Name: Cuantificar cronológico levadura Duración de la vida por consecuencia de células envejecidas (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-05-06T00:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 24 s
Description: Aprende a cuantificar la vida útil cronológica de levadura mediante el análisis de viabilidad celular en placas de panal con medio YEPD. Este método de alto rendimiento permite estudiar procesos de envejecimiento en eucariotas.

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Este trabajo fue apoyado por el NIH subvención 1R21AG031965-01A1. MK es una Ellison Medical Foundation de Nueva Académico en el envejecimiento.

Parte 1: Preparación de los cultivos de envejecimiento <ol><li> Cepas racha de interés de las existencias congeladas en placas de agar YEPD (1% extracto de levadura, 2% Bacto-peptona, 2% de agar, 2% de glucosa). </li><li> Se incuban las células a 30 ˚ C durante 48 horas o hasta que las colonias solo aparecen. </li><li> Elige colonias aisladas e inocular en 5 ml de medio líquido YEPD (1% extracto de levadura, 2% Bacto-peptona, 2% de glucosa) en tubos de ensayo. </li><li> Crecer cultivos de una noche a 30 ˚ C, manteniendo agitación constante usando un agitador o un tambor de rodillos. </li><li> Inocular 5 ml de sintético completo (SC) medio (Tabla 1) con 50 l de la cultura durante la noche. En general las tres culturas SC se preparan para cada cepa para proporcionar la replicación triplicado biológica de los análisis de ciclo de vida de cada cepa se está examinando. </li><li> Mantener los cultivos a 30 ˚ C con agitación constante en un tambor durante todo el experimento (por lo general dos o más semanas). </li></ol> Parte 2: Tomar una viabilidad edad de punto Después de dos días de la cultura en SC medios de comunicación, las células deben estar en la fase estacionaria y la primera edad de punto está listo para ser tomado. Con posterioridad la edad puntos se deben tomar cada 2-3 días durante un mínimo de dos semanas. Para cada punto de la edad: <ol><li> Preparar el Bioscreen 100 y placas de nido de abeja para la inoculación, llenando cada pozo con 145 l de YEPD. Asegúrese de dejar al menos un pozo lleno de sólo YEPD y no las células para el análisis de los datos más tarde. </li><li> Eliminar los cultivos de envejecimiento de la incubadora. </li><li> Agitar brevemente la primera cultura que se inocula en la placa de nido de abeja, teniendo cuidado de no derramar de la cultura. </li><li> Tomar 5 l de la cultura mestiza y la pipeta que en el primer pocillo de la placa de panal. Llama la boca de cada tubo de ensayo antes y después de la eliminación de la alícuota de 5 mL. </li><li> Repita este procedimiento para cada cultura del envejecimiento estar seguro de tener en cuenta la posición, así que corresponde a cada cultura. Idénticas posiciones y se debe utilizar para cada edad subsiguiente puntos durante todo el experimento. </li><li> Vuelva a colocar la cultura en la incubadora de 30 ˚ C cuando haya terminado con las inoculaciones. </li></ol> Parte 3: Carga de la máquina Bioscreen C MBR <ol><li> Exponer el compartimiento de la incubadora por levantar la tapa y retire la tapa de la bandeja de muestras. </li><li> Inserte la placa recién inoculado de nido de abeja en la bandeja de la muestra (el uso de la ranura de la izquierda si sólo estás leyendo una placa). </li><li> Vuelva a colocar la tapa de la bandeja de muestras y bajar la tapa del compartimiento de la incubadora. </li><li> Asegúrese de que el fluido de transferencia de calor está por encima del nivel mínimo de llenado. Si está bajo, agregue más con una pipeta 1.000 l con el fluido de transferencia de calor siempre. </li><li> Usando el software Bioscreen &quot;EZExperiment&quot;, establecer los parámetros siguientes para obtener curvas de crecimiento adecuadas para Saccharomyces cerevisiae: <ul><li> Número de muestras: Escriba el número de pozos con los medios de comunicación o 200 </li><li> Filtro: 420-580nm, de banda ancha </li><li> Temperatura: 30 ˚ C </li><li> Duración experimento: un día, 0 horas, 0 segundos </li><li> Intervalo de medición: 30 minutos </li><li> Temblando: On, agitación continua, de alta </li></ul></li><li> Haga clic en &quot;Inicio&quot; para comenzar las lecturas. </li></ol> Parte 4: Análisis de Datos Por lo general, de seis años a los puntos se toman en el transcurso de dos semanas. Los puntos de la edad se toman en los días 2, 4, 6, 9, 11 y 13. Dependiendo del diseño experimental y tensiones a que está probado, puede ser conveniente tener la edad puntos más o menos frecuencia o por más de 2 semanas. Es importante que la carga de la placa de nido de abeja en el mismo orden para todas las edades-tal punto que cada cultura se corresponde con el envejecimiento de la misma posición y en todas las edades-punto, ya que esto hará que el análisis de datos mucho más fácil. <ol><li> Obtener los archivos de salida de la máquina Bioscreen C MBR. El software &quot;EZExperiment&quot; la salida de los datos Bioscreen como un archivo delimitado por tabuladores que es compatible con Microsoft Excel, así como otros programas. La primera columna muestra a qué hora de la medición de OD fue tomada durante el experimento, con columnas posteriores en representación de cada bien en el Bioscreen placas alveolares (Figura 1). </li><li> Eliminar la primera lectura de DO de cada columna. Esta lectura es &quot;ruido&quot;. </li><li> Normalizar los datos al restar el valor de la DO del pozo con YEPD solo de todos los valores de DO de cada columna. Esto elimina la absorbancia de fondo por los medios de comunicación. </li><li> Trazar las curvas consecuencia. Las curvas se desplazarán en función de la edad (Figura 2). Por ejemplo, mediante el trazado de las curvas de extensión de la columna 1 (y uno de la placa de nido de abeja) durante los seis puntos de momento, no hay un cambio claro hacia la derecha de las curvas en el tiempo. </li><li> Calcular el tiempo de duplicación (δ) para cada bien sobre la base de la cinética de crecimiento de la edad de 2 días-punto. La ecuación utilizada para calcular el tiempo de duplicación is: <img src="/files/ftp_upload/1156/equat.png" alt="Ecuación" /> donde OD 1 y 2 representan OD sucesivas mediciones de OD y t 1 y t 2 es el tiempo entre las mediciones. Calcular tiempos de duplicación sólo entre los valores de DO de 0,2 a 0,5. El promedio de estos valores es el tiempo de duplicación para ese bien. Calcular tiempos de duplicación sólo entre los valores de DO de 0,2 a 0,5. El promedio de estos valores es el tiempo de duplicación para ese bien. La mayoría de las cepas salvajes de levadura debe dar un valor duplicada en un tiempo entre 85 a 90 minutos. </li><li> Para cada edad puntos, calcular el cambio de tiempo (T) en las curvas de extensión en relación con el punto inicial de la edad (día 2). Una manera fácil de hacer esto es determinar la diferencia en la cantidad de tiempo que le tomó a cada pocillo para llegar a un diámetro exterior de 0,3 entre el primer punto de la edad, y en cada edad de punto. El tiempo que un determinado pozo alcanzó una DO de 0,3 se puede calcular a partir de la ecuación de regresión lineal correspondiente a ln (DO) en función del tiempo que transcurre entre la puesta entre paréntesis OD dos puntos de tiempo = 0,3. </li><li> Calcular la fracción superviviente en cada punto de la edad con el fin de generar una curva de supervivencia (Figura 3). Definir el punto inicial de la edad (día 2) al 100% de viabilidad. Para cada edad sucesivos puntos de calcular el porcentaje de supervivencia mediante la ecuación: <img src="/files/ftp_upload/1156/equat2.png" alt="Segunda ecuación" width="245" height="115" /> s, donde n es el porcentaje de supervivencia, Dt n es el cambio de hora, y δ n es el tiempo de duplicación. </li><li> Generar las curvas de supervivencia (Figura 3B) como se desee para cada bien (o pozos de replicar) por el trazado de la fracción (o porcentaje) de células viables en función de la edad. </li><li> Calcular la supervivencia integral (SI) para cada pozo. SI se define como el área bajo la curva de supervivencia y se puede estimar mediante la fórmula: <img src="/files/ftp_upload/1156/equat3.png" alt="La ecuación 3" width="400" height="79" /> donde la edad es la edad n puntos (por ejemplo, 2, 4, 6, 9, 11 y 13) y s n es el valor de supervivencia a esa edad-punto. </li><li> Determinar los parámetros estadísticos de los pozos de replicar los datos de la SI y la supervivencia. Común los parámetros estadísticos de interés, como media, mediana y la varianza para cada conjunto de réplicas biológicas. Un t-test o análisis similar puede ser utilizado para la comparación de pares de SI con fines experimentales y grupos control. También puede ser deseable para generar las curvas de supervivencia, como se describe en 4.8 de promedio réplicas biológicas. </li></ol> Parte 5: Los resultados representativos Al finalizar el experimento, se han trazado la curva de supervivencia y el análisis realizado de datos suficientes para determinar el potencial de envejecimiento cronológico de diferentes cepas o condiciones. Si se realiza correctamente, las curvas de crecimiento obtenidas de la máquina Bioscreen C MBR debe ser similar a los que se muestran en la Figura 2 y las curvas de supervivencia resultante debe ser similar a los que se muestran en la Figura 3. Por lo general, de tipo salvaje células cultivadas en las condiciones descritas aquí, tendrá un período cronológico la vida media del orden de 7 días. Variación sustancial en la supervivencia se observa en las diferentes cepas y bajo ciertas condiciones, tales como el crecimiento en los medios de la glucosa al 0,05%, la mediana de supervivencia puede exceder de 30 días. <img src="/files/ftp_upload/1156/1156fig1.png" alt="" /> Figura 1. Salida de datos desde el programa Bioscreen &quot;EZExperiment&quot;. Una columna muestra la hora en que se tomó una lectura de absorbancia. Sucesivas columnas representan los pozos de la placa de nido de abeja inoculados con células obtenidas de cultivos de envejecimiento. <img src="/files/ftp_upload/1156/1156fig2.png" alt="" /> Figura 2. Curvas consecuencia de una réplica biológica única en el transcurso de un experimento. Hay un cambio notable en las curvas con el tiempo, las células en la cultura del envejecimiento pierden su viabilidad. El tiempo transcurrido entre el momento inicial (día 2) y un punto de tiempo sucesivos que determina la viabilidad a esa edad en particular. <img src="/files/ftp_upload/1156/1156fig3a.png" alt="" /><img src="/files/ftp_upload/1156/1156fig3b.png" alt="" /> Figura 3. A) una curva de supervivencia generado con los datos fruto de la Figura 1. El día 2 punto de tiempo se establece como el punto de viabilidad del 100%. B) Curvas de supervivencia final de las dos cepas analizadas en el mismo experimento. Estas curvas de supervivencia representan las viabilidades promedio de tres réplicas biológicas de cada cepa. Las barras de error representan la desviación estándar dentro de réplicas biológicas. El área sombreada bajo la curva de supervivencia representa la supervivencia integral (SI) para la cepa 1. <table border="1"><tbody><tr><td colspan="2"> Tabla 1. Medio sintético definidos que se utilizan para estudios de envejecimiento cronológico (cepa backgrouª BY4743) </td></tr><tr><td> Componente </td><td> Concentración (g / L) </td></tr><tr><td> D-glucosa </td><td> 20 </td></tr><tr><td> Levadura base de nitrógeno (-AA/AS) </td><td> 1.7 </td></tr><tr><td> (NH 4) 2 SO 4 </td><td> 5.0 </td></tr><tr><td> Adenina </td><td> 0.04 </td></tr><tr><td> L-Arginina </td><td> 0.02 </td></tr><tr><td> Ácido L-aspártico </td><td> 0.1 </td></tr><tr><td> L-ácido glutámico </td><td> 0.1 </td></tr><tr><td> L-histidina </td><td> 0.1 </td></tr><tr><td> L-leucina </td><td> 0.3 </td></tr><tr><td> L-lisina </td><td> 0.03 </td></tr><tr><td> L-Metionina </td><td> 0.02 </td></tr><tr><td> L-fenilalanina </td><td> 0.05 </td></tr><tr><td> L-serina </td><td> 0.375 </td></tr><tr><td> L-Treonina </td><td> 0.2 </td></tr><tr><td> L-triptófano </td><td> 0.04 </td></tr><tr><td> L-tirosina </td><td> 0.03 </td></tr><tr><td> L-valina </td><td> 0.15 </td></tr><tr><td> Uracilo </td><td> 0.1 </td></tr></tbody></table> Nota: Esta receta explica auxotrophies en BY4743 cepa diploide. Auxotrophies aminoácidos deben ser compensados ​​mediante la adición de una concentración final de 5 veces el medio completo sintético.

<ol><li>Steinkraus, K. A., Kaeberlein, M., Kennedy, B. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Replicative+aging+in+yeast%3A+the+means+to+the+end%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Cell+Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Replicative aging in yeast: the means to the end.</a> Annu Rev Cell Dev Biol. 24, 29(2008).</li>
<li>Kaeberlein, M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aKaeberlein%2C+M+%22Handbook+of+models+for+human+aging%22">Handbook of models for human aging</a>. Conn, P. M. , Elsevier Press. Boston. 109(2006).</li>
<li>Fabrizio, P., Longo, V. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+chronological+life+span+of+Saccharomyces+cerevisiae%5BTitle%5D)+AND+%22Aging+Cell%22%5BJournal%5D)">The chronological life span of Saccharomyces cerevisiae.</a> Aging Cell. 2 (2), 73(2003).</li>
<li>Murakami, C. J., Burtner, C. R., Kennedy, B. K., Kaeberlein, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+method+for+high-throughput+quantitative+analysis+of+yeast+chronological+life+span%5BTitle%5D)+AND+%22J+Gerontol+A+Biol+Sci+Med+Sci%22%5BJournal%5D)">A method for high-throughput quantitative analysis of yeast chronological life span.</a> J Gerontol A Biol Sci Med Sci. 63 (2), 113(2008).</li>
<li>Piper, P. W., Harris, N. L., MacLean, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preadaptation+to+efficient+respiratory+maintenance+is+essential+both+for+maximal+longevity+and+the+retention+of+replicative+potential+in+chronologically+ageing+yeast%5BTitle%5D)+AND+%22Mech+Ageing+Dev%22%5BJournal%5D)">Preadaptation to efficient respiratory maintenance is essential both for maximal longevity and the retention of replicative potential in chronologically ageing yeast.</a> Mech Ageing Dev. 127 (9), 733(2006).</li>
<li>Fabrizio, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Superoxide+is+a+mediator+of+an+altruistic+aging+program+in+Saccharomyces+cerevisiae%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Superoxide is a mediator of an altruistic aging program in Saccharomyces cerevisiae.</a> J Cell Biol. 166 (7), 1055(2004).</li>
</ol>

El alto rendimiento de la vida cronológica ensayo de duración se describe aquí es un método eficaz para cuantificar el potencial de envejecimiento de un gran número de cepas con alta exactitud y precisión. El principal avance de este método sobre los métodos clásicos para determinar la supervivencia de contar unidades formadoras de colonias (véase, por ejemplo 3) es el uso de un dispositivo de lectura agitador / incubadora / placa como la máquina Bioscreen C MBR para obtener alta resolución de las curvas de c...

<table><tbody><tr><td>Bacto Peptona</td><td>Reactivo</td><td>BD Biosciences</td><td>211677</td><td></td></tr><tr><td>Extracto de Levadura Bacto</td><td>Reactivo</td><td>BD Biosciences</td><td>288620</td><td></td></tr><tr><td>Agar Difco</td><td>Reactivo</td><td>BD Biosciences</td><td>214530</td><td></td></tr><tr><td>Base de Nitrógeno para Levadura sin A.A. ni A.S.</td><td>Reactivo</td><td>MidSci</td><td>J630-500G</td><td></td></tr><tr><td>Ácidos Aminos</td><td>Reactivo</td><td>Sigma-Aldrich</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sulfato de Amonio</td><td>Reactivo</td><td>Spectrum</td><td>AM185</td><td></td></tr><tr><td>Dextrosa</td><td>Reactivo</td><td>Fisher Scientific</td><td>D16-10</td><td></td></tr><tr><td>Equipo Bioscreen C MBR</td><td>Herramienta</td><td>Growth Curves USA</td><td>5101370</td><td></td></tr><tr><td>Placa Honeycomb de 100 pozos para Bioscreen</td><td>Herramienta</td><td>Growth Curves USA</td><td>9502550</td><td></td></tr></tbody></table>

cuantificar cronológico levadura duración de la vida por consecuencia de células envejecidas

Quantifying Yeast Chronological Life Span by Outgrowth of Aged Cells

La levadura en ciernes<em&gt; Saccharomyces cerevisiae</em&gt; Ha demostrado ser un importante organismo modelo en el campo de la investigación sobre el envejecimiento<sup&gt; 1</sup&gt;. La replicación y abarca cronológicamente la vida son dos paradigmas establecidos utilizados para estudiar el envejecimiento en la levadura. Envejecimiento replicativo se define como el número de células hijas una célula de levadura madre soltera produce antes de la senescencia y el envejecimiento cronológico se define por la longitud de las células de tiempo puede sobrevivir en una que no se dividen, la quietud, como el estado<sup&gt; 2</sup&gt;. Hemos desarrollado un método de alto rendimiento para la medición cuantitativa de la vida cronológica. Este método consiste en el envejecimiento de las células en un medio definido con agitación ya temperatura constante. En cada edad de punto, una sub-población de las células se retira de la cultura del envejecimiento y se inoculó en medio de cultivo rico. Una curva de alta resolución de crecimiento se obtiene entonces para esta subpoblación de células envejecidas con una máquina Bioscreen C MBR. Un algoritmo se aplica para determinar la proporción relativa de células viables en cada sub-población basado en la cinética de crecimiento en cada etapa de punto. Este método requiere mucho menos tiempo y recursos en comparación con otras pruebas de vida cronológica, mientras que el mantenimiento de la reproducibilidad y precisión. La naturaleza de alto rendimiento de este ensayo debe permitir a gran escala de pantallas de genética y química para identificar nuevos modificadores de la longevidad de realizar más pruebas en organismos más complejos.

Envejecimiento cronológico en la levadura se refiere a la pérdida de la viabilidad celular asociado con el tiempo en la fase estacionaria. Aquí se describe un método de alto rendimiento para determinar cuantitativamente la levadura abarcan la vida cronológica.

Cuantificar cronológico levadura Duración de la vida por consecuencia de células envejecidas

La levadura de gemación Saccharomyces cerevisiae ha demostrado ser un organismo modelo importante en el campo de la investigación sobre el envejecimiento 1. La replicativa y ...

Los cultivos envejecidos se mantienen en tubos de ensayo a 30 grados Celsius con agitación constante. Bio, un tambor rotatorio, una alícuota de células de cada cultivo envejecido se inocula en un pocillo de una placa de miel de pantalla biológica que contiene medio YEPD. La máquina Bio Screen CMBR incuba y agita la placa de miel durante 24 horas mientras mide la densidad óptica de cada pocillo.Cada 30 minutos se pueden generar curvas de crecimiento a partir de los datos de salida del bioscreener, que pueden utilizarse para calcular la viabilidad de cada cultivo envejecido. Después de la incubación de 24 horas, las densidades celulares en la placa de panal pueden variar según la viabilidad del cultivo envejecido original. Hola, soy Chris Murakami del laboratorio del Dr. Matt Capline y del Departamento de Patología aquí en la Universidad de Washington.Hoy les vamos a mostrar el procedimiento para cuantificar la longevidad cronológica de levaduras mediante el crecimiento de células envejecidas. Utilizamos este procedimiento en nuestro laboratorio para estudiar cómo los factores genéticos y ambientales influyen en la longevidad de la levadura. Así que comencemos.Para preparar cultivos envejecidos, primero realice estrías de cepas de levadura a partir de stocks congelados en placas de agar YEPD e incube las células a 30 grados Celsius durante 48 horas o hasta que aparezcan colonias individuales. Una vez que hayan aparecido colonias individuales, seleccione colonias aisladas e inocúlelas en cinco mililitros de medio líquido YEPD.En tubos de ensayo, cultivar las culturas durante la noche a 30 grados Celsius en un tambor rotatorio para mantener una agitación constante; después de la incubación nocturna, usar 50 microlitros de cada cultivo para inocular cinco mililitros de medio sintético completo. Por lo general, se preparan tres cultivos SC para cada cepa, a fin de proporcionar replicación biológica triplicada del análisis de longevidad para cada cepa que se examine. Mantener los cultivos a 30 grados Celsius con agitación constante en un tambor rotatorio durante todo el experimento, que generalmente dura dos semanas o más tras dos días de cultivo.En medio SC, las células deben estar en fase estacionaria y el primer punto de edad está listo para ser tomado. Los puntos de edad subsecuentes deben tomarse cada dos o tres días durante un mínimo de dos semanas. Para comenzar este procedimiento, prepare la pantalla biológica.Placas de 100 pocillos tipo panal para inoculación, llenando cada pocillo con 145 microlitros de YEPD. Asegúrese de dejar al menos un pocillo con solo YEPD y sin células para el análisis posterior de datos. Retire los cultivos envejecidos del incubador.En breve, agite por vórtice la primera cultura que se va a inocular en la placa de panal. Tenga cuidado de no derramar ninguna parte de la cultura. Flamee la boca del tubo de ensayo y retire cinco microlitros de la cultura; pipetéelos en el primer pocillo de la placa de panal.No olvide flamear la boca del tubo de ensayo. Después de retirar la alícuota de cinco microlitros, repita este procedimiento de inoculación para cada cultivo envejecido. Asegúrese de anotar la posición del pocillo correspondiente a cada cultivo de forma idéntica.Las posiciones de los pocillos deben utilizarse para cada punto de edad subsiguiente durante todo el experimento. Devuelva los cultivos al incubador de 30 grados Celsius. Cuando las inoculaciones hayan finalizado, después de que los cultivos hayan sido inoculados en la placa de panal, la placa se carga en la máquina Bio Screen CMBR.Para hacer esto, exponga el compartimento del incubador levantando la tapa. Luego retire la cubierta de la bandeja de muestras. Introduzca la placa de panal recién inoculada en la bandeja de muestras.Utilice la ranura izquierda. Si solo está leyendo una placa, coloque nuevamente la tapa en la bandeja de muestras y baje la tapa del compartimento del incubador. Es importante asegurarse de que el fluido de transferencia de calor esté por encima del nivel mínimo de llenado.Si no lo es, agregue más fluido de transferencia de calor utilizando una pipeta de 1000 microlitros. Utilizando el software Easy Experiment del Bio Screen, configure los siguientes parámetros para obtener curvas de crecimiento adecuadas para croce visi. Para el número de muestras, ingrese el número de pocillos con medio o 200, y establezca el filtro entre 420 y 580 nanómetros de ancho de banda.Establezca la temperatura a 30 grados Celsius. La duración del experimento debe ser de un día, cero horas, cero segundos. El intervalo de medición debe ser de 30 minutos.Y finalmente, la agitación debe configurarse en agitación continua y hacer clic en "inicio" para comenzar las lecturas. Obtenga los archivos de salida de la máquina bio screen CMBR. El software easy experiment generará los datos del bio screen en un archivo delimitado por tabulaciones compatible con Microsoft Excel y otros programas.La primera columna, la columna A, muestra el tiempo en que se realizó la medición de la DO durante el experimento. Las columnas siguientes representan cada pocillo de la placa honeycomb del bio screen, inoculada con células de los cultivos de envejecimiento. Elimine la primera lectura de DO de cada columna porque esta lectura es ruido.Normalice los datos restando el valor de densidad óptica del pocillo con YEPD solo de los valores de densidad óptica en cada columna. Esto elimina la absorbancia de fondo provocada por el medio. Las curvas de crecimiento.Las curvas se desplazarán en función de la edad; por ejemplo, al representar gráficamente las curvas de crecimiento del crecimiento de la columna uno, pocillo uno de la placa alveolar a lo largo de los seis puntos temporales, se observa un desplazamiento claramente hacia la derecha de las curvas con el tiempo. La duración del intervalo entre el punto temporal inicial, el día dos, y un punto temporal sucesivo determina la viabilidad a esa edad particular. Calcule el tiempo de duplicación para cada pocillo en función de la cinética de crecimiento del punto temporal del día dos.La ecuación utilizada para calcular el tiempo de duplicación es la siguiente, donde OD uno y OD dos representan mediciones sucesivas de densidad óptica y T uno y T dos son el tiempo entre mediciones. Calcule los tiempos de duplicación solo entre valores de OD de 0.2 y 0.5. El promedio de estos valores es el tiempo de duplicación para ese caso.Bueno, la mayoría de las cepas silvestres de levaduras deberían dar un valor de tiempo de duplicación entre 85 y 90 minutos para cada punto de edad. Calcule el desplazamiento temporal delta T en las curvas de crecimiento en relación con el punto de edad inicial, que es el día dos. Una forma sencilla de hacerlo es determinar la diferencia en el tiempo que tardó cada pocillo en alcanzar una DO de 0.3 entre el punto de edad inicial y cada punto de edad subsiguiente.El tiempo que tardó un pocillo determinado en alcanzar una DO de 0,3 se puede calcular a partir de la ecuación de regresión lineal correspondiente a la densidad óptica en escala logarítmica natural. Calcule la fracción de supervivencia en cada punto de edad para generar una curva de supervivencia, utilizando el punto de edad del día dos inicial, que representa el 100 % de viabilidad para cada punto de edad sucesivo. Calcule el porcentaje de supervivencia utilizando la siguiente ecuación.Donde SN es el porcentaje de supervivencia. Delta TN es el desplazamiento temporal, y Sigma N es el tiempo de duplicación. Genere curvas de supervivencia según se desee para cada uno.Al graficar la fracción de células viables en función de la edad, calcule la integral de supervivencia para cada pocillo; la SI se define como el área bajo la curva de supervivencia y puede estimarse mediante esta fórmula, donde la edad N es el punto de edad y SN es su valor de supervivencia en ese punto de edad. Determine los parámetros estadísticos de los pocillos replicados a partir de los datos de SI y supervivencia. Los parámetros estadísticos comunes de interés incluyen la media, la mediana y la varianza para cada conjunto de réplicas biológicas. Puede utilizarse una prueba T o un análisis similar para la comparación por pares de la SI entre diferentes grupos experimentales y de control.También puede ser conveniente generar curvas de supervivencia a partir del promedio de réplicas biológicas. Al finalizar el experimento, habrá trazado la curva de supervivencia y realizado un análisis de datos suficiente para determinar el potencial de envejecimiento cronológico de varias cepas o condiciones diferentes. Si se realiza correctamente, las curvas de crecimiento obtenidas a partir del equipo Bio Screen CMBR deberían ser similares a esta curva. Por lo general, las células de tipo silvestre cultivadas bajo las condiciones descritas aquí tendrán una esperanza de vida cronológica mediana del orden de siete días.Se observa una variación considerable en la supervivencia entre diferentes cepas y bajo ciertas condiciones, como el crecimiento en medio con 0,05 % de glucosa, donde la supervivencia mediana puede superar los 30 días. Acabamos de mostrarle un método de alto rendimiento para determinar cuantitativamente la longevidad cronológica de la levadura. Croce visier.Es importante recordar que al realizar este procedimiento, el mantenimiento rutinario del equipo Bio Screen CMBR es fundamental para obtener datos reproducibles y precisos. Eso es todo. Buena suerte con sus experimentos.

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