Información general
La paciente, una chica de 15 años, se presentó con fiebre de origen desconocido en octubre de 2022. Los episodios de fiebre ocurrían principalmente por la noche, con una temperatura máxima de 38,3 °C, y se acompañaban de dolor de garganta, escalofríos y fatiga. Los análisis iniciales revelaron una ligera disminución del recuento de glóbulos blancos, niveles normales de proteínas C-reactivas, linfocitos elevados y un nivel de EBV-ADN de 1,50 × 103 copias/mL, lo que llevó a un diagnóstico de mononucleosis infecciosa. Tras recibir tratamiento sintomático y de apoyo, sus síntomas mejoraron. Sin embargo, tres meses después, experimentó fiebre recurrente, con temperaturas que alcanzaron un máximo de 38,5 °C, junto con tos seca y la aparición de una masa de 1 cm × 1 cm en las regiones frontal y temporal izquierdas, además de múltiples ganglios linfáticos bilaterales agrandados. Las pruebas repetidas de EBV-ADN mostraron un nivel de 1,99 × 103 copias/mL, y una citología periférica reveló un 38% de linfocitos, compatible con un diagnóstico de CAEBV (cumpliendo los criterios diagnósticos: síntomas infecciosos persistentes durante más de 6 meses, elevación sostenida del EBV-ADN). A pesar del tratamiento con ganciclovir, antipiréticos y reemplazo de líquidos, sus síntomas persistieron. En febrero de 2023, el paciente experimentaba fiebre alta persistente, con temperaturas que superaban consistentemente los 40°C, junto con dolor en el pecho derecho y opresión en el pecho. La tomografía por emisión de positrones (PET-CT) reveló un engrosamiento del tejido blando subcutáneo con un aumento de la actividad metabólica en las regiones frontal, temporal y parietal izquierda. Además, se observó engrosamiento difuso de la pleura derecha con mayor actividad metabólica, múltiples ganglios hipermetabólicos y agrandados hasta los diafragmas bilaterales, y focos hipermetabólicos en el arco costal derecho y el hueso púbico izquierdo, lo que sugiere una alta probabilidad de afectación multisistémica por un tumor linfohematopoyético maligno (Figura 1A).
Una biopsia de la masa del cuero cabelludo reveló una patología compatible con ENKTL. La mayor parte del tejido de la biopsia mostró cambios necróticos, incluyendo necrosis del tejido muscular estriado. Se observaron células atípicas con núcleos grandes y de tinción oscura infiltrándose en las áreas que rodean vasos sanguíneos residuales, con abundantes restos nucleares en el fondo. Los hallazgos inmunohistoquímicos fueron los siguientes: CK (-), CD3 (+), CD5 (-), CD10 (-), CD4 (-), CD8 (+), CD2 (+), CD7 (-), CD43 (+), CD20 (-), CD56 (+), Granzyme B (+), TIA-1 (+), Ki-67 (alto índice de proliferación, ~90%), CD79a (-), CD34 (-), CD117 (-), TdT (-) y EBER (+) (Figura 2). La patología molecular confirmó la positividad del ARN codificado por el virus Epstein-Barr. Los resultados de la citología de médula ósea, la patología y la citometría de flujo no fueron relevantes. El paciente tenía linfadenopatía en una fase temprana, pero no se realizó biopsia de ganglios linfáticos, lo que hizo imposible determinar el momento inicial de inicio de la ENKTL. Diagnóstico final: ENKTL transformado de CAEBV.
Ciclo de quimioterapia
El paciente comenzó la quimioterapia con el régimen VDLP el 8 de marzo de 2023, que incluía vincristina (2 mg en los días 1, 8, 15 y 22), el liposoma de doxorrubicina (20 mg en los días 1, 8, 15 y 22), pegaspargase (en los días 2 y 16) y prednisona (80 mg en los días 1–21). Simultáneamente, se mejoraron los tratamientos sintomáticos y de apoyo. Tras la quimioterapia, el paciente desarrolló neutropenia con fiebre y función de coagulación anormal. Estas complicaciones se gestionaron con terapia antiinfecciosa utilizando cefoperazona-sulbactam, meropenem y caspofungina. También se administraron transfusiones de productos sanguíneos, incluyendo crioprecipitado, plasma y plaquetas. Tras el primer ciclo de quimioterapia, hubo una ligera reducción de los ganglios linfáticos del paciente, pero la fiebre reapareció de forma intermitente. El paciente cumplió 6 de los 8 criterios diagnósticos para HLH según las directrices de HLH-2004: (1) fiebre persistente; (2) CD25 soluble elevado (4213 U/mL); (3) disminución de la actividad de las células NK (13,8%); (4) ferritina sérica 742,5 ng/mL (normal: 13–150 ng/mL); (5) esplenomegalia; (6) hemofagocitosis en frotis de médula ósea, cumpliendo los criterios diagnósticos deHLH 17. El 7 de abril de 2023, el régimen de quimioterapia se cambió a MEAD (motivo: El régimen de MEAD contiene agentes antitumorales y antiinflamatorios más potentes como el liposoma de mitoxantrona y el etopósido, que son más adecuados para linfomas complicados por HLH), que comprende el liposoma de mitoxantrona (30 mg el día 1), etopósido (100 mg en los días 2–4 y 15–16), dexametasona (10 mg en los días 2–4 y 15–16), y citarabina (100 mg en los días 2–5). El 10 de abril de 2023, la fiebre del paciente mejoró (máximo 37,5 °C), indicando una respuesta inicial. La fiebre reapareció el 17 de abril de 2023, complicada por la infección. Los inhibidores de puntos de control inmunitarios se añadieron el 26 de abril de 2023, tras lo cual la fiebre desapareció por completo. El 4 de mayo de 2023, el paciente recibió el régimen de quimioterapia Gemox combinado con pegaspargase (motivo: El régimen Gemox es un régimen de quimioterapia de primera línea para ENKTL, y la adición de pegaspargase puede potenciar aún más la eficacia antitumoral para consolidar la RC). Esto incluyó gemcitabina (1,5 g en los días 1 y 8), pegaspargase (3750 UI el día 2) y oxaliplatino (150 mg el día 1). Además, se implementó un régimen de HCH04 a corto plazo (etopósido 100 mg en los días 1–2 y dexametasona 10 mg en los días 1–7) para tratar la HLH. Durante la fase de supresión de la médula ósea, el paciente desarrolló una infección abdominal, que fue siendo controlada gradualmente con tratamiento, incluyendo tigeciclina, cefoperazona-sulbactam y caspofungina para tratamiento antifúngico. Una repetida tomografía PET-TC el 27 de mayo de 2023 mostró una resolución completa de las lesiones, y se evaluó que el paciente había alcanzado la remisión completa (Figura 1B). El 5 de junio de 2023 se reinició la quimioterapia de consolidación con gemcitabina (1,5 g el día 1), oxaliplatino (150 mg el día 1), pegaspargasa (3750 UI el día 2), VP-16 (etopósido, 100 mg en los días 1–2) y dexametasona (10 mg en los días 1–7). También se administraron inyecciones intratecales de citarabina y metotrexato mediante punción lumbar para prevenir la afectación del sistema nervioso central por linfoma. Con un donante totalmente compatible con HLA identificado, el paciente procedió a someterse a una allo-HSCT.
Recogida de células madre e implantación
El paciente tenía un donante hermano completamente compatible, con un HLA de compatibilidad de 10/10. La donante era la hermana del paciente, de 25 años, ambas con grupo sanguíneo A+. Para movilizar células madre, el donante fue inyectado subcutáneamente con factor estimulante de colonias de granulocitos a 5 μg/kg dos veces al día durante cuatro días. En la mañana del quintodía, se recogieron 200 mL de suspensión de células madre periféricas usando un separador de células sanguíneas. El día del trasplante, se transfundieron 170 mL de la suspensión recogida de nuevo al paciente. Las células infundidas incluían un recuento celular CD34+ de 2,94 × 106/kg y un recuento de células nucleadas de 5,7 × 108/kg. Además, se reservaron tres bolsas de células madre, cada una con 10 mL, con recuento celular CD34+ de 0,17 × 106/kg y recuento de células nucleadas de 0,34 × 108/kg. Tras el trasplante, se realizó una infusión de linfocitos con donante como medida preventiva contra la recurrencia. El estado de injerto del paciente será monitorizado a los 1, 2, 3, 6 y 12 meses tras el trasplante. Dado que el donante y el receptor son del mismo sexo, se utilizará la huella digital de ADN mediante tecnología PCR para monitorizar el quimerismo. El periodo de seguimiento continuará hasta septiembre de 2024, permitiendo el análisis de la reconstitución hematopoyética, la aparición de GVHD aguda y crónica u otras complicaciones, así como el seguimiento de los resultados de imagen, los niveles de EBV-ADN y la tasa de quimerismo.
Proceso de trasplante y resultados
El paciente completó la preparación previa al trasplante y recibió el régimen de condicionamiento BUCY mejorado con liposomas de mitoxantrona (justificación para añadir el liposoma de mitoxantrona: tiene una fuerte actividad antitumoral, puede potenciar la eliminación de células tumorales residuales y células infectadas con EBV, y sinergiza con busulfano y ciclofosfamida para mejorar la eficacia del trasplante; administrado en el día -8, con un intervalo de 8 días antes de la infusión de células madre, permitiendo tiempo suficiente para el metabolismo del fármaco (vida media de aproximadamente 40 horas) sin afectar al injerto de células madre de donantes). El 7 de julio de 2023, se completó con éxito la infusión de células madre, seguida de cuidados de apoyo como antiinfecciones, profilaxis contra la GVHD y promoción de la recuperación hematopoyética. Alcuarto día tras el trasplante, el paciente experimentó dolor abdominal, fiebre y neutropenia, que se complicaron por una infección abdominal. Tras el tratamiento con meropenem y tigeciclina para la infección bacteriana y caspofungina para la terapia antifúngica, los síntomas de la paciente mejoraron y su temperatura corporal se normalizó. El injerto de neutrófilos y plaquetas ocurrió al día 12 tras el trasplante, y un mes después, su recuento sanguíneo completo se normalizó. La biopsia de médula ósea mostró proliferación activa de células nucleadas, y la huella digital de ADN reveló una tasa de injerto de células donantes del 100%. El paciente fue monitorizado durante más de un año tras el trasplante y no se observaron complicaciones como GVHD aguda o crónica ni infecciones. El seguimiento continúa hasta septiembre de 2024. Las tomografías PET-TC realizadas a los 3 y 12 meses tras el trasplante mostraron que el paciente permanecía en remisión completa. El ADN EBV en el plasma fue indetectable tras el trasplante, y se consideró normal un nivel ocasional bajo de ADN de EBV en células sanguíneas (Figura 3). La huella digital de ADN a 1 mes y 6 meses tras el trasplante confirmó un 100% de injerto de donante, demostrando hematopoyeesis completa con donante (Figura 4). El análisis del subconjunto de linfocitos mostró que las células CD3+CD8+ y las células CD56+ infectadas con EBV eran indetectables tras el trasplante (Figura 4).

Figura 1: Resultados de imágenes PET-CT durante el tratamiento y el seguimiento. (A) Quimioterapia preinducción PET-CT imagen que muestra afectación del linfoma en el tejido blando subcutáneo de la región frontotemporal-parietal izquierda, pleura derecha y ganglios linfáticos bajo los diafragmas bilaterales con aumento de la actividad metabólica. (B) Quimioterapia postinducción PET-TC que muestra la resolución completa de todas las lesiones, compatible con la remisión completa. (C,D) Imágenes de seguimiento PET-CT obtenidas a los 3 meses (C) y 12 meses (D) después del trasplante, demostrando remisión completa sostenida. Por favor, haz clic aquí para ver una versión ampliada de esta figura.

Figura 2: Hallazgos patológicos e inmunohistoquímicos de la masa del cuero cabelludo. El tejido de la biopsia mostró cambios necróticos; células hipercromáticas grandes atípicas infiltradas alrededor de vasos sanguíneos residuales con abundantes restos nucleares en el fondo. Inmunohistoquímica: CK(-), CD3(+), CD5(-), CD10(-), CD4(-), CD8(+), CD2(+), CD7(-), CD43(+), CD20(-), CD56(+), Granzyme B(+), TIA-1(+), Ki-67 (índice de proliferación ~90%), CD79a(-), CD34(-), CD117(-), TdT(-), EBER(+), consistente con linfoma extranodal asociado al EBV con células NK/T. Barras de escala: 100 μm. Por favor, haga clic aquí para ver una versión ampliada de esta figura.

Figura 3: Monitorización dinámica de los niveles de ADN del virus de Epstein–Barr. (A) Niveles plasmáticos de ADN del virus de Epstein–Barr (EBV) a lo largo del tiempo. El EBV-ADN plasmático permaneció indetectable en todos los momentos posteriores al trasplante, lo que indica la ausencia de reactivación del EBV. (B) Niveles celulares de EBV-ADN a lo largo del tiempo. Se detectó ocasionalmente ADN celular de bajo nivel de EBV tras el trasplante sin aparente significación clínica. Por favor, haz clic aquí para ver una versión ampliada de esta figura.

Figura 4: Análisis de quimerismo post-trasplante y detección de subconjuntos de linfocitos infectados con el virus de Epstein–Barr. (A) Perfil de huella digital de ADN pre-trasplante del receptor. (B) Análisis de huellas genéticas de ADN al mes siguiente del trasplante, que demuestra quimerismo del donante al 100% y hematopoyesis completa derivada del donante. (C) Análisis de subconjuntos de linfocitos pre-trasplante que muestra infección por el virus de Epstein–Barr (EBV) en células CD3+CD8+ y CD56+. (D) Análisis del subconjunto de linfocitos tras el trasplante que no muestra células detectables infectadas por EBV CD3+CD8+ o CD56+, lo que indica la eliminación completa de la infección por EBV. Por favor, haz clic aquí para ver una versión ampliada de esta figura.