Este artículo presenta un protocolo para implantar el dispositivo de asistencia ventricular izquierda (LVAD) en un lechón. Este modelo representa una forma potente de estudiar la implantación de LVAD en niños y revelar el mecanismo de remodelación inversa ventricular en el tratamiento de LVAD.
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Artículo de método
Implantación de dispositivo de asistencia ventricular izquierda (LVAD) en cerdos juveniles de raza terrestre: un modelo de implantación de LVAD para insuficiencia cardíaca pediátrica
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Resumen
Resumen
Se estableció un modelo de implantación de dispositivo de asistencia ventricular izquierda (LVAD) pediátrico para simular el soporte del LVAD pediátrico e investigar el mecanismo de remodelación inversa del corazón. La insuficiencia cardíaca (IC) es una enfermedad cardiovascular global muy extendida. La implantación de LVAD es un método esencial para tratar la IC. Sin embargo, los modelos existentes de implantación de LVAD pediátricos siguen poco desarrollados, y el mecanismo de tratamiento con LVAD que resulta en remodelación inversa ventricular no estaba claro, especialmente en niños, aunque hubo mucha investigación que descubrió el posible objetivo. Por lo tanto, es necesario descubrir el mecanismo, especialmente en los niños. Un buen modelo es la base para probar la función de un nuevo LVAD pediátrico y revelar el mecanismo clave. Establecimos un modelo de implantación de LVAD en cerdos jóvenes de landrace, que podría usarse para asumir la seguridad y eficacia de LVAD pediátrico. Tras la implantación del LVAD, la bomba de LVAD mantuvo un flujo sanguíneo estable e ininterrumpido durante más de un mes. Además, los signos vitales, incluida la hemodinámica, estaban estables y dentro de los rangos ideal y normal. Este modelo replica con precisión las condiciones hemodinámicas en pacientes clínicos tras la implantación de LVAD. Podría usarse para rastrear los cambios continuos tras la implantación de LVAD. Al mismo tiempo, puede utilizarse para revelar la reactividad y seguridad de la implantación de LVAD infantil. Este protocolo es un proceso general sencillo y estándar para construir un modelo de uniformización en la investigación sobre implantación de LVAD infantil.
Introducción
La terapia LVAD mejora la supervivencia en pacientes con insuficiencia cardíaca y sirve como puente hacia el trasplante de corazón. LVAD se ha utilizado en adultos durante décadas, y se cree que restaura la función cardíaca promoviendo la remodelación inversa delmiocardio 1. La investigación previa se centró en pacientes adultos con implantación deLVAD 2. Sin embargo, el mecanismo molecular detallado de remodelación inversa para el tratamiento de LVAD seguía sin estar claro enniños de 3 años. Por lo tanto, es necesario un buen modelo para la investigación de mecanismos de tratamiento de LVAD que resulte en remodelación inversa. Aunque los modelos murinos se utilizan ampliamente en la evaluación de fármacos y el desarrollo de dispositivos para enfermedades cardiovasculares, el sistema inmunitario, la contractilidad miocárdica, la hemodinámica y el metabolismo de los ratones son bastante diferentes de los humanos. Además, la frecuencia cardíaca en reposo de los ratones puede alcanzar entre 500 y 600 latidos por minuto, lo que es 6-10 veces mayor que la de los humanos. Es demasiado rápido implantar dispositivos de asistencia ventricular. Además, el tamaño del ventrículo izquierdo y los vasos sanguíneos en ratones es muy pequeño. Es extremadamente difícil diseñar e implantar tuberías que sean suficientemente finas, flexibles, biocompatibles y capaces de garantizar un flujo adecuado y baja resistencia. Por lo tanto, es necesario desarrollar modelos animales que sean más representativos de los humanos. En cuanto al sistema circulatorio, los cerdos son muy similares a los humanos, lo que podría ser un buen animal modelo para la investigación de enfermedades del sistema circulatorio humano o implantación de instrumentos, y los modelos de cerdos se utilizan ampliamente en estudios traslacionales preclínicos de dispositivos de asistenciaventricular 4,5. Nuestro protocolo estableció un nuevo modelo de implantación de LVAD pediátrico en jóvenes cerdos de raza local.
Además, la insuficiencia cardíaca pediátrica (PHF) afecta entre 0,87 y 7,4 por cada 100.000niños 6. Aunque el trasplante de corazón (TH) es el método estándar de oro para tratar la IC, algunos niños no pueden recibir un corazón donante de inmediato. Por tanto, la implantación de LVAD pediátrica es necesaria para el soporte vital de los niños con IC. La utilización de LVAD está aumentando en pediatría, pero estos pacientes suelen ser complejos y pueden requerir tratamiento del bloqueaurculoventricular 7. Además, no existe un LVAD pediátrico adecuado para niños con IC, y los resultados clínicos anteriores mostraron que las tasas de sangrado mayor, accidentes cerebrovasculares, infección y disfunción renal eran más altas que enadultos. En ensayos clínicos anteriores a corto plazo, el uso de LVADs pediátricos ha provocado problemas como ictus isquémico y arritmias graves, lo que indica que los LVADs pediátricos necesitan optimizarseaún más 9. Por lo tanto, es necesario construir un modelo de implantación LVAD infantil. Podría ser un modelo importante para nuevas pruebas de LVAD o investigación de mecanismos de remodelación inversa. Los cerdos jóvenes de la raza terrestre son relativamente pequeños, con un peso cardíaco de aproximadamente 100 g, similar al de los niños. Pueden utilizarse para evaluar la seguridad y eficacia de dispositivos implantables de asistencia ventricular diseñados específicamente para niños. Por lo tanto, la landrace joven es una cepa adecuada para la investigación de implantación de LVAD infantil.
En este artículo, presentamos un modelo de implantación de LVAD de una raza terrestre joven. Podría ser un modelo adecuado para descubrir el mecanismo de remodelación inversa de LVAD y evaluar la seguridad y eficacia de la implantación pediátrica de LVAD.
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Protocolo
Todos los procedimientos que involucran a los cerdos fueron aprobados por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales (IACUC) del Hospital Fuwai, Academia China de Ciencias Médicas (nº de aprobación ética: 0109-1-35-ZX(X)-5). Todos nuestros experimentos siguieron las directrices de ARRIVE. Los animales experimentales, machos juveniles de tres meses de edad (30-35 kg), fueron alojados y aislados en las instalaciones experimentales del Centro Animal del Hospital Fuwai con antelación para adaptarse al entorno y reducir el estrés. Los animales fueron examinados preoperatoriamente para asegurar su salud preoperatoria, y se excluyeron del experimento si presentaban características conductuales anormales, síntomas anormales o signos. Los animales experimentales estaban en ayunas y se les prohibía beber antes del trasplante de corazón y el examen, según los procedimientos rutinarios del centro de experimentación animal.
1. Manejo preoperatorio y preparación del animal experimental
- Haz que los animales ayunen durante 12 horas y privalos de agua durante 4 horas antes de la cirugía.
- Induce anestesia general con ketamina 10-20 mg/kg, intramuscular.
- Establecer el acceso venoso a la vena auricular.
- Aplica un torniquete bien ajustado en la base de la oreja para engordar la vena.
- Utiliza la mano no dominante para estirar y estabilizar la oreja. Sujeta la aguja del catéter como un lápiz con la mano dominante, biselada hacia arriba, en un ángulo de 15-30° respecto a la piel.
- Perfora la piel y la pared de la vena en un solo movimiento suave.
- Al observar sangre de flashback en la cámara, adelanta todo el conjunto otros 1-2 mm. Luego, estabiliza el estilete (aguja metálica) y avanza completamente el catéter de plástico dentro del vaso.
- Aplica presión sobre la piel sobre la punta del catéter para evitar el sangrado, retira rápidamente el estilet y deséchalo en un recipiente afilado. Conecta inmediatamente una tapa o grifo de heparina.
- Quita el torniquete de la base de la oreja. Aspirar con jeringuilla para observar el retorno sanguíneo, confirmando la colocación intravascular. Enjuaga lentamente con 1-2 mL de suero. Observa cualquier hinchazón alrededor del lugar, que indique extravasación.
- Envuelva toda la oreja de forma suelta con una venda cohesiva, asegurándose de que la punta de la oreja quede expuesta para monitorizar la isquemia.
- Administrar propofol (2-4 mg/kg por vía intravenosa) y realizar intubación endotraqueal.
- Revisa y prepara un tubo endotraqueal del tamaño correcto, un laringoscopio (cuchilla recta), estilete, jeringuilla, lubricante, bloque de mordida/gasa enrollada, cinta de fijación y estetoscopio.
- Coloca al cerdo en una posición dorsal estable de reclinación. Extiende el cuello y inclina la cabeza hacia atrás.
- Proporciona oxígeno al 100% con mascarilla facial durante 3-5 minutos si es posible.
- Inserta la hoja del laringoscopio en la comisura derecha de la boca, avanzando mientras desplazas la lengua hacia la izquierda.
- Avanza la hoja a lo largo de la línea media de la lengua. Identifica la epiglotis y luego usa la punta de la hoja para levantar y presionar suavemente la epiglotis y exponer la glotis (una rendija vertical).
- Cuando la glotis se abre (durante la inspiración), avanza el tubo endotraqueal (con estilete si se usa) a través de la comisura derecha hacia la tráquea.
- Una vez que el tubo esté avanzado, estabilízalo y retira cuidadosamente el estilete.
- Busca condensación dentro del tubo y palpa el aire exhalado en la abertura del tubo.
- Infla el manguito del tubo con aire usando una jeringuilla hasta que la fuga alrededor del tubo esté sellada.
- Conectar un capnografo; la presencia de una forma de onda regular de EtCO2 confirma la colocación traqueal.
- Ata el tubo a un bloque de mordida y asegura firmemente el conjunto a la mandíbula o maxilar usando cinta adhesiva.
- Conecta el tubo endotraqueal al circuito de la máquina de anestesia. Tras la intubación endotraqueal, trasladar al animal al quirófano.
- Relajante muscular: Tras un bolo intravenoso de 0,5 mg/kg de atracurio, mantener la infusión entre 5 y 10 μg/kg/min.
- Anestesia de mantenimiento: administrar isoflurano inhalado al 2-3%, y mantener con dexmedetomidina 1 U/kg y propofol 1-2 mg/kg/h. Usar succinilcolina 2 mg/kg como relajante muscular (el cerdo no es sensible al cisbenceno).
- Realizar una punción de la vena cava anterior para monitorizar la presión venosa central (CVP).
- Palpar el surco yugular entre el borde anterior del músculo esternocleidomastoideo y la tráquea.
- Realizar una incisión longitudinal de 3-4 cm en la unión de los tercios superior y medio de la línea que conecta el ángulo mandibular con el manbrio esterni.
- Incide bruscamente la piel y la fascia subcutánea en capas.
- Realiza una disección contundente a través del músculo platisma para exponer la vaina carótida.
- Moviliza un segmento de 1-2 cm de la vena yugular usando un disección de cacahuete.
- Pasa dos ligaduras por debajo del segmento de la vena aislada (ligadura proximal para tracción; distal para ligadura permanente).
- Realiza una venenotomía realizando una incisión en forma de V en la pared venosa anterior entre las ligaduras con tijeras para el iris.
- Inserta el catéter biselado hacia abajo bajo visualización directa para asegurar la colocación intraluminal.
- Avanzar el catéter 15-20 cm cefálade hasta alcanzar la vena cava superior (SVC).
- Confirma la colocación aspirando sangre venosa oscura.
- Sutura el ala de fijación al tejido subcutáneo con seda 3-0.
- Cierra la herida en capas (fascia: sutura absorbible; piel: interrumpida no absorbible).
- Configuración de monitorización CVP: Conecta en el siguiente orden uno tras otro: catéter, grifo de 3 vías, transductor de presión, monitor.
- Poner el transductor a cero a nivel del ángulo esternal e iniciar la monitorización continua de la forma de onda CVP.
- Conecta el electrocardiograma de 3 derivaciones y detecta el electrocardiograma durante todo el proceso.
- Establecer acceso a las arterias femorales para medir la presión arterial cuando sea necesario.
- Localizar el pulso arterial femoral aproximadamente 2-3 cm por debajo del punto medio de la línea que conecta la columna ilíaca anterosuperior con el tubérculo púbico.
- Realizar una incisión longitudinal de 4-5 cm a lo largo del eje del pulso arterial femoral.
- Incide la piel y la grasa subcutánea, y realiza una disección roma a través de la fascia.
- Incisa la vaina femoral para exponer la arteria femoral y moviliza un segmento de 2-3 cm de la arteria femoral.
- Aplica pinzas microvasculares proximal y distal.
- Crea una arteriotomía transversal (50% de la circunferencia arterial).
- Inserta el catéter biselado hacia arriba a 30°.
- Avanza el catéter 8-10 cm hacia la aorta.
- Confirma el flujo pulsátil de sangre roja brillante.
- Sutura el ala de fijación del catéter a la fascia profunda usando sutura 5-0 Prolene.
- Cierra la herida en capas.
- Conecta en el siguiente orden uno tras otro: el catéter, la llave de 3 vías, el transductor de presión, el monitor.
- Colocar el transductor al nivel de la aurícula derecha (cuarto espacio intercostal/línea media-axilar).
- Realizar cero calibración e iniciar monitorización continua de presión.
2. Implantación de LVAD
- Realizar una toracotomía mediana en posición supina; suspende el pericardio y fijalo para exponer el corazón.
- Heparinización: Administrar inyección de heparina sódica (100 U/kg) mediante catéter venoso central. 3-5 minutos después de la inyección, toma una muestra arterial de sangre para medir el Tiempo de Coágulo Activado (ACT). El valor ACT debe alcanzar y mantenerse en > 480 s antes de iniciar el establecimiento de bypass cardiopulmonar (CPB).
- Establecimiento de bypass cardiopulmonar
- Tras conectar el circuito de bypass cardiopulmonar (CPB), cebar el sistema con la solución de cebado preparada (inyección de lactato sódico de Ringer: tetraspan 6% = 2:1, con heparina añadida: 2 - 4 UI de heparina por 1 mL de volumen total de cebado, bicarbonato de sodio: 5 - 10 mmol por 1000 mL de volumen de cebado, etc.).
- Coloque dos suturas de cordón de bolsa utilizando suturas de doble brazo con empeñado en el lugar de canulación seleccionado en la pared anterior de la aorta.
- Incisa el centro de las suturas de cordón de bolsa. Inserta una cánula aórtica de 22°F. Ata firmemente las suturas de cordón y fija la cánula, asegurando la hemostasis.
- Conecta el extremo distal de la cánula a la línea arterial de la máquina de bypass cardiopulmonar.
- Identificar el lugar de la canulación en el apéndice auricular derecho y colocar una sutura de doble brazo con un solo compromiso en el lugar seleccionado.
- Incisa el centro de la sutura de cordón con una hoja de bisturí. Inserta una cánula venosa 26F y ajusta la sutura de cordón alrededor de la cánula.
- Conecta la cánula a la línea venosa de la máquina de bypass cardiopulmonar.
- Pasa la línea de señal del LVAD por el túnel subcutáneo desde la parte trasera y conéctala al controlador para evitar que el cerdo se rogue con la línea y haga que se caiga al despertarse más tarde.
- Marca el punto donde la línea de señal sale en el lado de la espalda del cerdo en una posición a 3-5 cm de la línea central.
- Haz una incisión en la piel para crear un punto. Utiliza pinzas vasculares para realizar una disección roma del tejido subcutáneo hacia el cuarto espacio intercostal izquierdo.
- Utiliza puntas metálicas para guiar los cables de señal a través del túnel subcutáneo. El extremo exterior está conectado al controlador y el extremo interior se utiliza como respaldo para conectar el LVAD.
- Determinar la posición y dirección de la válvula mitral mediante ultrasonido.
- Coloca suavemente una sonda lineal estéril de alta frecuencia (7-10 MHz) sobre la zona no vascular del ápice ventricular izquierdo para adquirir planos clave de imagen.
- En la vista del eje largo del ventrículo izquierdo, localizar la zona de coaptación entre el folio mitral anterior (segmentos A2/A3) y el folíolo mitral posterior (segmentos P2/P3).
- En la vista apical modificada de cuatro cámaras, ajustar la angulación de la sonda a lo largo de la pared libre del ventriculo derecho para visualizar toda la línea de coaptación de la válvula mitral.
- Congela la imagen en la diástole media y luego mide la distancia perpendicular desde el punto medio del borde libre de folíolo mitral anterior hasta el centro del sitio propuesto de la cánula de entrada del LVAD (> 15 mm).
- Asegúrate de que el LVAD esté correctamente conectado al vaso sanguíneo artificial con antelación. La prueba con solución salina normal garantiza que el LVAD funciona correctamente y que no hay fugas en el vaso sanguíneo artificial.
- Utiliza un marcador quirúrgico estéril para dibujar la posición fija del anillo apical en el ápice del corazón.
- Fija el anillo superior en la posición del ápice usando un hilo de sutura 5-0 con junta.
- Retira el miocardio dentro del anillo parietal usando un punzón apical y recorta con pinzas y tijeras para evitar que los fragmentos caigan en la cavidad cardíaca.
- Expulsa todo el aire de la bomba LVAD colocando el LVAD en solución salina normal, haciéndolo funcionar despacio y llenándolo con solución fisiológica normal.
- Bloquea la sangre artificial para evitar que entre aire.
- Inserta la cabeza de la bomba LVAD en el anillo superior y asegúrate de que la cabeza de la bomba entre en la cavidad cardíaca. Cierra bien el candado y quita la abrazadera del anillo superior.
- Determinar la longitud adecuada del vaso sanguíneo artificial (diámetro: 8 mm) desde la cabeza de la bomba LVAD hasta la aorta ascendente (15-20 cm).
- Coloque una pinza de oclusión parcial anterolateralmente en la aorta ascendente.
- Realiza una incisión inicial con una hoja de bisturí a 1 cm distal de la ostia coronaria.
- Extiende la incisión en forma ovalada con unas tijeras.
- Corta una abertura oblicua (unos 30°) y anastomosa el extremo de la aorta ascendente para evitar la distorsión del vaso sanguíneo artificial.
- Pared posterior (posición a las 6): Colocar una sutura con pledge.
- Pared anterior (posición a las 12): Coloque una sutura simple interrumpida.
- Completar la circunferencia restante con suturas continuas y asegurar la anastomosis con nudos quirúrgicos.
NOTA: Permita un 10% de longitud extra en el injerto vascular para evitar una tensión excesiva y asegurarse de que el injerto permanezca sin torcer ni doblarse durante todo su curso.
- Revisa si hay sangrado y repara y sutura adicional.
- Coloque la sonda de ultrasonido en la superficie de la aurícula derecha y realice un examen ecografía para observar la posición de la cabeza de la bomba LVAD y confirmar que la posición de la bomba era correcta (el puerto de entrada del LVAD está directamente orientado hacia la válvula tricúspide).
- Programar el controlador LVAD para alcanzar la velocidad de rotación (rpm) y el caudal objetivo: Ajusta la velocidad y caudal de rotación adecuadas según el peso corporal y el gasto cardíaco del cerdo. Aumenta gradualmente el caudal desde 1,0 L/min y mantén la presión arterial estable.
- Coloque la sonda de ultrasonido en la aorta ascendente para examinar el flujo sanguíneo. Asegúrese de que el flujo sanguíneo a través del vaso artificial sea fluido y que no haya turbulencias significativas en la aorta.
- Inserta un tubo de drenaje en cada uno de los espacios izquierdo y derecho del corazón, y conecta una botella externa de succión de presión negativa.
- Alinea el esternón y cierra el pecho capa por capa.
- Pasar cinco cables esternales de acero inoxidable 5-0 a través del esternón usando una guía de aguja de 18 G, con un cable por espacio intercostal. Gira los cables de forma secuencial y firme desde el xifoide hacia la dirección cefálida.
- Aproximar el músculo pectoral mayor y la fascia con una sutura continua de Vicryl 3-0.
- Cierra el tejido subcutáneo con una sutura continua de Monocryl 2-0 enterrada.
- Reaproxima la piel usando suturas verticales interrumpidas de nylon 4-0.
- Desinfecta el lugar de la incisión con solución de povidona-yodo según la técnica aséptica.
3. Cuidados postoperatorios
- Tras la cirugía de implantación de LVAD, trasladar al cerdo a la UCI para su monitorización. Anota diariamente la ingesta y la salida, incluyendo la presión arterial y los parámetros del LVAD. Anestesiar al cerdo con una infusión intravenosa de propofol y regular la administración de agentes vasoactivos (dopamina, isoproterenol, noradrenalina) para mantener la hemodinámica estable durante los primeros días postoperatorios.
- Tratamiento analgésico postoperatorio: De 0 a 72 horas tras la cirugía, administrar meloxicam: 0,4 mg/kg por inyección subcutánea, cada 24 horas. De 72 horas a 7 días, administrar meloxicam 0,2 mg/kg por vía oral, cada 24 horas.
- Utilice agentes vasoactivos y regule el flujo adecuado de LVAD (1/3-1/2 del gasto cardíaco normal) para mantener la dinámica del flujo sanguíneo normal en los cerdos.
NOTA: Presta atención a las líneas de señal del LVAD y evita que los cerdos te pisoteen o te enreden. - Presentar ecografía cardíaca el primer día, tercer día, séptimo día, segunda semana y una vez por semana postoperatorio. Cuando casi no haya líquido alrededor del corazón, retira los tubos de drenaje.
- Régimen anticoagulante postoperatorio: Extraer sangre arterial con una jeringuilla de 5 mL del catéter venoso para monitorización de ACT y ratio internacional normalizada (INR). Durante los tres primeros días, administra una infusión intravenosa de heparina para mantener la ACT en torno a los 150-200 s. A partir del tercer día, asegúrate de que el cerdo tome warfarina (0,15-0,2 mg/kg/día) por vía oral, manteniendo un INR entre 1,5 y 2. Suspende la heparina cuando el INR alcance 1,5.
- Plan de tratamiento antiinfeccioso postoperatorio: Administrar cefazolina (25 mg/kg, cada 8 horas) durante 5-7 días.
- Control postoperatorio LVAD y recogida de datos: Dado que se utiliza un sistema de control LVAD cableado, las líneas de señal salen por la parte trasera del pig y se conectan al ordenador monitor. Por lo tanto, tras la cirugía, asegúrate de que las líneas de señal salgan por encima de la jaula y permanezcan flojas para el control y la recogida de datos a largo plazo. Esto es para evitar que las líneas de señal se desprendan debido al movimiento del cerdo.
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Resultados
Para establecer el modelo de implantación de LVAD en niños, utilizamos este protocolo en machos jóvenes de 3 meses, 33,8 kg, que ganaron 2,6 kg tras 4 semanas de cirugía. Los cerdos de la raza terrestre suelen alcanzar la madurez sexual aproximadamente a un año de edad. Por lo tanto, es absolutamente cerdo joven. Como muestra la Figura 1A, completamos la cirugía de implantación de LVAD conforme al protocolo. Como mostró el re...
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Discusión
El modelo de implantación de LVAD en una especie de raza terrestre joven proporcionó un método para investigar el mecanismo detallado del LVAD que resulta en remodelación inversa. Puede utilizarse para revelar los cambios dinámicos continuos del miocardio tras la implantación de un LVAD en diferentes momentos. Además, existe una biopsia miocárdica disponible para hacer seguimiento de los cambios miocárdicos del mismo animal, lo que podría reducir el uso de los animales. Además, la cría d...
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Divulgaciones
Los autores no tienen conflictos de interés que declarar.
Agradecimientos
Este trabajo fue patrocinado por el Fondo Nacional de Ciencias Naturales para Jóvenes Académicos Distinguidos de China (82125004; a Jiangping Song), evaluación de experimentos con grandes animales para dispositivos de asistencia ventricular implantable específicos para niños desarrollados por ellos mismos y confirmación preclínica de avances clínicos y establecimiento de normas diagnósticas y terapéuticas para insuficiencia cardíaca terminal en niños (2023YFC2706204); Proyecto Clave de Biotecnología Fronteriza del Programa Nacional de Investigación y Desarrollo Clave del Ministerio de Ciencia y Tecnología de China (2023YFC3404300; a Jiangping Song), proyecto especial del Ministerio de Ciencia y Tecnología de China apoyado por el Laboratorio Estatal Clave de Enfermedades Cardiovasculares, el Hospital de Fuwai y la Academia China de Ciencias Médicas (2024GZZD-03; hasta Jiangping Song).
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Materiales
| Nombre | Empresa | Número de catálogo | Comentarios |
|---|---|---|---|
| Pinza cruzada aórtica de 10 grados | Sinoview | CP40431-19 | Oclusión aórtica |
| Pinza cruzada aórtica de 10 grados | Sinoview | CP40431-19 | Oclusión aórtica |
| Pinza vascular de rama de arco de 30 grados | Sinoview | CP40432-19 | |
| Pinza cruzada aórtica de 45 grados | Sinoview | CP40044-18 | |
| Cartucho ACT-K | Abbott | 03P74-25 | Supervisión del ACT |
| Tubos de ensayo ACT-LR | Medtronic | 809 | Supervisión del ACT |
| Sistema de oxigenación por fusión de afinidad | Medtronic | BB841 | Bypass cardiopulmonar |
| Máquina de anestesia | Mindray | A9 | Anestesia y otros |
| Anillo apical (puño de costura) | Cor-Heart | - | Componente implantado. Suturado al ápice cardíaco para proporcionar soporte y sellado a la conexión de la bomba al corazón. |
| Cánula arterial | Medtronic | 18Fr | Bypass cardiopulmonar |
| Atracurio | Hengrui Pharmaceutical | - | Anestesia y otros |
| Pinzas planas atraumáticas | SureMed | GF04021-25 | |
| Pinzas planas atraumáticas | SureMed | GF04021-25 | |
| Pinzas microquirúrgicas tipo pluma con mango equilibrado | Sinoview | FC12010-21 | |
| Cerdos juveniles de la raza terrestre | Instituto de Zoología, Academia China de Ciencias, Instalación de Investigación de Grandes Animales del Norte | - | Animales experimentales |
| Analizador de gases sanguíneos | Ediagnosis | PT1000 | Anestesia y otros |
| Tirador de cables | Cor-Heart | - | Accesorio quirúrgico. Se usa durante la cirugía para extraer el cable percutáneo del cuerpo. |
| Circuito de bypass cardiopulmonar | Medtronic | B-HL-159 | Bypass cardiopulmonar |
| Catéter venoso central | Baihe Medical | - | Anestesia y otros |
| Charger Base | Cor-Heart | - | Componente externo. Carga la batería. |
| Tiras de prueba PT CoaguChek XS | Roche | 4015630936854 (EAN) | Monitorización INR |
| Adaptador de comunicación | Cor-Heart | - | Componente externo opcional, reutilizable. Permite la conexión de comunicación entre el monitor y el controlador. |
| Protector de conector | Cor-Heart | - | Componente externo. Se usa para reforzar la conexión entre el cable percutáneo y el cable controlador y evitar la rotación o aflojamiento del conector. |
| Manga de sello del conector | Cor-Heart | - | Accesorio quirúrgico. Se utiliza durante la cirugía para conectar el tirador de cable al cable percutáneo y asegurar la integridad del sellado. |
| Controlador | Cor-Heart | - | Componente externo. Se conecta y monitoriza el funcionamiento de la bomba, proporcionando funciones de alarma para detectar anomalías. |
| Cuchillo de perforación | Cor-Heart | - | Accesorio quirúrgico. Se utiliza durante la cirugía para crear una abertura en el ápice cardíaco. |
| Pinzas curvas | SureMed | GC01002-16 | |
| Pinzas curvas | SureMed | GC01002-12 | |
| Pinzas curvas | SureMed | GC01002-16 | |
| Filtro desechable de microembolos sanguíneos | Sansin | FAF-2 | Bypass cardiopulmonar |
| Filtro de depósito sanguíneo desechable | Sansin | FCR300K | Bypass cardiopulmonar |
| Sistema desechable de administración de cardioplejia | Medtronic | XP41 | Bypass cardiopulmonar |
| Dopamina | Jiuan Pharmaceutical | - | Anestesia y otros |
| Trompa endotraqueal | Medicina Yaxin | YS-0000 | Anestesia y otros |
| Epinefrina | Jinyao Pharmaceutical | - | Anestesia y otros |
| Pinzas finas de disección | SureMed | GC01090-20 | |
| Pinzas de disección fina | SureMed | GC01090-20 | |
| Máquina corazón-pulmón | LivaNova | S5 | Bypass cardiopulmonar |
| Heparina | Farmacéutica del Norte de China | - | Anestesia y otros |
| Cubo de hielo | SureMed | GQ13018-00D | |
| Cubo de hielo | SureMed | GQ13018-00D | |
| Bomba de infusión | Sino MDT | SN-C8 | Anestesia y otros |
| Tira reactiva INRatio PT/INR | HemoSense | REF:0100071 | Monitorización INR |
| Catéter intravenoso | KDL | 16G-26G | Anestesia y otros |
| Isoflurano | Lunan Pharmaceutical | - | Anestesia y otros |
| Isoproterenol | Harvest Pharmaceutical | - | Anestesia y otros |
| Solución de Ringer lactada | Kelun Pharmaceutical | - | Anestesia y otros |
| Gran cuenca | SureMed | GQ13033-00D | |
| Gran cuenca | SureMed | GQ13033-00D | |
| Laringoscopio | Hanfeiyl | TD-C-III | Anestesia y otros |
| Inyección de clorhidrato de lidocaína | Kelun Pharmaceutical Co., Ltd | H20057816 | |
| Sulfato de magnesio para inyección | Zdjt Pharmaceutical Co., Ltd | H20051792 | |
| Sierra médica eléctrica para esternón | Jingdong xiji | HF-X01 | |
| Sierra médica para esternón, sierra eléctrica para esternón | Jingdong xiji | HF-X01 | |
| Separador de esternón de tamaño medio | SureMed | GR04130-00 | |
| Solución de St. Thomas modificada | Hecho por él mismo | - | Anestesia y otros |
| Monitor/Ordenador | Cor-Heart | - | Componente externo opcional, reutilizable. Se conecta al controlador y a la bomba de asistencia ventricular para la configuración y operación. |
| Monitor multiparámetro | Mindray | Benoversión N17 | Anestesia y otros |
| Pasador de aguja para suturas de cordón de bolsa | SureMed | GR04074-00 | |
| Noradrenalina | Harvest Pharmaceutical | - | Anestesia y otros |
| Cánula de Salida | Cor-Heart | - | Componente implantado. Se conecta fijamente al recipiente artificial y le proporciona protección. |
| Cartucho de prueba PCL ACT | Laboratorio de Instrumentación | 257 | |
| Retractor pediátrico del esternón | SureMed | GR04114-00 | |
| Inyección de cloruro de potasio | Kelun Pharmaceutical Co., Ltd | H42021164 | |
| Adaptador de alimentación | Cor-Heart | - | Componente externo. Proporciona conexión de alimentación eléctrica al Sistema de Asistencia del Ventricular Izquierdo. |
| Protamina sulfato | Youcare Pharmaceutical | - | |
| Introductor de sutura de cordón de bolsa | SureMed | GR04074-00 | |
| Paquete de baterías de litio recargables | Cor-Heart | - | Componente externo. Suministra energía al Sistema de Asistencia Ventricular Izquierda (LVAS). |
| Pinzas mágicas atraumáticas de Resano | Sinoview | FC25501-23S | |
| Pinzas de ángulo recto | SureMed | GC01110-14 | |
| Pinzas de ángulo recto | SureMed | GC01089-18 | |
| Pinza de ángulo recto | SureMed | GC01110-14 | |
| Pinza de ángulo recto | SureMed | GC01089-18 | |
| Cuenca pequeña | SureMed | - | |
| Inyección de bicarbonato de sodio | Kelun Pharmaceutical Co., Ltd | H20043739 | |
| Inyección de Ringer de lactato sódico | Zhejiang Tianrui Pharma | H20033783 | |
| Separador esternal (tamaño medio) | SureMed | GR04130-00 | |
| Pinzas rectas | SureMed | GC01001-12 | |
| Pinzas rectas | SureMed | GC01001-16 | |
| Pinzas rectas | SureMed | GC01001-12 | |
| Pinzas rectas | SureMed | GC01001-16 | |
| Sutura 5-0 Prolene BB | Ethicon | - | |
| Sutura Prolene Blum 4-0 SH 36 | Ethicon | - | |
| Suturas 2-0 Prolene Blu M SH | Ethicon | - | |
| Suturas BB 4-0 Prolene | Ethicon | - | |
| Sonda de temperatura | 3M | - | Anestesia y otros |
| Tetraspan 6% | B. Braun | L6511 (Ecobag) | |
| Pinzas de amígdalas | SureMed | GC09009-20D | |
| Portaagujas de mango circular de carburo de tungsteno | SureMed | GN01013-22K | |
| Portaagujas de mango circular de carburo de tungsteno | SureMed | GN01013-22K | |
| Portaagujas de mango circular de carburo de tungsteno | SureMed | GN01010-22K | |
| Cánula venosa | Medtronic | 28Fr, 32Fr | Bypass cardiopulmonar |
| Ventilador | Mindray | SV300 | Anestesia y otros |
| Bomba de asistencia ventricular | Cor-Heart | - | Una especie de bomba centrífuga de levitación magnética. Componente implantado. Implantado en el corazón para ayudar a la circulación sanguínea. |
Referencias
- Nickel, I., et al. Deactivation of LVAD support for myocardial recovery-surgical perspectives. J Heart Lung Transplant. 43 (9), 1489-1500 (2024).
- Burkhoff, D., Topkara, V. K., Sayer, G., Uriel, N. Reverse remodeling with left ventricular assist devices. Circ Res. 128 (10), 1594-1612 (2021).
- Burkhoff, D., Klotz, S., Mancini, D. M. LVAD-induced reverse remodeling: basic and clinical implications for myocardial recovery. J Card Fail. 12 (3), 227-239 (2006).
- Meissner, F., et al. Intra-aortic band impairs transapical device implantation in a pig: a case report. BMC Vet Res. 19 (1), 212(2023).
- Sakota, D., et al. Left ventricular assist device mode: co-pulse left ventricular unloading in a working mode of ex vivo heart perfusion. J Heart Lung Transplant. 42 (6), 707-715 (2023).
- Watanabe, K., Shih, R. Update of pediatric heart failure. Pediatr Clin North Am. 67 (5), 889-901 (2020).
- Howard, T. S., et al. Leadless pacemaker implantation in an adolescent with durable LVAD support. Pediatr Cardiol. , (2025).
- Schweiger, M., Miera, O. Not little adults: outcomes in pediatric intracorporeal LVAD patients. J Heart Lung Transplant. 43 (1), 182-183 (2024).
- Almond, C. S., et al. A prospective multicenter feasibility study of a miniaturized implantable continuous flow ventricular assist device in smaller children with heart failure. J Heart Lung Transplant. 43 (6), 889-900 (2024).
- Beltramo, F., et al. Validation of an ultrasound cardiac output monitor as a bedside tool for pediatric patients. Pediatr Cardiol. 37 (1), 177-183 (2016).
- Pagani, F. D., et al. Concomitant surgical procedures and aspirin avoidance with left ventricular assist device therapy. JACC Heart Fail. 13 (7), 1-13 (2025).
- Lilja, D., et al. Detection of inflow obstruction in left ventricular assist devices by accelerometer: a porcine model study. J Heart Lung Transplant. 42 (8), 1005-1014 (2023).
- Santiago, A., et al. Design and execution of a verification, validation, and uncertainty quantification plan for a numerical model of left ventricular flow after LVAD implantation. PLoS Comput Biol. 18 (6), e1010141(2022).
- De Lazzari, C., Ferrari, G., Mimmo, R., Tosti, G., Ambrosi, D. A desk-top computer model of the circulatory system for heart assistance simulation: effect of an LVAD on energetic relationships inside the left ventricle. Med Eng Phys. 16 (2), 97-103 (1994).
- Yu, X. Y., Shi, J. W., Zang, Y. R., Zhang, J. M., Liu, Z. G. Factors influencing the functional status of aortic valve in ovine models supported by continuous-flow left ventricular assist device. Artif Organs. 46 (7), 1334-1345 (2022).
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