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Tome una placa de pocillos múltiples que contenga un cultivo de células epiteliales de mamíferos.
En los pocillos de prueba, agregue un patógeno bacteriano junto con perlas de polímero acopladas a proteínas de superficie bacteriana.
En los pocillos de control, agregue el patógeno y las perlas que carecen de proteínas bacterianas de la superficie. Incubar.
En los pocillos de prueba, las perlas imitan la superficie bacteriana y compiten con el patógeno por unirse al ácido fosfatídico de la membrana celular epitelial, reduciendo la unión bacteriana.
En los pocillos de control, las perlas no afectan la unión bacteriana.
Retire el medio y lávelo con tampón para eliminar los componentes no unidos.
Incubar con un detergente no iónico para lisar las células, liberando bacterias y perlas adheridas a la membrana.
Pipetear el lisado para crear una suspensión homogénea y diluir en serie el homogeneizado con tampón.
Transfiera las diluciones a placas de agar, incube para permitir la formación de colonias y cuente las colonias.
La placa de prueba exhibe menos colonias que los controles, lo que indica una reducción de las interacciones bacteriano-huésped.
Prepare medios de infección diluyendo cultivos bacterianos en DMEM incoloro sin aditivos.
Precalentado a 37 grados Celsius que contiene un 10% de volumen a volumen de suspensión de cuentas. Para dar un MOI de 10, prepare un mililitro por pocillo y de 10 a 20% de exceso de volumen por muestra. Retire el medio viejo de los pocillos y lave las células HeLa cultivadas agregando a cada pocillo un mililitro de PBS estéril precalentado a 37 grados centígrados. Retire el PBS y agregue un mililitro de medio de infección por pocillo. Agregue soluciones que contengan perlas de control y bacterias como controles positivos y perlas de adhesión y ninguna bacteria como controles negativos.
Agregue DMEM que contenga 0.1% de Triton X 100 como controles de lisis.
Incube la placa en una incubadora de cultivo de tejidos a 37 grados Celsius durante el tiempo deseado.
Las mediciones de la adhesión bacteriana se realizan una hora después de la infección. Retire el medio de la capa celular y lave bien la capa celular con PBS precalentado estéril para eliminar cualquier célula suelta. Lávese al menos tres o cuatro veces con un mililitro de PBS cada vez. Lisar las células huésped añadiendo a cada pocillo un mililitro de una solución estéril de Triton X 100 al 1% volumen a volumen en PBS. Incube la placa a 37 grados centígrados durante cinco minutos.
Pipetee cada muestra hacia arriba y hacia abajo varias veces antes de transferir el contenido de cada pocillo a tubos separados de 1,5 mililitros. Prepare diluciones en serie diez veces mayores de las muestras en PBS estéril. Colocar 100 microlitros de cada muestra en agar LB marino y esparcir con un esparcidor celular. Optimice la dilución en la placa en función de las cepas bacterianas y el punto de tiempo.
Para esta configuración experimental, una dilución de 10 a la quinta o de 10 a la sexta vez dará un número adecuado de UFC. Incube las placas a 37 grados centígrados durante la noche. Al día siguiente, enumere las bacterias por recuento de colonias.