Un método quirúrgico para la intervención de la estructura subvalvular mediante un enfoque transaórtico en cerdos Bama normales

Summary

Este estudio presenta un método quirúrgico para la intervención de la estructura de la válvula aórtica subvalvular utilizando el corte de tejido dirigido mediante un enfoque transaórtico en cerdos Bama normales.

Abstract

Las anomalías de la estructura subvalvular que conducen a alteraciones del tracto de salida del ventriculo izquierdo (LVOT) y a la hipertrofia miocárdica son características anatómicas de enfermedades estructurales del corazón, como la miocardiopatía hipertrófica (HCM). Este estudio establece un método quirúrgico para la intervención de la estructura subvalvular aórtica mediante un enfoque transaórtico en cerdos Bama normales. Los animales se obtuvieron de un proveedor certificado de cerdos experimentales en Pekín (Licencia nº SCXK (Jing) 2018-0008). Este método fue validado en tres cerdas miniatura Bama sanas de aproximadamente 33-35 semanas, que pesaban entre 30 y 35 kg en el momento de la cirugía. El procedimiento implica una esternotomía mediana y una incisión en la pared aórtica anterior, realizada bajo soporte de bypass cardiopulmonar (CPB), paro cardíaco hipotermio y visualización directa de las regiones LVOT y subvalvular. Se utilizan la tracción tejidual, localización y corte dirigidos para remodelar la estructura subvalvular.

El proceso quirúrgico completo incluye inducción por anestesia, colocación de un catéter venoso central y un catéter urinario, desinfección y colocación del sitio quirúrgico, esternotomía mediana, incisión pericárdica y movilización cardíaca. La CPB se establece mediante drenaje auricular izquierdo y perfusión retrógrada del seno coronario. Tras una incisión en la pared aórtica anterior, se accede al ventrículo izquierdo a través de la válvula aórtica y se realiza una intervención en tejido subvalvular en caso de paro cardíaco. El procedimiento concluye con cierre aórtico, reanudación cardíaca del latido, retirada de la CPB y cierre torácico. Durante todo el procedimiento se mantuvo la estabilidad hemodinámica y el animal permaneció en buen estado sin mortalidad intraoperatoria. Tras la cirugía, las superficies cortadas quedaron lisas y las estructuras circundantes permanecieron intactas.

Este método demuestra una alta reproducibilidad y controlabilidad procedimental, proporcionando un modelo de intervención quirúrgica estable para estudiar la intervención en estructuras subvalvulares. También ofrece una plataforma técnica para realizar análisis histológicos, validación quirúrgica y evaluación de estrategias de intervención.

Introduction

Las anomalías en las estructuras subvalvulares del ventrículo izquierdo desempeñan un papel crucial en diversas enfermedades cardiovasculares, especialmente en pacientes con miocardiopatía hipertrófica (HCM), donde las anomalías subvalvulares contribuyen a la obstrucción del tracto de salida ventricular izquierdo (TOV) y a la hipertrofia interventricular^{del tabique 1}. Estos cambios estructurales no solo afectan el empaste y la eyección ventricular, sino que también pueden provocar complicaciones graves como arritmias ventriculares, muerte súbita cardíaca e insuficiencia cardíaca^{crónica 2}. Clínicamente, la resección quirúrgica transaórtica de tejidos ventriculares izquierdos se emplea a menudo en estos pacientes para aliviar la obstrucción de la LVOT y mejorar el^{pronóstico 3}. Sin embargo, solo unos pocos estudios han investigado sistemáticamente los cambios fisiológicos y los procesos de remodelación ventricular tras esta intervención quirúrgica, limitando su aplicación en la investigación básica y el desarrollo terapéutico traslacional.

Se han utilizado ampliamente diversos modelos animales para estudiar los cambios estructurales subvalvulares y las estrategias de intervención. Estos modelos han contribuido significativamente a comprender los mecanismos moleculares y a nivel tisular; sin embargo, muestran limitaciones notables en la simulación de procedimientos quirúrgicos cardíacos clínicos, especialmente para lograr una exposición precisa y un corte tejidal dirigido del ventrículo izquierdo. Problemas como distorsión anatómica, precisión quirúrgica insuficiente y muestreo de tejido limitado siguen^siendo 4,5,6,7. Estas deficiencias dificultan la aplicación más amplia de estos modelos en la investigación sobre mecanismos de intervención quirúrgica, intervención estructural postoperatoria y evaluación de biomateriales.

En los últimos años, los modelos animales que simulan la intervención de la estructura subvalvular del ventrículo izquierdo mediante un enfoque transaórtico han permanecido extremadamente limitados. Los estudios existentes se limitan principalmente a modificaciones de técnicas quirúrgicas actuales, intentando intervenir en estructuras localizadas del tejido ventricular mediante vías mínimamente invasivas o métodos basados en energía. Sin embargo, estos enfoques difieren significativamente de las prácticas quirúrgicas clínicas en cuanto a vías quirúrgicas, condiciones cardíacas intraoperatorias y estrategias de intervención tisular, lo que dificulta reproducir con precisión las respuestas estructurales, hemodinámicas, de reperfusión y de estrés mecánico inducidas por intervenciones^{quirúrgicas 8,9}. Por ello, en este estudio, establecimos un modelo quirúrgico reproducible en animales grandes realizando una esternotomía mediana y una incisión en la pared aórtica anterior bajo soporte de bypass cardiopulmonar (CPB) en cerdos Bama normales. Este modelo permite la exposición directa del tracto de salida del ventriculo izquierdo y la región subvalvular, seguida de cortes tejidos controlados para promover la intervención de la estructura subvalvular, proporcionando una plataforma clínicamente relevante para futuras investigaciones.

Específicamente, este modelo fue diseñado para replicar la vía procedimental y el entorno operativo de la miectomía del tabique transaórtico clínico utilizada en pacientes con miocardiopatía obstructiva hipertrófica (HOCM). No pretende recapitular la fisiopatología de la MCC ni servir como modelo de enfermedad, sino reproducir las condiciones operativas bajo las cuales se realiza la intervención subvalvular.

Este modelo sirve como un marco quirúrgico estandarizado para estudiar intervenciones estructurales subvalvulares, evaluar dispositivos quirúrgicos cardíacos novedosos y proporcionar una plataforma de entrenamiento reproducible para cirugía cardíaca experimental, incluyendo formación quirúrgica en exposición transaórtica a LVOT y resección subvalvular controlada, así como estudios agudos a nivel de tejido e histologia tras intervenciones estructurales definidas.

Protocol

Todos los procedimientos con animales fueron aprobados por el Comité Institucional de Cuidado y Uso Animal (IACUC) de la Academia China de Ciencias Médicas del Hospital de Fuwai, bajo el número de aprobación 0106-1-20-ZX(X)-21. Todos los experimentos se realizaron conforme a las directrices de ARRIVE y a la Guía de los Institutos Nacionales de Salud para el Cuidado y Uso de Animales de Laboratorio. Los animales se alojaban bajo condiciones ambientales estándar (temperatura 20-26 °C, humedad 40-60%, ciclo de 12 horas luz/oscuridad) con libre acceso a comida y agua.

1. Preparación experimental de animales

1. Obtén cerdos miniatura adultos Bama normales de un proveedor certificado de cerdos experimentales en Pekín (Licencia nº SCXK (Jing) 2018-0008).
   NOTA: Este método fue validado en tres cerdos miniatura Bama sanos de aproximadamente 33-35 semanas, que pesaban entre 30 y 35 kg en el momento de la cirugía.
2. Alojar a los animales en un entorno estándar de barrera durante al menos 7 días antes de la cirugía para aclimatación, bajo temperatura controlada (20-26 °C), humedad (40-60%) y un ciclo de 12 horas de luz/oscuridad, con acceso libre a comida y agua.
3. Realizar una evaluación integral de salud 24 horas antes de la cirugía, incluyendo la evaluación del estado mental, apetito, características fecales, integridad de la piel, marcha y condición respiratoria.
4. Retener la comida durante 12 horas y el agua durante 4 horas preoperatorias para reducir el riesgo de aspiración durante la anestesia.
5. Completar la medición del peso corporal y el registro de identificación antes de la cirugía, además de registrar los signos vitales iniciales.
6. El día de la cirugía, trasladar a los animales al área de operaciones para el establecimiento de acceso intravenoso y la preparación de inducción de anestesia.

2. Preparación preoperatoria

1. Establecimiento de acceso venoso auricular
   1. Antes de la inducción de la anestesia, establecer el acceso venoso a través de la vena auricular marginal de la siguiente manera:
      1. Aplica una presión suave en la porción proximal de la vena auricular marginal para permitir el empaste venoso. Utilizando un catéter intravenoso de 22-G (22 GA × 1,00 in; 0,8 × 25 mm), inserta la aguja a lo largo del recorrido del vaso desde la dirección distal hacia la proximal.
      2. Al observar el retorno de la sangre, retirar el estilete y avanzar completamente el catéter hacia la vena. Retira el núcleo de la aguja, conecta una llave de paso de tres vías e inyecta una pequeña cantidad de solución salina estéril para confirmar la patencia.
      3. Confirma que no hay protrusión subcutánea y que la infusión transcurre sin interrupciones, luego asegura la llave de paso con cinta adhesiva para estabilizar el catéter.
2. Anestesia
   PRECAUCIÓN: Verifique la profundidad adecuada de la anestesia y la pérdida de reflejos antes de realizar cualquier procedimiento invasivo para prevenir el estrés o el dolor.
   1. Induce la anestesia inyectando una solución de propofol al 1% a través de la vena auricular en una dosis de 2-4 mg/kg. Una vez que el animal pierde la capacidad de mantenerse de pie, muestra una disminución de la conciencia y se desploma, transfiere inmediatamente al centro de la mesa de operaciones.
   2. Coloca al animal en posición supina y asegura las cuatro extremidades a los lados de la mesa de operaciones usando correas de sujeción. Coloca almohadillas blandas bajo la espalda y el cuello para evitar lesiones por compresión.
   3. Tras confirmar la inconsciencia, administrar fentanilo (3-5 μg/kg) por vía intravenosa para la analgesia, seguido de atracurio (0,2 mg/kg) para la relajación muscular.
   4. Realizar intubación endotraqueal exponiendo la glotis con un laringoscopio. Insertar un tubo endotraqueal manguito del tamaño adecuado (diámetro interno recomendado 6,5-7,5 mm) en la tráquea y avanzar hacia el segmento torácico para evitar la oclusión del bronquio craneal derecho.
   5. Conecta el tubo a un ventilador mecánico. Ajusta el ventilador a un volumen mareal de 10-12 mL/kg, una frecuencia respiratoria de 12-16 respiraciones/min,_{FiO 2} al 100% y una relación I:E de 1:2. Confirma la ventilación pulmonar bilateral antes de asegurar el tubo endotraqueal.
   6. Mantener la anestesia durante la cirugía mediante infusión intravenosa continua de propofol (6-10 mg/kg/h). Ajusta la dosis de fentanilo según los signos vitales del animal.
   7. Monitoriza continuamente el electrocardiograma (ECG), la presión arterial (BP), la saturación de oxígeno (_{SpO 2}) y la temperatura corporal (Temp).
   8. Mantener la temperatura corporal en 37 ± 0,5 °C para reducir la demanda metabólica y asegurar la protección miocárdica bajo bypass cardiopulmonar. Mantén_{SpO 2}≥ 95% y conserva la presión arterial dentro de un rango fisiológico estable.
3. Preparación quirúrgica de la mano
   1. Realizar la antisepsis quirúrgica estándar de la mano según el protocolo institucional. Después de lavarte las manos, sécate las manos con toallas quirúrgicas estériles antes de ponerte guantes estériles.
4. Cateterismo venoso central bajo guía guía de hilo guía
   PRECAUCIÓN: Mantenga una técnica aséptica estricta durante la cateterización. Manipula con cuidado las agujas y los alambres guía para evitar lesiones accidentales.
   1. Selecciona la vena yugular externa derecha para acceder a la vena. Desinfecta a fondo la zona cutánea local y luego inyecta 5 mL de lidocaína al 2% por vía subcutánea para conseguir anestesia local.
   2. Conecta la aguja punzante a una jeringuilla e inserta la aguja en un ángulo de 20-30° a lo largo del curso de la vena yugular hacia la dirección craneal.
   3. Avanza la aguja lentamente mientras aspiras continuamente hasta que se observe el retorno de sangre venosa. Inserta un alambre guía suavemente en la luz del recipiente a través de la aguja. Estabiliza el alambre guía y retira la aguja con cuidado. Avanza un dilatador sobre el alambre guía para expandir el tracto de punción y luego quita el dilatador.
   4. Inserta un catéter venoso central sobre el alambre guía en la vena. Avance el catéter a una profundidad aproximada de 10-15 cm, asegurándose de que la punta del catéter esté situada dentro de la vena cava craneal sin entrar en la aurícula derecha para evitar interferencias con la oclusión cardíaca intraoperatoria.
   5. Quita el cable guía. Confirma la patencia de cada lúmen por aspiración. Enjuaga cada lumen con solución fisiológica heparinizada (50 UI/mL) y bloquea el catéter con la misma solución para mantener la patencia.
   6. Asegura el catéter con suturas estériles. Aplica un apósito estéril transparente sobre el lugar de la punción. Etiqueta claramente la función del lumen y la profundidad de inserción del catéter.
5. Cateterismo urinario
   1. Tras la inducción y colocación de la anestesia, desinfecta la zona perineal usando bolas de algodón estériles remojadas en solución de povidona y yodo y déjala secar de forma natural. Coloca una cortina estéril sobre la zona circundante, dejando al descubierto solo el orificio uretral. Utiliza solo cerdas hembras para facilitar la cateterización uretral.
   2. En condiciones estériles, abre un kit de catéter de Foley. Lleva guantes estériles, lubrica la punta del catéter e insértalo suavemente en la uretra. Una vez observado el flujo de orina, adelanta el catéter 1-2 cm más. Inyecta agua destilada estéril en el balón de catéter para fijarlo en su lugar. Aplica una tracción suave para confirmar la fijación.
   3. Conecta el catéter a una bolsa de drenaje cerrada. Fija el tubo a la cola o al lateral de la mesa de operaciones con cinta adhesiva para evitar tensión o contaminación. Anota la hora de la inserción del catéter y los detalles del procedimiento. Durante la cirugía, monitoriza continuamente la producción de orina y la patencia de drenaje.
6. Drapeado y establecimiento del campo quirúrgico estéril
   1. Realizar la antisepsis quirúrgica de la mano nuevamente según los estándares clínicos. Tras secarse, vuelve a la mesa de operaciones.
   2. Colabora con el asistente para cubrir el campo quirúrgico. Primero, coloca cortinas pequeñas y estériles y sujétalas con pinzas para toallas. Luego coloca cortinas de tamaño medio, cubriendo el cuerpo excepto la zona operativa.
   3. Asegúrese de que el área expuesta se extienda desde el manubrio del esternón hasta el proceso xifoide, con aproximadamente 20-25 cm de longitud y 10-12 cm de ancho, incluyendo el esternón medio y los márgenes costales bilaterales.
   4. Después de colocar, realiza de nuevo la antisepsis rápida de la mano. Ponte batas y guantes quirúrgicos estériles con la ayuda de la enfermera. Coloque una gran capa estéril con una fenestración, asegurándose de que solo quede expuesta la zona de la incisión mientras que el resto de las zonas permanezcan completamente cubiertas. Alinear la ventana con el centro de la incisión y asegurar los márgenes para evitar fugas de líquido, completando así el establecimiento del campo quirúrgico estéril.

3. Exposición y movilización cardíaca

1. Exposición de la cavidad torácica
   PRECAUCIÓN: Protege las manos y los ojos del operador durante la esternotomía. Asegúrate de que el separador se aplique lentamente para evitar desgarros tisulares o fracturas óseas.
   1. Realizar una incisión en la línea media a lo largo del esternón, que se extiende desde la muesca supraesternal hasta aproximadamente 2 cm por debajo del proceso xifoides, utilizando un bisturí quirúrgico para incisar la piel y los tejidos subcutáneos. Mantener una incisión de aproximadamente 20 cm.
   2. Utiliza un dispositivo de electrocauterización para separar los músculos pectorales mayores y el periosteo del esternón, exponiendo completamente la superficie anterior del esternón.
   3. Retrae suavemente los tejidos laterales con la ayuda de un asistente para mantener un campo quirúrgico despejado.
   4. Después de exponer el esternón, inserta un cuchillo Lebsche bajo el proceso xifoide y aplica tracción hacia arriba.
   5. Con un pequeño martillo, golpea con cuidado y regularidad el extremo proximal del cuchillo de Lebsche para partir gradualmente el esternón a lo largo de la línea media, avanzando cranealmente hasta que se abre la cavidad torácica.
   6. Mantener una tracción ascendente continua durante todo el proceso para evitar desviaciones o lesiones en el pericardio. Tras completar la división esternal, colocar un separador de costillas Finochietto y expandir lentamente la cavidad torácica bilateralmente para ensanchar el campo quirúrgico. Evita una retracción excesiva para evitar lesiones pleurales o fracturas de costillas.
2. Movilización cardíaca
   1. Identifica el curso de los nervios frénicos bilaterales que recorren las superficies laterales del pericardio (Figura 1A).
   2. Incisa el margen superior del pericardio y extiende la incisión paralela al eje largo del animal, manteniéndola cerca de la línea media para minimizar el riesgo de lesión nerviosa (Figura 1B).
   3. Realizar una disección roma bilateralmente para separar el pericardio de la pleura mediastínica y los tejidos conectivos adyacentes.
   4. Tras completar la disección, expone el corazón bajo visualización directa. Confirmar la identificación clara de las estructuras anatómicas clave, incluyendo la aorta, la arteria pulmonar, el apéndice auricular izquierdo, el ápice cardíaco y el seno coronario.
3. Establecimiento de la circulación extracorpórea (CPB)
   PRECAUCIÓN: Asegúrese de que todas las conexiones del circuito CPB estén seguras y correctamente conectadas a tierra. Manipula cuidadosamente los dispositivos eléctricos y de perfusión para evitar fugas o descargas eléctricas.
   1. Tras lograr una exposición cardíaca adecuada, colocar una sutura de cordón en la base del apéndice auricular izquierdo. Realiza una pequeña incisión dentro del lazo de sutura e inserta una cánula de drenaje venosa oblicuamente hacia abajo a lo largo del eje del apéndice auricular izquierdo para establecer la vía de retorno venoso para el bypass cardiopulmonar.
   2. Avanza la cánula aproximadamente 3-4 cm para asegurar que su punta entre en la cavidad auricular izquierda. Asegura la cánula al apéndice auricular usando suturas de seda para evitar deslizamientos o fugas.
   3. Coloca una sutura tipo cordón de bolsa en la entrada del seno coronario. Crea una pequeña incisión dentro del lazo de sutura e inserta una cánula de perfusión que sirva como vía de entrada para la administración de cardioplejía y la perfusión miocárdica.
   4. Avanza la cánula de perfusión aproximadamente 1-2 cm hacia el seno coronario. Asegura la sutura con suturas de seda para asegurar una posición estable.
   5. Conecta todas las cánulas a la máquina de bypass cardiopulmonar. Imprima el circuito con una mezcla de 800 mL de solución de Ringer lactada, 1.000 mL de solución de gelatina succinilada y 2 mL de heparina. Desairea bien el circuito y realiza una prueba de presión para confirmar la estabilidad.
   6. Monitorizar continuamente los parámetros de perfusión y el caudal durante todo el procedimiento, y mantener el tiempo de coagulación activada (ACT) por encima de 480 s durante la heparinización sistémica.
   7. Activa la bomba de retorno venosa para iniciar el drenaje venoso parcial. Abre gradualmente la bomba arterial para mantener la presión de perfusión entre 60 y 80 mmHg. Confirma que no hay fugas y que el flujo del circuito no está obstruido antes de iniciar un bypass cardiopulmonar completo.
   8. Tras lograr una CPB estable, inyecte lentamente una solución fría de cardioplejía alta en potasio a través del seno coronario. Observa el debilitamiento progresivo de las contracciones cardíacas hasta que ocurre un paro cardíaco completo y el electrocardiograma (ECG) muestra una línea plana. Registra la hora del paro cardíaco.
   9. Asegúrese de que se logre un paro electromecánico completo y un enfriamiento miocárdico adecuado antes de iniciar la intervención subvalvular. Comienza la manipulación de tejidos solo después de confirmar la ausencia de contracciones ventriculares y un estado de parada estable.
   10. En este protocolo, administra una cardioplejia de dosis única suficiente para mantener la parada miocárdica durante todo el periodo de intervención subvalvular. No es necesario retomar la dosis habitualmente debido a la relativamente corta duración del clampaje cruzado aórtico (aproximadamente 30-40 minutos).
   11. Aplica solución de solución salina de hielo triturado previamente preparada sobre la superficie cardíaca para reducir aún más la temperatura miocárdica, disminuir la demanda metabólica y mejorar la protección miocárdica.

4. Exposición del ventrículo izquierdo e intervención de la estructura subvalvular mediante acceso aórtico

PRECAUCIÓN: Manipula con cuidado los instrumentos afilados y las tijeras durante la incisión aórtica y el corte de tejido. Evita una tracción excesiva que pueda dañar las estructuras circundantes.

1. Tras lograr el paro cardiopléjico y la protección hipotérmica, se realiza una incisión transversal de aproximadamente 1,0-1,5 cm de longitud en la pared anterior de la aorta ascendente, situada aproximadamente entre 1,5 y 2,0 cm por encima del anillo de la válvula aórtica y orientada perpendicular al eje largo de la aorta.
2. Insertar dos ganchos curvados en la incisión aórtica desde los lados dorsal izquierdo y ventral, respectivamente. Retrae suavemente la incisión lateralmente para abrir la raíz aórtica y expandir el campo quirúrgico (Figura 2A).
3. Introduce un portaagujas que lleve una sutura de tracción precargada en el campo operatorio. Colocar la sutura sobre el tejido subvalvular objetivo para facilitar la tracción intraoperatoria y la localización precisa.
4. Avanzar unas tijeras curvas pequeñas a través de la incisión aórtica a lo largo del eje de la aorta hacia la cámara ventricular izquierda. Utiliza la sutura de tracción para exponer la región subvalvular objetivo (Figura 2A).
5. Bajo visualización directa, orientar las tijeras horizontalmente y cortar las estructuras subvalvulares designadas de manera controlada (Figura 2B). Retira el tejido resecado y entrégalo al asistente.
6. Irriga a fondo la cámara ventricular izquierda y la luz aórtica con solución fisiológica estéril para eliminar cualquier residuo de tejido.
7. Cierra la incisión aórtica utilizando suturas absorbibles continuas. Comienza en un extremo de la incisión y pasa la aguja secuencialmente a través de la intima y el medio, usando puntos espaciados uniformemente para asegurar un cierre completo y hermético. Tras completar la sutura, riega de nuevo la superficie externa del lugar del cierre con solución salina estéril para limpiar la zona.

5. Reanudación cardíaca y bypass cardiopulmonar destetado

PRECAUCIÓN: Confirme la desaireación completa de las cámaras cardíacas y las líneas de perfusión antes de restablecer la circulación para prevenir embolia aérea.

1. Tras completar el cierre aórtico, reduce gradualmente la tasa de perfusión del seno coronario y suspende la infusión de cardioplegia. Simultáneamente, disminuye gradualmente el caudal de la bomba de bypass cardiopulmonar (CPB) para permitir una recuperación progresiva de la actividad cardíaca espontánea.
2. Monitoriza continuamente el ritmo cardíaco mediante electrocardiografía (ECG) para detectar el regreso del ritmo sinusal o la presencia de arritmias.
3. Tras el exitoso destete de la CPB, se revierte la heparinización sistémica administrando protamina para neutralizar la heparina circulante y restaurar la función normal de la coagulación.
4. Si no se produce una realimentación cardíaca espontánea en pocos minutos, aplica desfibrilación directa colocando las pátulas del desfibrilador directamente sobre la superficie cardíaca. Administra una descarga de baja energía y repite según sea necesario hasta que se restablezca la actividad eléctrica organizada.
5. Tras la restauración de las formas de onda regulares del ECG, evalúa el impulso apical, la pulsación coronaria y la contractilidad miocárdica general.
6. Una vez que el ritmo cardíaco se estabiliza y la fuerza contráctil es satisfactoria, se retira secuencialmente la cánula de perfusión del seno coronario y la cánula de drenaje venoso auricular izquierdo. Cierra cada lugar de la canulación con suturas para lograr la hemostasia.
7. Desconecta el sistema CPB. Registrar la duración total de la CPB, el tiempo de pinza cruzada aórtica y el tiempo hasta la reanudación cardíaca.
8. Irriga bien la cavidad pericárdica con solución fisiológica estéril y aspira cualquier líquido residual o coágulos sanguíneos.
9. Antes del cierre esternal, coloca dos tubos de drenaje cerrados dentro de la cavidad pericárdica, colocando uno a cada lado del corazón. Exterioriza los tubos de drenaje a través de un espacio intercostal y conéctalos a botellas externas de drenaje.
10. Cierra el esternón usando cuatro cables de acero inoxidable en configuración interrumpida. Posteriormente, realiza un cierre rutinario en capas de la pared torácica.

Results

Este protocolo quirúrgico permite una exposición estable y un corte controlado de las estructuras subvalvulares dentro del ventrículo izquierdo. Durante el procedimiento, la incisión aórtica se posicionó con precisión y la entrada por la abertura aórtica permitió una visualización clara del tracto de salida ventricular izquierdo y la región subvalvular asociada. El cirujano localizó la zona del corte aplicando tracción sobre la sutura precolocada y realizó un corte subvalvular dirigido b...

Discussion

Las anomalías de la estructura subvalvular del ventrículo izquierdo representan cambios anatómicos críticos en pacientes con miocardiopatía hipertrófica (HCM), lo que conduce a una alteración de la compaciencia ventricular, presión diastólica elevada y obstrucción del tracto de salida ventricular izquierdo (SCOP). Estas anomalías estructurales constituyen bases patológicas principales para la disfunción cardíaca clínica y los resultados^{adversos 10,11}

Materials

List of materials used in this article

Name	Company	Catalog Number	Comments
0.9% Sodium Chloride Injection	-	-	Usado para irrigación y dilución de solución
Anesthesia Machine	-	-	Proporciona anestésicos inhalados y soporte respiratorio
Anesthetics (Propofol, Fentanyl, Atracurium)	-	-	Usados para inducción y mantenimiento de la anestesia
Aortic Retractor	SINOVIEW	RT37008-25	Usado para retraer la aorta y mejorar la visibilidad
Atraumatic Forceps	SINOVIEW	FC22500-24	Usados para agarrar tejido mientras se minimiza el trauma
Cardioplegia Solution (St. Thomas)	-	-	Usado para el paro cardíaco y protección
Cardiopulmonary Bypass Machine and Tubing	-	-	Usado para mantener la circulación durante CPB
Central Venous Catheter Kit	-	-	Establece acceso venoso central
Endotracheal Intubation Set and Ventilator	-	-	Mantiene la vía aérea durante la cirugía
Flat Hook Retractor	SINOVIEW	RT37000-00	Usado para la retracción de tejidos en la cavidad torácica
General Retractor	-	-	Usado para retraer tejidos y exponer el área quirúrgica
Hemostatic Forceps	-	-	Usados para pinzar vasos sanguíneos o tejido para la hemostasia
Heparin Sodium Injection	-	-	Usado para anticoagulación
IV Catheter·Radiopaque 22 GA × 1.00 in	BD Angiocath	381123	Usado para establecer acceso venoso
Microsurgical Instrument Basket	SINOVIEW	90X0003	Usado para almacenar y transportar instrumentos microquirúrgicos
Minimally Invasive Curved Scissors	SINOVIEW	SC40230-25	Usado en procedimientos mínimamente invasivos para corte curvo
Minimally Invasive Double-joint Scissors	SINOVIEW	SC55001-29	Usado para corte preciso en campos operatorios profundos
Needle Holder	-	-	Usado para sostener agujas de sutura durante el cosido
Scalpel Handle and Blade	-	-	Usado para incidir piel y tejidos
Sterile Drapes, Sutures, Gloves, Masks	-	-	Usados para mantener un campo quirúrgico estéril
Sterilization Box for Precision Instruments	SINOVIEW	90X0401	Usado para limpieza y esterilización de instrumentos quirúrgicos
Tissue Forceps (Toothed/Non-toothed)	-	-	Usados para agarrar tejido
Tissue Scissors	SINOVIEW	SC35101-25SC	Usados para corte general de tejido
Triple-joint Microforceps	SINOVIEW	FC17010-301	Usados en microcirugía para manipulación delicada
Ultra-sharp Scissors	SINOVIEW	SC35101-23UC	Usados para disección precisa de tejido
Urinary Catheter and Drainage Bag	-	-	Usados para drenaje y monitoreo de orina
Vital Signs Monitor	-	-	Monitorea ECG, presión arterial, SpO2, temperatura