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Cincuenta ratas machos Sprague-Dawley libres de patógenos específicos (FPS) (con un peso de 180–200 g) fueron suministradas por el Centro Provincial de Prevención y Control de Enfermedades de Hubei (Academia Provincial de Medicina Preventiva de Hubei) (Wuhan, China; Certificado de Licencia de Animal Nº SCXK(JB) 2023-0005). Todos los procedimientos experimentales con animales se llevaron a cabo de estricta conformidad con la Guía de los Institutos Nacionales de Salud para el Cuidado y Uso de Animales de Laboratorio (8ª edición, 2011). El protocolo del estudio fue revisado y aprobado por el Comité de Ética Experimental de Animales de Tianjin Genink Biological Technology Co., Ltd. (Nº de Aprobación: GENINK-20250074). Los principales reactivos y equipos utilizados en este estudio se enumeran en la Tabla de Materiales adjunta.
Cultivo celular
La línea celular humana de artritis reumatoide (AR) MH7A fue cultivada en el medio Modified Eagle Medium (DMEM) de Dulbecco, suplementado con suero fetal bovino (FBS) al 10% (v/v) y mantenido a 37 °C en una incubadora humidificada con 5% de CO₂17.
Animales y tratamientos
Los animales se mantenían en una instalación estándar libre de patógenos específicos (SPF) con un sistema de jaula ventilada individualmente (IVC) bajo condiciones ambientales estrictamente controladas: temperatura climatizada de 21,0–25,0 °C, humedad relativa de 40–70%, fotoperiodo de 12 horas y renovación completa del aire 15 veces por hora. Tras un periodo de aclimatación de 7 días, las ratas se dividieron aleatoriamente en seis grupos experimentales, reservando ratas adicionales como respaldo para circunstancias imprevistas. Se indujo un modelo agudo de adyuvante inflamatorio (AA) mediante la inyección subcutánea de 100 μL de adyuvante de Freund completo (CFA; 10 mg·mL-1) en la pata traseraderecha 18. Los grupos experimentales se diseñaron de la siguiente manera: grupo control en blanco, grupo modelo AA, grupo control positivo (metotrexato, 0,9 mg·kg-1)19 y tres grupos de tratamiento con smirnotina A administrados a niveles bajos (0,962 mg·kg-1), medios (1,923 mg·kg-1) y dosis altas (3,846 mg·kg-1) según el valor IC₅₀.
Predicción de enfermedades y objetivos compuestos
Según el cribado preliminar de actividad realizado por nuestro grupo de investigación, se seleccionaron para la investigación seis compuestos que demostraron bioactividad favorable: cinco alcaloides diterpenoides (Figura 3), benzoilaconina (1), 14-benzoil-8-O-metilaconina (2), (−)-(A-b)-14α-benzoiloxi-N-etil-13β, 15α-dihidroxi-1α,6α,8β,16β,18-pentametoxiaconitano (3), smirnotina A (4) y aconitina (5), junto con un derivado de cumarina, escopoletina (6)20. Las notaciones simplificadas del sistema de entrada molecular de entrada de líneas (SMILES) de estos compuestos se recuperaron de la base de datos PubChem (https://pubchem.ncbi.nlm. nih.gov/) o se generaron usando ChemDraw 18.0. Estas notaciones fueron posteriormente importadas a la base de datos SwissTargetPrediction (https://swisstargetprediction.ch/), con la especie especificada como "Homo sapiens". Se identificaron posibles objetivos seleccionando genes con un valor de probabilidad > 0, y se recogieron los correspondientes Nombres de Objetivo e IDsUniProt 21,22.
Redes PPI
Los genes objetivo superpuestos fueron analizados mediante la red de interacción proteína-proteína (PPI) utilizando la base de datos STRING (https://string-db.org/)23. Los datos resultantes, en formato TSV, se importaron entonces a Cytoscape 3.9.1 para su visualización y análisis adicionales. Los parámetros topológicos de la red se calculaban utilizando el plugin integrado Network Analyzer . En la red visualizada, el tamaño del nodo y la intensidad del color se asignaron al valor de grado, mientras que el grosor de los bordes reflejaba la intensidad de la interacción entre objetivos. Los objetivos principales se identificaron y clasificaron según su gradode asociación 24.
Análisis de enriquecimiento de vías de la Ontología Génica (GO) y la Enciclopedia de Genes y Genomas de Kioto (KEGG)
Los objetivos comunes fueron enviados a la base de datos Metascape (https://metascape.org) para análisis de enriquecimiento de vías GOy KEGG 25. Los resultados funcionales se visualizaron utilizando la plataforma de bioinformática WeiShengXin (https://www.bioinformatics.com.cn).
La construcción de la red de las "vías de componentes activos de fármacos-objetivos-enfermedades"
Los componentes activos y sus objetivos correspondientes fueron evaluados sistemáticamente, seguidos de un análisis de enriquecimiento funcional para identificar las principales vías de señalización y sus objetivos asociados. Estos elementos se integraron posteriormente utilizando Cytoscape 3.9.1 para construir una red integral de "fármaco–componentes activos–enfermedad–vías". Posteriormente se realizó un análisis topológico con la herramienta Network Analyzer , en la que los nodos se clasificaron según parámetros clave, incluyendo el Grado y la Intermediedad, para identificar elementos centrales dentro de la red.
Acoplamiento molecular de compuestos clave a objetivos centrales
Las estructuras tridimensionales de las proteínas objetivo centrales, incluyendo ESR1 (9BQE), PTGS2 (5F19), EGFR (2XKN), GSK3B (5HLN), SRC (5MTJ) y ERBB2 (8U8X), fueron extraídas del Banco de Datos de Proteínas RCSB (http://www.rcsb.org/; consultado el 7 de mayo de 2025). Las estructuras compuestas se construyeron en ChemDraw (versión 18.0) y posteriormente se convirtieron en formato SDF tridimensional usando el módulo integrado Chem3D. Los resultados del acoplamiento molecular se visualizaron con PyMOL, y las afinidades de unión se evaluaron según la energía de interacción (kcal·mol-1)26.
Ensayo de viabilidad celular
Las células MH7A en la fase de crecimiento logarítmico se sembraron en placas de 96 pozos con una densidad de 5 × 103 células por pozo. Al alcanzar el 80% de confluencia, las células fueron tratadas primero con lipopolisacáridos (LPS) (1 μg·mL-1) durante 6 horas y luego expuestas a diferentes concentraciones de smirnotina A (5, 25, 50, 75 y 100 μg·mL-1). Cada grupo de tratamiento se preparó en cuadruplicado e incubó durante 24 horas a 37 °C por debajo del 5% de CO₂. Tras la incubación, se añadieron 100 μL de solución al 10% de CCK8 a cada pozo, seguidos de una incubación adicional a 37 °C durante 2 horas. La absorbancia a 450 nm se medía usando un lector de microplacas.
Ensayo ELISA en células MH7A
El sobrenadante se recogió por centrifugación a 2000 × g durante 20 minutos a 4 °C. Los niveles de citocinas inflamatorias, incluyendo IL-6, IL-1β, TNF-α e IL-10, se cuantificaron en el sobrenadante utilizando los correspondientes kits ELISA, estrictamente según las instrucciones del fabricante.
Medición del grado de hinchazón de los dedos
El grado de hinchazón de la pata trasera derecha se evaluó midiendo el volumen de la pata cada 3 días tras el modelado. Se tomaron dos mediciones por rata y se promediaron. La respuesta inflamatoria se cuantificó como el porcentaje de aumento del volumen de las patas en relación con la línea inicial.

Medición del índice de órganos
Todas las ratas fueron anestesiadas y eutanasiadas 24 horas después de la administración final. Se adopta el método humano reconocido por la comunidad veterinaria internacional. Primero, se utiliza una alta concentración (5%) de isoflurano para anestesiar profundamente al animal. Una vez que pierde la conciencia y todos los reflejos, el pecho se abre y el corazón se corta, asegurando que el animal muera sin dolor y sin ninguna sensibilidad. El bazo y el timo fueron extirpados y pesados de inmediato. Tras enjuagar con solución salina normal, se eliminó el exceso de humedad en las superficies del tejido aplicándolo con papel filtro, y se registraron los pesos húmedos de losórganos 27,28.

Hematoxilina y eosina (HE)
Para preservar la integridad de las muestras de tejido de las patas, se recogió y almacenó toda la porción distal respecto a la articulación del tobillo derecho de cada rata. Para la sección, se utilizó tejido hinchado de las patas. El procedimiento de muestreo fue el siguiente: se disecó completamente el tejido aproximadamente 1 cm por encima de la articulación del tobillo derecho, se retiró el pelaje y se cortó el hueso en el extremo proximal. La muestra fue fijada inmediatamente en una solución de paraformaldehído al 10%. Tras la fijación, el tejido se colocó en una solución descalcificante de EDTA al 15%. La descalcificación se monitorizaba cada 3 días y la solución se renovaba según fuera necesario hasta que el tejido se ablandó, indicando la finalización de la descalcificación. El tejido se deshidrató mediante una serie graduada de etanol (75% durante 4 horas, 85% durante 2 horas, 90% durante 1,5 horas, 95% durante 1 hora y dos cambios de etanol al 100 durante 0,5 horas). Las secciones se desparafinizaron, rehidrataron con etanol, se teñieron con hematoxilina durante 10 minutos, se enjuagaron con agua del grifo, se diferenciaron en ácido clorhídrico-etanol durante 10 s, se enjuagaron con agua del grifo, se azularon, se enjuagaron de nuevo, se sumergieron en etanol al 85% durante 5 minutos, se contrateñieron con eosina durante 5 minutos, se enjuagaron con agua del grifo durante 3 s, se deshidrataron, se limpiaron y se montaron para laobservación 29.
Ensayo ELISA de suero para ratas
Se centrifugaron muestras de sangre a 2000 × g durante 20 minutos a 4 °C, y el sobrenadante resultante se recogió para análisis de citocinas. Las concentraciones de IL-1β, IL-6 y TNF-α se determinaron utilizando kits ELISA comerciales, estrictamente conforme a los protocolos del fabricante. Se generó y ajustó una curva estándar usando el software cvxpt32, y los niveles de expresión de cada citocina se calcularon interpolando los valores de absorbancia en la ecuación correspondiente de la curva estándar. Las concentraciones finales de proteínas se calcularon a partir de las mediciones experimentales reales.
Análisis cuantitativo de la reacción en cadena de la polimerasa (qPCR)
El ARN total se aisló de células sinoviales utilizando el reactivo TRIzol, lográndose la separación de fases mediante adiciónde cloroformo 30. A continuación, se empleó un kit comercial de transcripción inversa para sintetizar ADNc a partir del ARN aislado, siguiendo estrictamente las instrucciones del fabricante. qRT-PCR se realizó utilizando un reactivo SYBR Premix. Se utilizó gliceraldehído-3-fosfato deshidrogenasa (GAPDH) como gen de referencia endógeno, y los niveles relativos de expresión génica se calcularon mediante el método 2-ΔΔCt . Se utilizaron las siguientes secuencias de cebadores: GAPDH Adelante: ACAGCACAGGGTGTGGGGAC, y GAPDH Reversa: TTTGAGGGTGCAGCGAACTT; IL-17A Adelante: CTGATGCTGTTGCTGCTGCTACTGA, e IL-17A Reversa: TGGAACGGTTGAGGTAGTCTGA; TRAF6 Adelante: ACATTTCCCTCTTTGTCCACACAC, y TRAF6 Reversa: TTAGCATCCATGACCTCTTCGT; IL-10 Forward: CTGCAGGACTTTAAGGGTTACTT, y IL-10 Reverse: CTTGCTTTTATTCTCACAGGGA; IL-1β Adelante: CCTGTGTGATGAAAGACGGC, e IL-1β Reversa: TATGTCCCGACCATTGCTGT; IL-6 Adelante: GTTGCCTTCTTGGGACTGATG, e IL-6 Reversa: TACTGGTCTGTTGTGTGGT.
Extracción de proteínas y western blot
El tejido sinovial se lisó en un tampón de radioinmunoprecipitación (RIPA) suplementado con fosfatasa/inhibidor de proteasas, y las concentraciones de proteínas se midieron con un kit de ensayo de ácido bicinconínico (BCA). Para el Western bloting, los lisados que contenían cantidades iguales de proteína fueron sometidos a electroforesis en gel de dodecilo sulfato de sodio-poliacrilamida (SDS-PAGE) y posteriormente transferidos a membranas de fluoruro de polivinilideno (PVDF). Tras bloquear con leche desnatada al 5% en suero salino tamponado con Tris-buffer y 0,1% Tween (TBST) durante 2 horas a 25 °C, las membranas se incubaron durante la noche a 4 °C con anticuerpos primarios (GAPDH 1:50000; P-PI3K 1:1000; PI3K 1:1000; P-AKT 1:3000; AKT 1:6000). Tras un lavado extenso con TBST, las membranas reaccionaron con anticuerpos secundarios conjugados con peroxidasa de rábano picante (HRP) (Anti-Mouse IgG 1:10000; Anti-rabbit IgG 1:1000) durante 2 horas a temperatura ambiente. Tras otra serie de lavados con TBST, se visualizaron las bandas proteicas utilizando un sustrato de quimioluminiscencia mejorada (ECL). Las intensidades de banda se cuantificaban con el software ImageJ y se normalizaban a GAPDH como control de carga.
Análisis estadístico
Todos los datos se analizaron utilizando el software Graphpad Prism 9.5 y se presentan como la media ±± desviación estándar. Se realizaron comparaciones estadísticas utilizando ANOVA unidireccional cuando era apropiado. Se consideró estadísticamente significativo un valor p inferior a 0,05. Comparado con el grupo de control: *p < 0,05, **p < 0,01, p < 0,001 y p < 0,0001; Comparado con el grupo Modelo/LPS: #p < 0,05, ##p < 0,01, ###p < 0,001 y ####p < 0,0001.