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- Los factores de transcripción son proteínas que se unen a un sitio específico en el ADN para regular la expresión génica. Los errores en los factores de transcripción alteran esta actividad, lo que conduce a la sobreexpresión de genes, lo que causa cáncer. Para comprender el papel de los factores de transcripción y la regulación génica, podemos realizar un ensayo de inmunoprecipitación de cromatina o CHIP, y el cizallamiento de la cromatina es un paso importante en el flujo de trabajo de CHIP.
Para el cizallamiento de la cromatina, estabilice el complejo ADN-proteína mediante la adición de formaldehído. El formaldehído entrecruza las proteínas con la secuencia de ADN asociada mediante la formación de enlaces covalentes. A continuación, utilice un tampón de lisis adecuado para lisar las células y liberar la cromatina que contiene los complejos de proteínas y ADN reticulados y la centrífuga. Cizallar la cromatina utilizando la enzima nucleasa microcócica. Esta enzima escinde la cromatina entre los nucleosomas y digiere los extremos sueltos del ADN. Centrifugar la mezcla y recoger el sobrenadante.
Cargue el sobrenadante en el gel de agarosa TBE para analizar el tamaño adecuado de los fragmentos de ADN. Aplique un campo eléctrico a través del gel, lo que hace que el ADN de la cromatina cargado negativamente se mueva hacia el ánodo. Los fragmentos más pequeños se desplazan más abajo en el gel. La cromatina cortada aparece como una mancha en el gel. En el siguiente protocolo, cortaremos la cromatina de la línea celular de leucemia mieloide crónica mediante sonicación.
- Para empezar, llena un tubo de 1,5 milímetros con 1 mililitro de formaldehído al 37%. Luego, llene otro tubo de 1,5 mililitros con 1 mililitro de glicina molar 1,25 y un tubo de 5 mililitros con 4 mililitros de PBS. A continuación, después de la estimulación de las células, haga girar las células de acuerdo con el protocolo de texto y vuelva a suspender las células en 500 microlitros de PBS y coloque el tubo en una caja llena de hielo. Agregue 13,5% de microlitros de formaldehído al 37% a las celdas y mezcle pipeteando hacia arriba y hacia abajo.
Luego, incuba la suspensión a temperatura ambiente. Después de esto, agregue 57 microlitros de glicina 1,25 molar para detener la fijación y deje que esta suspensión se incube a temperatura ambiente durante cinco minutos. Inmediatamente después del período de incubación, coloque las células en hielo y centrifugue las células a 500 veces g durante cinco minutos a 4 grados centígrados. A continuación, aspire el sobrenadante. A continuación, lavar las células dos veces con 1 mililitro de PBS helado a 200 veces g durante cinco minutos a 4 grados centígrados y retirar el sobrenadante. Vuelva a suspender el pellet de celda en 5 mililitros de tampón de lisis-1 pipeteando hacia arriba y hacia abajo.
Luego, coloque las muestras en hielo e incubelas agitando durante 10 minutos. Después de esto, centrifugar los tubos a 500 veces g durante cinco minutos a 4 grados centígrados. A continuación, utilice la pipeta para retirar con cuidado el sobrenadante. Homogeneizar las células en 5 mililitros de tampón de lisis-2 y pipetear hacia arriba y hacia abajo para mezclar. Luego, incubar las células en hielo durante 10 minutos agitando. Después del período de incubación, centrifugar los tubos a 500 veces g durante cinco minutos a 4 grados centígrados y retirar con cuidado el sobrenadante.
A continuación, vuelva a suspender el pellet de la célula en el tampón de cizallamiento-1 con un inhibidor de la proteasa 1X. A continuación, incuba la suspensión celular en hielo durante 10 minutos. Transfiera 140 microlitros de la suspensión celular a los tubos sonicadores, teniendo cuidado de evitar la formación de burbujas de aire. Coloque los tubos en un ultrasonido enfocado a 7 grados centígrados y corte durante diez a siete minutos y medio. Transfiera la suspensión de la celda a tubos de 1,5 mililitros. Centrifugar las muestras a 15.700 veces g durante 10 minutos a 4 grados centígrados y recoger el sobrenadante en un tubo nuevo.