCierre de tejidos blandos subcutáneos
Sutura Vicryl 3-0EthiconVCPB416HCierre de la capa dérmica profunda
Sutura Vicryl 4-0EthiconJ494HMás cerca de la capa subcuticular
Manta térmicaJorgensen Lab, Inc.J1034BPara mantener la temperatura corporal del animal
Separador WeitlanderTeleflex Medical165358Para retracción de heridas
Succión de punta de bulbo YankauerMedlineDYND50138Gestión de residuos estériles

Referencias

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