7 de noviembre de 2010
Este protocolo describe una técnica rápida para cuantificar la translocación de GLUT4 desde el citoplasma a la membrana plasmática de las células por citometría de flujo.
El objetivo general de este procedimiento es detectar la translocación de GLUT4 hacia la membrana plasmática de células de mamífero en respuesta a la exposición a insulina. Primero, se siembran mioblastos privados de suero, que poseen únicamente la proteína GLUT4 intravesicular, en una placa de cultivo de 24 pocillos con un anticuerpo contra un epítopo externo de GLUT4. Luego, se añade un anticuerpo secundario marcado con un fluoróforo, previamente incubado, a las células, seguido de insulina.
La activación de los receptores de insulina en la superficie de las células provoca la translocación de glute cuatro hacia la superficie de la membrana plasmática. Luego, glute cuatro es reconocido por los anticuerpos presentes en el medio. En este momento, las células pueden fijarse y la intensidad de la tinción fluorescente puede medirse mediante citometría de flujo.
Este método puede utilizarse para estudiar la translocación de GLUT4 y el metabolismo de la glucosa, pero también puede aplicarse a otros sistemas, como la desgranulación de células NK mediante la exposición de CD107a en la membrana. Para este procedimiento, es importante utilizar células que estén en crecimiento activo o que tengan una confluencia del 60 al 80 % y que hayan sido privadas de suero durante la noche. Después de recolectar las células mediante tripsinización, lávese y resuspéndanse en medio de crecimiento habitual a una concentración de 200 000 células por mililitro; plaque las células en una placa de 24 pocillos a 0,1 millones por 500 microlitros por pocillo. A continuación, incúbese las células durante una hora a 37 °C para permitir que se recuperen de la tripsina.
Mientras tanto, mezcle el anticuerpo primario anti glute cuatro y el anticuerpo secundario de pollo anti IgG conjugado con Alexa Fluor 4 8 8 en una proporción de cinco a uno, calcule el volumen final necesario, teniendo en cuenta que se utilizarán 10 microlitros de la mezcla de anticuerpos para cada pozo. Incube la mezcla de anticuerpos durante 10 minutos a temperatura ambiente en la oscuridad mientras se prepara la mezcla. Prepare un stock de trabajo dos veces concentrado de insulina diluyéndola a la concentración deseada en medio de crecimiento.
Una vez que las células hayan incubado durante una hora, retírelas del incubador. Añada suavemente 10 microlitros de solución de anticuerpo a cada pocillo que contenga células. Asegúrese de dejar al menos un pocillo sin teñir.
Esta muestra negativa se utilizará posteriormente para configurar el citómetro de flujo. A continuación, agregue 500 microlitros del stock de insulina al doble a cada pocillo para inducir la translocación de glute cuatro hacia la superficie celular e incube la placa durante 30 minutos a 37 grados Celsius en la oscuridad. Después de retirar las células del incubador, fíjelas agregando un mililitro de PBS con 1 %PFA a cada pocillo e incube la placa durante 20 minutos a temperatura ambiente en la oscuridad; utilizando un levantador de células, desprenda suavemente las células fijadas del fondo de los pocillos y transfiéralas desde cada pocillo a un tubo individual para citometría.
Centrifugar los tubos para hacer un pellet de las células, luego vortexear y resuspenderlas en un mililitro de PBS para lavar y centrifugar las células nuevamente; repetir el lavado. Paso dos veces. Desechar el sobrenadante entre cada lavado.
Finalmente, resuspenda las células lavadas en 400 microlitros de PBS con 1% de PFA. Ahora las células pueden analizarse para determinar la expresión superficial de glute cuatro en el citómetro de flujo. Una vez que haya llegado al citómetro de flujo con sus muestras, comience a adquirir datos a partir del control sin teñir.
Defina una puerta amplia para células vivas utilizando los parámetros de dispersión frontal y lateral. Luego, ajuste la configuración de voltaje para el canal FL1 de modo que el pico negativo sea visible dentro de los márgenes del histograma. Una vez establecidos estos parámetros, analice cada muestra experimental registrando al menos 10.000 eventos viables por tubo.
Este histograma muestra la sobreexpresión de la tinción de glutamato en la superficie o de los mioblastos expuestos a 0, 1, 10 o 100 nanomolares de insulina. En contraste, los mioblastos de individuos resistentes a la insulina no logran sobreexpresar glu cuatro en respuesta a 100 nanomolares de insulina. Si las intensidades fluorescentes medias de las células estimuladas se normalizan respecto a las de las células no estimuladas, es posible comparar directamente las IMF de mioblastos sanos y resistentes a la insulina.
Mediante este procedimiento, las células pueden ser marcadas con marcadores adicionales de superficie o intracelulares para identificar diferentes subpoblaciones celulares en poblaciones mixtas.
Este protocolo describe una técnica rápida para cuantificar la translocación de GLUT4 desde el citoplasma hasta la membrana plasmática de células mediante citometría de flujo. El método permite la detección de la translocación de GLUT4 en respuesta a la exposición a insulina en células de mamíferos.
La cuantificación de la translocación de GLUT4 proporciona una lectura funcional directa de la eficacia de la señalización de insulina en modelos de enfermedades metabólicas. Este ensayo basado en citometría de flujo permite una evaluación rápida y cuantitativa del acoplamiento al blanco y la activación de la vía en células sensibles a la insulina. Apoya la validación temprana del blanco y la reducción mecanicista de riesgos para terapias contra la diabetes y la obesidad, al vincular la intervención molecular con los mecanismos fisiológicos de captación de glucosa.
El ensayo se integra en la continuidad desde el descubrimiento hasta la preclínica, permitiendo la evaluación de moduladores de la vía de insulina desde la confirmación del blanco hasta la validación funcional en modelos de enfermedades metabólicas.