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- En las células leucémicas, el transporte de macromoléculas, como algunas proteínas supresoras de tumores entre el núcleo y el citoplasma, está desregulado. La mala localización de estas proteínas las hace inactivas, lo que resulta en el crecimiento descontrolado de células leucémicas. Podemos determinar la localización aberrante de dichas proteínas mediante la generación de la fracción citoplasmática y nuclear de células leucémicas.
Comience tomando el volumen deseado de células leucémicas en un tubo de microfuga y centrífugo para granular la célula. Vuelva a suspender el pellet en un tampón de lisis hipotónica y luego agregue la concentración deseada de detergente. El tampón de lisis hipotónica hace que las células se hinchen y rompan la membrana plasmática, dejando intacta la membrana nuclear, aislando así las fracciones citoplasmáticas. El detergente ayuda en la extracción de proteínas de los orgánulos citoplasmáticos.
Centrifugar las células lisadas en suspensión y transferir el sobrenadante a un tubo nuevo. El sobrenadante contiene la fracción citoplasmática de la célula. Para preparar la fracción nuclear, vuelva a suspender el pellet restante en el tampón de lisis completo y agregue detergente. Centrifugar y recoger la fracción nuclear presente en el sobrenadante en un tubo de microfuga. Almacene las fracciones citoplasmáticas y nucleares a menos 80 grados Celsius para su posterior análisis. En el siguiente protocolo, demostraremos la generación de fracciones subcelulares a partir de células leucémicas.
Una vez completada la estimulación y/o la incubación del tratamiento farmacológico, se transfieren las células a tubos de microfuga de 1,5 mililitros marcados individualmente y pellets por centrifugación a 200 veces g durante 5 minutos a 4 grados centígrados. Después de desechar el sobrenadante, vuelva a suspender el pellet celular en 1 mililitro de PBS helado con inhibidores de la fosfatasa. Centrifugar a 200 veces g durante 5 minutos a 4 grados centígrados. Retire el sobrenadante y mantenga estos gránulos de extracto de célula entera en hielo para preparaciones posteriores.
Para preparar las fracciones citoplasmáticas, vuelva a suspender suavemente los gránulos celulares en 50 microlitros de 1 X tampón hipotónico. Para permitir que las células se hinchen, incubarlas en hielo durante 15 minutos. Después de realizar un gradiente de detergente para determinar la concentración óptima de detergente a utilizar para un tipo de célula específico, añada de 0,8 a 2,5 microlitros de detergente en cada muestra y vórtice en la configuración más alta durante 10 segundos.
Para verificar la lisis celular, observe las células bajo un microscopio de contraste de fase antes y después de la adición de detergente. Todas las células tienen un núcleo denso y oscuro, rodeado por el citoplasma que aparece como un halo brillante. Una vez lisadas, centrifugar las muestras a 14.000 veces g durante 30 segundos a 4 grados centígrados. Con cuidado, sin alterar el pellet, transfiera el sobrenadante a un tubo de microfuga previamente enfriado y etiquetado y almacene esta fracción citoplasmática a menos 80 grados Celsius hasta un análisis más detallado.
Asegurar la eliminación completa de la fracción citoplasmática para evitar la contaminación de la fracción nuclear.
Al pellet restante, que contiene la fracción nuclear, se añaden 50 microlitros de tampón de lisis completo y se vuelve a suspender pipeteando hacia arriba y hacia abajo. Para solubilizar las proteínas asociadas con la membrana nuclear, agregue 2,5 microlitros de detergente, vórtice en la configuración más alta durante 10 segundos e incube en hielo durante 30 minutos. Vórtice en la configuración más alta durante 30 segundos y centrifuga. Luego, transfiera el sobrenadante a un tubo de microfuga previamente enfriado y etiquetado, y almacene esta fracción nuclear a menos 80 grados Celsius hasta un análisis adicional.