Artículo de método

Régimen de ejercicio estructurado en hipertensión pulmonar - insuficiencia ventricular derecha en un modelo ovino

DOI:

10.3791/70664

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5 de mayo de 2026

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1Department of Cardiac Surgery, Vanderbilt University Medical Center, 2Vanderbilt University, 3Department of Pulmonary Medicine, Vanderbilt University Medical Center, 4Department of Thoracic Surgery, Vanderbilt University Medical Center, 5Department of Biomedical Engineering, Vanderbilt University

En este artículo

Resumen

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Este manuscrito describe el régimen estructurado de ejercicio desarrollado para estudiar los efectos del ejercicio en la fisiopatología de la hipertensión pulmonar y la insuficiencia cardíaca ventricular derecha en un modelo ovino.

Resumen

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

La insuficiencia cardíaca derecha (RHF) es una causa significativa de morbilidad y mortalidad por hipertensión pulmonar (HP). Para comprender mejor la fisiopatología y las implicaciones del estrés inducido por el ejercicio, implementamos un régimen de ejercicio para caracterizar aún más esta enfermedad utilizando nuestro modelo ovino previamente desarrollado de hipertensión pulmonar crónica con insuficiencia ventricular derecha (PH-RVF). Con este fin, ocho ovejas cruzadas de Dorset se sometieron al modelo PH-RVF mediante ligadura de la arteria pulmonar izquierda (LPA) y oclusión progresiva de la arteria pulmonar principal (MPA) con un manguito inflable. Las líneas de presión del manguito y del ventrículo derecho (RV) fueron tuneladas subcutáneamente hasta un puerto para su acceso. Durante ocho semanas, cada oveja se sometió a un régimen semanal de ejercicio y a un control de puños (CC). El régimen de ejercicios consistía en velocidades de trabajo y de recuperación durante 10 minutos cada una. Durante el ejercicio, accedimos a ambos puertos para transmitir la presión del manguito, la hemodinámica y tomar gases sanguíneos de la autocaravana. Al finalizar el ejercicio, el manguito PA se infló entre 150 y 200 mmHg para aumentar la postcarga del RV. Se realizó una gasometría de control de sangre y una gasometría de RV unos días después de la inflación para confirmar la presión en el manguito y asegurar la compensación. Durante ocho semanas, el SvsO 2 se mantuvo relativamente estable en máxima intensidad en la semana 1 frente a la semana 8: 62,7 ± 4,5% frente a 69,8 ± 4,0% a pesar de que el RVSP aumentó de la semana 1 a la semana 8: 78 ± 8 mmHg frente a 96 ± 8 mmHg. Además, la distancia recorrida aumentó de la semana 1 a la 8: 1390 ± 297 m frente a 1834 ± 189 m, a pesar de que la presión del manguito PA en la semana 8 aumentó a 777 ± 98 mmHg. Esto sugiere que, a pesar del aumento de la postcarga del RV, el ejercicio puede ayudar en una respuesta adaptativa y compensación al ejercicio en el entorno de la PH-RVF. Este régimen de ejercicio proporciona información novedosa sobre los efectos del ejercicio en la PH-RVF y permite estudios complejos de la fisiología del ejercicio en un modelo animal grande de la PH-RVF.

Introducción

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

La hipertensión pulmonar (HP) es una enfermedad compleja que causa una amplia variedad de síntomas. Los síntomas pueden ser leves, como dispnea e intolerancia al ejercicio, hasta graves, como deterioro respiratorio y fallo evidente del ventrículo derecho (FVR)1. A medida que aumenta la carga posterior del corazón derecho, el ventrículo derecho (VD) comienza a dilatarse, causando disfunción sistólica y una fracción de eyección reducida. Esta desconexión en la demanda y la producción cardíaca hace que las actividades diarias y el ejercicio sean intolerables, lo que conduce tanto al deterioro físico como mental. Anteriormente, se consideraba que el ejercicio en el contexto de hipertensión pulmonar era perjudicial2. Recientemente, muchos estudios han demostrado que un programa de rehabilitación pulmonar con ejercicio podría reducir la dispnea y mejorar la calidad de vida tanto física como mentalmente 2,3,4. Sin embargo, el estudio del ejercicio en pacientes con HP se ha limitado a aquellos con enfermedad estable debido a una posible descompensación cardiopulmonar.

La descompensación rápida es una complicación temida de la FPH-RVF. Algunas personas con HP pueden tener un periodo de compensación adecuada y solo presentar síntomas leves, con la descompensación que se produce lentamente durante meses o años. Otros, desafortunadamente, pueden tener un pH más severo y pueden descompensarse rápidamente con cualquier tipo de esfuerzo. El ejercicio puede agravar la enfermedad y causar un rápido colapso cardiopulmonar debido a un ciclo de aumento de la demanda metabólica del VD, menor fracción de eyección y isquemia continua del VD. Esta es una complicación muy grave porque los pacientes que desarrollan una insuficiencia reproductiva descompensada requieren ingreso hospitalario y tienen tasas de mortalidad de hasta el 40%5. La HP puede afectar a personas de cualquier edad, siendo la mayoría de los casos desarrollados por enfermedad cardíaca izquierda (Grupo 2) y enfermedades pulmonares (Grupo 3). En casos raros, la HP puede desarrollarse por causas idiopáticas y es más común en mujeres en su cuarta década de vida (Grupo 1)6. Aunque la progresión de la enfermedad puede moderarse con el manejo médico, no existe una cura farmacológica definitiva. Una vez que los pacientes alcanzan la fase terminal de FVR, el único tratamiento definitivo es el trasplante de pulmón o decorazón-pulmón 7.

Debido a la morbilidad y mortalidad de la HP y la posterior RVF, previamente creamos un modelo clínicamente relevante de PH-RVF en ovejas para desarrollar nuevasterapias 8. En este modelo, ligamos la arteria pulmonar izquierda (LPA) y colocamos un manguito inflable que servía como oclusor vascular alrededor de la arteria pulmonar principal (AMP). Durante 8 semanas, aumentamos la presión dentro de este manguito para disminuir el flujo a través de la arteria pulmonar principal, aumentar la postcarga de la VR e inducir la remodelación de la RV. Este modelo se ha desarrollado aún más incorporando un régimen de ejercicio para estudiar mejor la interacción entre la HP y el ejercicio. Este protocolo es único porque captura cambios en parámetros hemodinámicos como la presión sistólica del ventrículo derecho (RVSP) y la frecuencia cardíaca (HR) en tiempo real. La sangre de RV se utilizó como sustituto de la sangre venosa mixta para analizar los cambios en SvsO2 y comparar la extracción de osígeno a diferentes velocidades de ejercicio. El régimen de ejercicios y los métodos de adquisición de datos se describen a continuación como recurso para que los investigadores desarrollen una mejor comprensión de la compleja fisiopatología de la PH-RVF.

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Protocolo

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

El Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales del Centro Médico de la Universidad Vanderbilt aprobó el siguiente protocolo. Los procedimientos descritos se llevaron a cabo de acuerdo con la Guía para el Cuidado y Uso de Animales de Laboratorio del Consejo Nacional de Investigación de EE.UU. 9. Todas las ovejas eran de especies cruzadas Dorset, hembras, pesaban entre 55 y 65 kg y tenían entre 1 y 2 años de edad. Consulta la Figura 1 para ver el cronograma completo del régimen y el protocolo de la sesión de ejercicio.

1. Adaptación a la cinta de correr

  1. Tras la cuarentena interna adecuada y antes de la cirugía, comienza la aclimatación en la cinta de correr.
  2. Traslada las ovejas a la sala de ejercicios mediante una jaula de transporte.
  3. Coloca el cabestro sobre la oveja y guíala suavemente hacia la cinta.
  4. Cuando la oveja esté cómoda, haz que coloque las patas delanteras en la jaula de la cinta y ate el cabestro a la parte delantera de la cinta.
  5. Enciende la cinta de correr, ajusta el dial de velocidad a su posición más baja de 10 e incentiva a las ovejas con comida aprobada para animales.
  6. Mientras la cinta funciona, solo deben moverse las patas traseras de la oveja, ya que las patas delanteras descansan sobre la jaula (Vídeo suplementario 1).
  7. Después de un minuto caminando, apaga la cinta. Repite encendiendo la cinta y paseando a la oveja durante un minuto, y aumentando la velocidad a 30.
  8. Repite los pasos 1.2–1.7 dos o tres veces antes de la cirugía.

2. Modelo quirúrgico para iniciar el modelo PH-RVF

  1. Consulte nuestra publicación anterior que ofrece detalles sobre esta cirugía, así como el mantenimiento y titulación regulares del manguitoPA 8. No obstante, este protocolo incluye los pasos clave de esta primera cirugía para que el lector pueda contextualizarlos mejor durante el ejercicio.
  2. Exposición quirúrgica
    1. Realiza una mini toracotomía anterior izquierda.
    2. Retraer el pulmón izquierdo e incisar longitudinalmente el pericardio para exponer las estructuras clave: el ventrículo derecho y la arteria pulmonar.
  3. Ligadura de LPA y colocación de ocludores de MPA
    1. Disecciona alrededor del PA principal y aíslalo.
    2. Sigue la PA principal hasta la bifurcación para exponer la LPA. Luego, aísla y liga el LPA con cinta umbilical.
    3. Coloca el oclusor vascular de silicio de alta resistencia y las sondas de flujo perivascular alrededor de la AMP. Este oclusor también se conoce como manguito de la PA.
  4. Línea de presión para RV
    1. Sigue la arteria de la MPA por la pared libre del trayecto de salida del RV para localizar el RV.
    2. Selecciona un lugar donde se pueda asegurar una línea de presión en el centro de la autocaravana. Esta línea se utilizará para transducir las presiones del RV y tomar muestras de gases en sangre.
      NOTA: El gas sanguíneo extraído de la autocaravana servirá como gas venoso mixto sustituto. Mientras que la sangre de la PA es sangre venosa mezclada verdadera, la sangre de la VR también es una mezcla de sangre de la circulación sistémica y del seno coronario. En ausencia de derivaciones intracardíacas, la diferencia en SvsO2 respecto a una fuente de PA o RV es despreciable10,11.
  5. Tunelamiento del puerto
    1. Haz pasar la presión de la VR y las líneas ocluentes de la PA a través de un espacio intercostal debajo de la incisión y túnel en la capa subcutánea hasta el dorso izquierdo de la oveja.
    2. Conecta ambas líneas a dos puertos separados y asegura los puertos bajo una capa de tejido subcutáneo. El puerto de megafonía estará más cerca de la cabeza y el puerto de autocaravana más cerca de la cola.

3. Recuperación postoperatoria

  1. Permite que la oveja se recupere durante una semana postoperatoria con el manejo adecuado del dolor y antibióticos según el protocolo.
  2. Una vez que la oveja se recupere adecuadamente, continúa con la primera sesión de ejercicio.

4. Preparar la sesión de ejercicio y la revisión de los brazaletes

  1. Haz lavado de heparina que será necesario para enjuaguar la línea de autocaravana.
    1. Haz 3 lavados normales de solución salina.
    2. Retira 1 mL de solución salina normal de los lavados.
    3. Añade 1 mL de heparina (1000 unidades) a las jeringuillas.
    4. Repite este proceso para hacer 3 descargas.
  2. Reúne suministros para muestras de gases en sangre, una máquina para la adquisición de datos y muestras de laboratorio.
    1. Prepara dos jeringuillas de 10 mL: una se usará para residuos y la otra para extraer 10 mL de sangre para análisis (hemograma, CMP).
    2. Prepara cinco jeringuillas de 1 mL para muestras de gases en sangre que se procesarán en la máquina arterial de gases que elija.
  3. Administrar heparina y alteplasa.
    1. Utiliza una jeringuilla de 5 mL para extraer 5 mL de heparina (5000 unidades) que se usarán para bloquear la línea de la autocaravana al final del ejercicio o para comprobar el puño y evitar coágulos.
    2. La alteplasa solo será necesaria si la línea del RV ha coagulado o si la forma de onda está amortiguada.
    3. Si se necesita alteplasa, deberá reconstituirse con 2,2 mL de agua estéril para obtener 2 mg de alteplasa.
  4. Configura el acceso a la línea de manguito de megafonía (Figura 2).
    1. Consigue una jeringuilla de 1 mL y una de 5 mL.
    2. Con una aguja pequeña (20–22 G), llena ambas jeringuillas con suero fisiológico. Usa la jeringuilla de 1 mL para inflar el manguito y la de 5 mL para cebar la línea.
    3. Adquiere un transductor de presión y conecta el extremo hembra del tubo de presión Luer (al menos 36 pulgadas) al extremo macho del transductor.
    4. Asegúrate de que el extremo inferior del Luer del transductor esté tapado (Figura 2A).
    5. Conecta el extremo macho del tubo de presión a la conexión hembra de Luer, que tiene la tapa blanca en una llave de registro de tres vías.
    6. Conecta una aguja Huber 22-G al extremo macho de la llave de registro de tres vías.
    7. Usando la jeringuilla de 5 mL de suero hipertónico, accede al puerto del transductor de presión y ábrelo al juego de agujas Huber.
    8. Enjuaga la línea de presión y la aguja de Huber hasta que salga solución salina hipertónica de la aguja.
    9. Gira el grifo de tres vías hacia la aguja Huber para bloquear el grifo y asegurarte de que no entre aire en la línea de acceso al puño del PA (Figura 2B). Gira la llave de registro de tres vías hacia la tapa azul para abrir el acceso al puño (Figura 2C).
  5. Configura el acceso a la línea de autocaravanas.
    1. Retirar 2 mL de solución salina normal de una bolsa de 1 L de solución fisiológica normal y añadir 2 mL de heparina (2000 unidades) para una concentración total de 2 unidades/mL.
    2. Coloca la bolsa de suero fisiológico normal en una bolsa de presión y en una bolsa de acceso con un pico de vía intravenosa.
    3. Gira la llave de paso de tres posiciones de la bolsa de presión para que el mango quede perpendicular al tubo, luego infla la bolsa con la bomba manual hasta que el indicador de presión se ponga verde a aproximadamente 250 mmHg.
    4. Gira la llave de registro de tres vías hacia la bolsa para mantener la presión y coloca la bolsa sobre el poste de la vía a unos 2 m del suelo.
    5. Conecta el extremo macho de la línea IV en la bolsa de presión al extremo hembra del transductor de presión.
    6. Conecta el extremo hembra de Luer del tubo de presión (al menos 36 pulgadas) al extremo macho del transductor.
    7. Conecta el extremo macho del tubo de presión a la conexión hembra de Luer en una llave de registro de tres vías.
    8. Conecta una aguja Huber de 22 G al extremo macho del grifo de registro de tres vías.
    9. Abre la línea de la bolsa de heparina y enjuaga toda la línea hasta que salga solución fisiológica heparinizada de la aguja Huber. Bloquea la llave de tres vías conectada a la aguja Huber girándola hacia la aguja Huber para asegurarte de que no entre aire en la línea de acceso al puerto de la autocaravana.
  6. Transfiere a las ovejas.
    1. Traslada las ovejas a la sala de ejercicios mediante una jaula de transporte.
    2. Lleva suavemente a la oveja a la cinta y coloca un cabestro sobre ella.
    3. Usa un cabestro para mantener a las ovejas en la parte delantera de la cinta con las patas delanteras en una pequeña jaula.
  7. Accede a puertos de PA y RV.
    1. Palpa los puertos y encuentra el centro del puerto, y limpia bien la piel superior con toallitas con alcohol.
    2. Accede al puerto de megafonía con una aguja Huber.
    3. Repite los pasos 4.7.1 y 4.7.2 para acceder al puerto de la caravana.
  8. Configuración final del ordenador.
    1. Enciende el ordenador, abre LabChart y utiliza las especificaciones de los métodos suplementarios (Archivo Suplementario 1, Figura Suplementaria 1, Figura Suplementaria 2 y Figura Suplementaria 3) para configurar los siguientes canales: Manguito PA, Presión VD, Presión Sistólica VD y Frecuencia cardíaca (Figura 3A).
    2. Asegúrate de que todo se accede correctamente con el puerto PA más cerca de la cabeza y el puerto RV más cerca de la cola (Figura 3B).
    3. Los transductores deben situarse entre el ordenador y la oveja, con los transductores a nivel del corazón de la oveja (Figura 3C).
    4. Conecta ambos transductores de presión al cable de interfaz y calibra los transductores según lo especificado en los métodos suplementarios (Archivo Suplementario 1, Figura Suplementaria 1, Figura Suplementaria 2 y Figura Suplementaria 3).

5. Acceso al puerto

  1. Asegúrate de que el paso 4.8 esté completado y haz clic en Iniciar en la esquina superior derecha de la ventana del software para empezar a grabar el software de adquisición de datos y capturar las formas de presión de los manguitos de RV y PA a 400 Hz.
  2. Abre el manguito de PA girando la llave de registro hacia arriba para transducir la forma de onda de presión del manguito de PA (Figura 4A) y luego apaga la llave hacia la oveja para cerrar la forma de onda (Figura 4B).
    1. Mantén la válvula de paso para la presión del manguito de la PA apagada la mayor parte del tiempo para asegurarte de que la manguita no se desinfle por las altas presiones.
  3. Coloca uno de los flushes de heparina en la grifo de paso de tres vías para la línea de la autocaravana y alinea la línea con todo el flush hacia el puerto de la autocaravana.
  4. Retira suavemente la jeringuilla hasta que vuelva la sangre oscura.
    1. Si es difícil extraer sangre, haz un lavado rápido con otros 5–10 mL de solución fisiológica heparinizada y luego retira con una jeringuilla grande vacía como 20 mL o 30 mL.
    2. Si el atasco persiste, inyecta 1–2 mg de alteplasa en la línea y espera unos 10 minutos.
  5. Abre la grifo de paso de tres vías conectada a la línea del vehículo recreativo para transmitir la presión y la forma de onda del vehículo remoto. Las formas de onda varían en reposo, ejercicio y velocidad de recuperación (Figura 4C).

6. Régimen de ejercicio

  1. Extrae sangre para la gasometría base a velocidad inicial 0 cerrando la llave de paso hacia el transductor, y utiliza una jeringuilla vacía de 10 mL para extraer 10 mL de sangre de RV como residuo, y luego 0,2–0,4 mL de sangre RV con una jeringuilla de 1 mL para la muestra de sangre.
  2. Utiliza la muestra de 1 mL de sangre de VR para el análisis de gasometría y luego devuelve 10 mL de sangre de RV a la oveja.
  3. Gira el grifo de paso hacia arriba. Enjuaga la línea de la caravana tirando de la pestaña azul del transductor de presión para abrir la válvula hasta que toda la sangre haya salido de la línea.
  4. Empieza la velocidad del primer ejercicio en el mando 30 de la cinta, que es 0,46 m/s durante 10 minutos.
  5. Durante los 10 minutos, abre periódicamente la línea del manguito de la AP para transducir las presiones de la manguita de PA.
  6. Cerca del final de los 10 minutos, obtén gasometría realizando los pasos 6.1–6.3.
  7. Repite los pasos 6.1–6.6 para configuraciones de cinta de correr de 40 (0,78 m/s), 50 (1,1 m/s), 30 y 0.
  8. Al finalizar la sesión, utiliza 1 mL de suero fisiofisiológico para inflar el manguito en 150–200 mmHg.
  9. Reduce la presión de la autocaravana unos minutos después de inflarla para asegurarte de que la oveja tolera la inflación.

7. Desconexión de puertos

  1. Retira la aguja Huber del puerto del manguito de PA rápidamente para evitar una fuga de presión en el manguito.
  2. Inyecta 5 mL de heparina en la línea de la caravana, pero no la enjuagues para que la heparina permanezca en la línea y el puerto de la caravana.
  3. Elimina el acceso rápido al puerto de la autocaravana y limpia ambos puertos con toallitas con alcohol.

8. Revisión de esposas

  1. Transfiere a las ovejas a un pequeño recinto.
  2. Repite los pasos 4.1–4.8, omitiendo los 10 mL adicionales de jeringuilla del paso 4.2.1, ya que los análisis solo se obtienen durante las sesiones de ejercicio.
  3. Repite los pasos 5.1–5.5 y transduce la presión del manguito de PA y la forma de onda del RV.
  4. Extrae sangre del puerto de la caravana según se indica en los pasos 6.1–6.3.
  5. Abre la línea del manguito para asegurarte de que el manguito retiene la presión de la inflación de la sesión anterior girando el grifo perpendicular a la línea de presión.
  6. Infla el manguito PA según sea necesario siguiendo el paso 6.8 para volver a inflar hasta la presión obtenida en la sesión de ejercicio de esa semana.
  7. Transduc la presión de la autocaravana unos minutos después de inflar para asegurarte de que la oveja tolera la inflación de los brazaletes.
  8. Sigue los pasos 7.1–7.3 para concluir la revisión de los puños.

9. Completar todo el régimen

  1. Repite el ejercicio y las revisiones de manguito semanalmente a lo largo de 8 semanas (Figuras 1A,B).

10. Terminar la sesión de ejercicio antes de tiempo

  1. Si durante el ejercicioS vO 2 baja del 30% o el SvO 2 de base está por debajo del 50%, termina inmediatamente la sesión y desinfla el manguito para mitigar el riesgo de descompensación aguda irreversible de la oveja.
  2. Además, si el animal muestra síntomas de palidez, taquipnea, gruñidos, rechinar de dientes o respirar por la boca, termina la sesión de ejercicio y desinfla el manguito. Estos podrían ser señales tempranas de descompensación.

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Resultados

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Todos los datos se representan como medio±SEM. Durante ocho semanas, el SvsO 2 se mantuvo relativamente estable a la velocidad máxima de cinta en la semana 1 frente a la semana 8: 62,7 ± 4,5% frente a 69,8 ± 4,0% (Figura 5A), a pesar de que el RVSP aumentó de la semana 1 a la semana 8: 78 ± 8 mmHg frente a 96 ± 8 mmHg (Figura 5B). La distancia recorrida durante el ejercicio aumentó de la semana 1 a la 8: 13...

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Discusión

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

El modelo presentado de PH-RVF en ovejas se ha actualizado respecto a la versión anterior combinándolo con una plataforma de ejercicio en cinta de correr para estudiar la interacción entre el ejercicio y el desarrollo de enfermedades8. Dado que cada animal puede responder de forma diferente a la inflación de los manguitos, para un acondicionamiento de ejercicio consistente entre animales, se ajustaron las velocidades de la cinta durante la sesión para incluir velo...

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Divulgaciones

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Los autores no tienen conflictos de interés que revelar.

Agradecimientos

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Este trabajo fue financiado por las siguientes instituciones y premios: National Institutes of Health R01HL171577, National Institute of General Medical Sciences de la subvención NIH T32 GM007347, subvención T32 HL160508 de los National Institutes of Health, Premio Vanderbilt Faculty Research Scholar, Premio a la Independencia Temprana del Profesorado Second Century de la American Heart Association 24SCEFIA1255079, Fondo de Investigación Cardiotorácica del Centro Médico de la Universidad Vanderbilt, Centro Médico de la Universidad Vanderbilt: Fondo Sra. Shelley F. Kleiner y Dr. Fredric Kleiner, Centro Médico de la Universidad Vanderbilt, Fondo de Investigación Sra. Dorothy Thomas y Fondo Conmemorativo de Trasplantes de Pulmón David M. Livingston. Además, este trabajo no habría sido posible sin el Programa de Cuidado y Uso de Animales de la Universidad de Vanderbilt y el personal del Laboratorio S.R. Light: Jamie Adcock, Susan Fultz, Azia Tanks y Eiman Barsoum, para su apoyo técnico.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
0.9% Normal Saline, 1000 mLBaxter Healthcare Corp0338-0049-04Medicación, PH Crónico
16 mm Heavy Duty Occluder with actuating tubingAccess TechnologiesOC-16HDDesechable, PH Crónico
70% isopropyl alcohol prep padsMedlineMDS090670Desechable, PH Crónico
Aluminum Lamb and Goat TreadmillLivestock Performance Products DC314Equipo
Bags, Infusion: Nonsterile Novaplus Infusion Bag, 500 mLMedlineTCV4005HDesechable, PH Crónico
Blue ClaveMedlineBOPC1000Desechable, PH Crónico
Cathflo Activase (alteplase) 2 mgCathfloNDC 50242004164Medicación, PH Crónico
Computer Dell Lattitude 7400Equipo
Data acquisition hardwareADInstrumentsPowerLab 16/30Equipo
EPOC Point-of-care blood gas analyzerSiemens HealthineersSiemens-Epoc-REquipo
Flow MeterTransonichttps://www.transonic.com/tubing-flow-meters-manufacturers
Gauze Sponges: Sterile X-ray Compatible Gauze Sponges, 16-Ply, 4” × 4”MedlinePRM21430LFHDesechable, PH Crónico
GEM 7000 with iQM3Werfen6000228442Equipo
HeparinFresenius Kabi63323-540-31Medicación, PH Crónico
Hospira Primary IV Sets, 80”Patterson Veterinary07-835-0123Desechable, PH Crónico
Hypertonic saline 3%Baxter Healthcare Corp.0338-0054-03Medicación, PH Crónico
Hypodermic Needle with Bevel and Regular Wall, 20 G × 1”MedlineB-D305175ZDesechable, PH Crónico
Interface Cable, Edwards LifeScience Transducer to ADInstruments Bridge AmplifierFogg System0395-2434Equipo
Labchart softwareADInstrumentsLabchart 8Equipo
Needles: Hypodermic Needle with Regular Bevel, Sterile, 18 G × 1.5”MedlineB-D305185ZDesechable, PH Crónico
Octal Bridge AmplifierADInstrumentsFE228Equipo
Port-A-Cath Huber Needle, Straight, 22 G × 1-1/2”MedlineAAKM21200724Desechable, PH Crónico
Sheep HalterWeaver Livestock 35-7840-S20Equipo
Sterile Leur-Lock Syringe, 1 mLFisher ScientificBD309628Desechable, PH Crónico
Sterile Luer-Lock Syringe, 10 mLMedlineSYR110010ZDesechable, PH Crónico
Sterile Luer-Lock Syringe, 3 mLMedlineSYR103010ZDesechable, PH Crónico
Sterile Luer-Lock Syringe, 5 mLMedlineSYR105010ZDesechable, PH Crónico
Sterile WaterFresenius Kabi918550Medicación
Stopcock: 3-Way Stopcock with Handle in OFF Position, Rotating Adaptor Male Collar Fitting, 45 PSIMedlineDYNJSC301Desechable, PH Crónico
Transducer clipEdwards LifeScienceTCLIP05Equipo
Transonic Perivascular Flow Probe (PAU Series)ADInstrumentshttps://www.adinstruments.com/products/perivascular-flowprobes
Transport Cage/ Large Animal CagingAncare ANAT305660SSEquipo
Trigger Aneroid Gauge (Sphygmomanometer)Patterson Veterinary07-815-0464Equipo
TruWave Disposable Pressure Transducer Kits by Edwards LifesciencesMedlineVSYPX260Desechable, PH Crónico
Tubing: Pressure Monitoring Tubing with Fixed Male Luer Lock and Female Fitting, Low Pressure, 72” LMedlineDYNJPMTBG72MFDesechable, PH Crónico
Umbilical Tape, Cotton, 3-Strand, 1/8 x 36"MedlineDYNJPMTBG72MFDesechable, PH Crónico

Referencias

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Mocumbi, A., et al. Pulmonary hypertension. Nat Rev Dis Primers. 10 (1), 1(2024).
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