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El protocolo de investigación fue aprobado por el Comité de Ética del Segundo Hospital Afiliado, Facultad de Medicina de la Universidad de Zhejiang (Nº 2025-0581). Todos los experimentos y procedimientos se realizaron según la Declaración de Helsinki (revisada en 2013). Este estudio retrospectivo incluyó a 47 pacientes hospitalizados por LETM en el Segundo Hospital Afiliado de la Facultad de Medicina de la Universidad de Zhejiang. Este estudio ha obtenido el consentimiento informado de todos los participantes. Este estudio de cohorte retrospectiva incluyó a todos los pacientes elegibles. Se realizó un análisis de potencia a posteriori para evaluar la adecuación del tamaño de la muestra. Los resultados mostraron que, con el tamaño de muestra actual, el tamaño del efecto observado fue 1,213515, y la potencia obtenida (1-β err probable) fue 0,9659161, lo que supera el umbral convencional de 0,8. Así, el tamaño de la muestra cumple con los requisitos estadísticos.
Reclutamiento de pacientes
Criterios de inclusión: Incluir a pacientes que sufrían ataques agudos, que disponen de datos clínicos completos, cuyos sueros hayan dado negativo en anticuerpos MOG, AQP4 y GFAP, y cuyos segmentos afectados fueran mayores o iguales a tres18. Criterios de exclusión: Excluir a pacientes que experimentaron otras enfermedades que puedan causar discapacidad y a pacientes que habían aceptado efgartigimod en el inicioagudo 18. Recogida de información del paciente: Se registraron datos demográficos, incluyendo edad, sexo, duración de la enfermedad y longitud de los segmentos espinales implicados.
Tratamiento y evaluación clínica
Agrupan a los pacientes según sus respectivos regímenes de tratamiento. Los pacientes se dividieron en dos grupos: el grupo de tratamiento con efgartigimod (n = 11) y el grupo de tratamiento convencional (n = 36). En el grupo de efgartigimod, los pacientes recibieron administración de 400 mg de efgartigimod durante 2 semanas, junto con una infusión intravenosa de 1.000 mg de metilprednisolona mezclada con 500 mL de solución de glucosa al 10%, administrada durante un periodo de tratamientode 2 semanas 16. En el grupo de tratamiento tradicional, los pacientes fueron tratados con infusión intravenosa de 1.000 mg de metilprednisolona mezclada con 500 mL de solución de glucosa al 10% administrada durante un periodo de tratamientode 2 semanas 19.
Parámetros de evaluación clínica de los pacientes
La discapacidad de los pacientes se evaluó con una serie de índices, incluyendo la escala ampliada de estado de discapacidad (EDSS) y la escala de fragilidad clínica (SFC)20,21. La calidad de vida de los pacientes se evaluó con el Formulario Breve de la Encuesta de Salud-36 (SF-36), incluyendo función física (PF), salud mental (MH), dolor (PA), salud general (GH), vitalidad (VT), funcionamiento social (SF), rol emocional (ER) y rol físico (RP)22.
Medición de interleucina-6 (IL-6), IL-10 e IL-41
Se recogieron muestras de sangre en ayunas por la mañana. El suero se aisló de la sangre mediante centrifugación de 10 minutos a 1.000 x g y se almacenó a -80 °C para su posterior análisis. La duración del almacenamiento de todas las muestras osciló entre 6 y 48 meses.
Los niveles séricos de IL-6, IL-10 e IL-41 se midieron utilizando kits de ensayo inmunoenzimático ligado a enzimas (ELISA), siguiendo las instrucciones del fabricante (Tabla de Materiales). Equilibra todos los reactivos del kit ELISA a temperatura ambiente durante 20 minutos antes del ensayo. Se usaron pozos estándar, de muestra y de ciego. Se añadieron 50 μL de solución estándar a diferentes concentraciones (0-100 pg/mL) en los pozos estándar, 50 μL de la muestra de suero en los pozos de muestra y 50 μL de diluyente en los pozos en blanco. Se preparó un tampón de lavado diluyendo la solución concentrada con agua doble destilada en una proporción de 1:24. El buffer preparado se utilizó el mismo día para garantizar una eficiencia óptima de lavado.
Calculó el volumen de la solución de trabajo en función de los requisitos experimentales (100 μL por pozo). A los 15 minutos de su uso, centrifugó el anticuerpo biotinilado concentrado 100x a 7.150 x g durante 1 minuto y se diluyó con buffer de dilución de anticuerpos biotinilados en una proporción de 1:99 para lograr una concentración de trabajo 1x. Utilizé la solución de trabajo preparada inmediatamente para mantener su actividad. El conjugado HRP consistía en estreptavidina conjugada con HRP. Calculó el volumen requerido en función de los requisitos experimentales (100 μL por pozo), preparando entre 100 y 200 μL adicionales para asegurar una cantidad suficiente. A los 15 minutos de uso, centrifugó el conjugado de HRP concentrado 100x a 11.173 x g durante 1 minuto y luego se diluyó con buffer de dilución conjugado HRP en una proporción de 1:99 para lograr una concentración de trabajo 1x. Utilizé la solución de trabajo preparada de inmediato para preservar su actividad.
Se preparaban pozos estándar (100 μL de patrón diluido), pozos en blanco (100 μL de patrón y tampón de dilución de muestras) y pozos de muestra (100 μL de muestra de prueba diluida) en consecuencia. Después de añadir las soluciones, sella la placa con una membrana e incuba a temperatura ambiente durante 1,5 h. Después de la incubación, retira el líquido de los pozos sin lavarlo. Luego, se añadieron 100 μL de solución activa de anticuerpos biotinilados a cada pozo. Sellar la placa e incubar a 37 °C durante 1 hora para facilitar la unión del anticuerpo biotinilado a los complejos antígeno-anticuerpo. Tras la incubación, retira el líquido de los pozos y seca la placa con papel absorbente limpio. Llena cada pozo con 350 μL de tampón de lavado y deja reposar 1 minuto. Después de retirar el líquido, seca el plato de nuevo sobre papel absorbente. Repetí este procedimiento de lavado 4 veces.
Después del lavado, añade 100 μL de solución de trabajo conjugada enzimática a cada pozo. Sella la placa e incuba a 37 °C durante 30 minutos para permitir una unión completa entre el conjugado HRP y el anticuerpo biotinilado. Después de la incubación, retira completamente el líquido de los pozos y seca la placa con un papel absorbente limpio. Repite el procedimiento de lavado descrito 5 veces para eliminar completamente los conjugados enzimáticos no unidos y minimizar las reacciones inespecíficas. Después del lavado, añade 90 μL de la solución de sustrato a cada pozo. Sella la placa y incuba a 37 °C en la oscuridad durante aproximadamente 15 minutos. Precalenté el lector de microplacas durante 15 minutos para asegurar la precisión de la detección. Tras la incubación, se añadieron 50 μL de solución de parada a cada pozo para terminar el desarrollo del color y la reacción enzimática. Tras la interrupción de la reacción, se medía inmediatamente la densidad óptica (OD) a 450 nm de cada pozo, y los resultados se registraban utilizando un lector de microplacas para el análisis y cálculo de datos posteriores.
Análisis estadístico
Se realizó análisis estadístico sobre SPSS 27.0 y GraphPad Prism 8.4.3. Se utilizaron muestras independientes como la prueba t y la prueba χ2 para comparar datos iniciales entre ambos grupos. Se utilizó la prueba t por muestra emparejada o prueba de Wilcoxon para comparar las puntuaciones clínicas y las de calidad de vida antes y después del tratamiento. Además, se compararon los niveles séricos de IL-6, IL-10 e IL-41 antes e después del tratamiento utilizando una prueba t de muestra emparejada. Se realizó una comparación entre ambos grupos utilizando una prueba t de muestras independientes. Se utilizó el coeficiente de correlación de Pearson para medir la correlación entre los niveles de factores inflamatorios y el EDSS. Las diferencias se consideraron estadísticamente significativas en p < 0,05.