Ensayo de marcaje de pulsos de bromodeoxiuridina: una técnica para medir la proliferación celular

0 vistas3:59 min • April 30th, 2023

- Comience con una suspensión de células leucémicas que contenga la densidad celular deseada. Centrifugar y resuspender las células en un medio de cultivo que contenga suero. La adición de suero promueve el crecimiento celular continuo y las células se mueven a través de las diferentes fases del ciclo celular. Diluir las células en una solución de marcaje de bromodeoxiuridina, o BrdU, y cultivarlas en condiciones fisiológicas durante el tiempo requerido.

Las células en la fase de síntesis o S absorben BrdU, un análogo de la timidina, que reemplaza a la timidina durante el proceso de replicación del ADN. Centrifugar las células para eliminar el exceso de BrdU y resuspender las células en un medio adecuado. Transfiera las celdas a una placa de pocillos múltiples. Permitir que las células crezcan en condiciones fisiológicas durante diferentes períodos de tiempo.

En varios períodos de tiempo, las células progresan a través del resto de las fases S, G2, mitosis y G1 y entran en el siguiente ciclo celular, lo que permite la estimación de la proliferación celular. Realice la tinción de anticuerpos para marcar BrdU con anticuerpo de fluorocromo y mida la proliferación celular mediante citometría de flujo.

Dentro del citómetro de flujo, los fluorocromos absorben la energía del láser y emiten fluorescencia. El número de células proliferantes se correlaciona directamente con la fluorescencia observada. En el protocolo de ejemplo, demostraremos el marcaje del pulso de las células de leucemia linfoblástica aguda.

- Este protocolo utiliza la línea celular de leucemia linfoblástica aguda, NALM6, pero se puede aplicar a cualquier línea celular no adherente. Mantenga las células NALM6 en matraces de cultivo T-75 en RPMI completo a 37 grados Celsius con un 5% de dióxido de carbono en el aire. Después de recolectar las células y realizar un recuento de células, vuelva a suspender las células en RPMI completo a 2 veces 10 a las 6 células por mililitro.

Diluya las celdas 1 en 2 con BrdU Complete RPMI para producir una concentración celular final de 1 por 10 a las 6 celdas por mililitro. Manipule el BrdU con cuidado, ya que es un mutágeno y teratógeno potencial. Incubar a 37 grados centígrados con 5% de dióxido de carbono durante 45 minutos.

A continuación, diluya las células 1 en 10 con Complete RPMI. Centrifugar a 150 veces G durante cinco minutos y desechar cuidadosamente todo el sobrenadante. Vuelva a suspender las células en un pequeño volumen de RPMI completo, realice un recuento de células y ajuste la concentración de células a 1 por 10 a las 6 células por mililitro. Pipetee 1 mililitro de células en cada pocillo de una placa de 48 pocillos.

Pipetear 1 mililitro de DPBS en cualquier pocillo desocupado para obtener resultados más reproducibles. Incubar a 37 grados centígrados en dióxido de carbono al 5% en el aire durante los puntos de tiempo deseados, dependiendo de lo que el diseño experimental pretenda medir. Cuando se complete la incubación, transfiera todas las células a tubos FACS.

Enjuague cada pocillo secuencialmente con volúmenes de 1 mililitro de PBS hasta un volumen total final de 5 mililitros. Centrifugar a 150 veces G durante cinco minutos y retirar con cuidado todo el sobrenadante. Las células ya están listas para la tinción, que debe realizarse de inmediato. Si es necesario teñir la superficie, debe realizarse ahora, antes de la fijación.

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Última actualización: 29 agosto 2026