Name: Aislamiento y cultivo de células de la zona nefrogénica del riñón de embriones de ratón (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-04-22T11:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 6 s
Description: Aprende a aislar y cultivar células de la zona nefrogénica de riñones de embriones de ratón E17.5 mediante digestión enzimática. Este método permite estudiar vías de señalización en progenitores renales para investigaciones en nefrología y medicina regenerativa.

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Este trabajo fue apoyado por el R01 DK078161 de NIDDK (LO), becas postdoctorales de la American Heart Association (AB), la Fundación Wenner-Gren de Suecia y Kungliga Fysiografiska Sällskapet, Lund, Suecia (UB). Apoyo adicional fue proporcionada por el Centro Médico de Maine instalaciones centrales del Instituto de Investigación para la histopatología, Bioinformática y FACS (apoyado por 2P20RR18789-06) y el Fondo para el Animal MMCRI.

1. Preparación de los reactivos para la digestión del Riñón <ol><li> 1,5 ml de 0,25% de colagenasa A (w / v) y una solución de pancreatina digerir% (w / v) serán necesarios para la extracción de células de la zona nefrogénica (NZCs) de 8 E17.5 riñones. Debido a la pancreatina de aproximadamente 2 horas para disolver a temperatura ambiente, lo suficiente para digerir la solución al mayor número de riñones embrionarios espera que debe hacer antes del experimento. Prepare una solución digerir primero la adición de 25 mg de colagenasa A 10 ml de fosfato de Dulbecco solución salina tamponada (DPBS) en un claro de 15 ml, tubo de centrífuga estéril. Es muy importante que el DPBS no contiene calcio o magnesio, ya que esto interfiere con la digestión enzimática. Mezcle la solución en un nutator durante 10 minutos para disolver colagenasa A. Añadir 100 mg de pancreatina de colagenasa disuelto una solución y se mezcla en un nutator por lo menos 2 horas. Por otra parte, la colagenasa A / pancreatina solución de digestión se pueden mezclar en una nutator la noche a 4 ° C. Se recomienda que use una máscara, como la colagenasa A y pancreatina se dispersan fácilmente en la atmósfera durante el pesaje y puede irritar los conductos nasales. </li><li> Preparar un 5% de suero fetal bovino (SFB) (v / v) en solución salina tamponada de Hank (HBSS). Invierta para mezclar. 1 ml por cada tubo, de 8 de los riñones será necesario. </li><li> Preparar medio de cultivo de queratinocitos, completándolo medio libre de suero con 1% de glutamina (v / v) y el 1% penicilina-estreptomicina (Penstrep) (v / v). </li><li> Capa estéril de poliestireno de fondo plano placas de cultivo de tejidos (96, 48, 24 o 6 también) con la solución de fibronectina humana a una concentración de 5 mg por cm2 de superficie de crecimiento. 5 mg de polvo de fibronectina se resuspende en 5 ml de H 2 O. estéril Este se diluye 1:25 en DPBS estéril sin calcio ni magnesio y 250 ml se añade a cada pocillo de una placa de 24 pocillos. Las placas se incuban con la solución de fibronectina a temperatura ambiente durante 1 hora seguido de 1 hora a 4 ° C. Por otra parte, las placas pueden ser incubadas durante la noche a 4 ° C. La solución se aspira en una campana de flujo laminar antes de la adición de medio / las células. </li></ol> 2. Los riñones de disección y eliminación de cápsulas (Hecho a temperatura ambiente) <ol><li> En E17.5, el sacrificio de la madre con un procedimiento aprobado por el Cuidado de Animales institucional y el empleo, extirpar el útero, y colocarlo en una placa de Petri que contiene DPBS con calcio y magnesio. Bajo un microscopio de disección, el uso de fórceps de relojería para eliminar cada embrión en el útero y decapitar a cada embrión. Una vez que toda la camada y está fuera del útero, la transferencia de los embriones a una placa de Petri que contiene limpia DPBS suficiente con el calcio y el magnesio para cubrir completamente los embriones dejando tras de sí tanta sangre y restos de tejido como sea posible. </li><li> Con unas pinzas, hacer una incisión circunferencial en la pared abdominal del embrión a nivel del ombligo. A continuación, coloque el embrión en su espalda, el pasador hacia abajo en los hombros con un juego de pinzas, y quitar los órganos internos de los pulmones hasta la vejiga con el otro juego de pinzas. Con la práctica esto se puede hacer en un solo movimiento. Los riñones deben adjuntarse a la parte posterior de la masa de los órganos. Si los riñones no permanecen unidos a los órganos eviscerados, pueden ser cuidadosamente removida de la pared dorsal del cuerpo. Los riñones que han sido dañados durante el proceso de disección debe ser desechada, ya que va a contaminar el cultivo final con los tipos de células inapropiadas. </li><li> Suavemente se burlan de distancia de los riñones del resto de los órganos, teniendo cuidado de mantener los riñones conectados entre sí. Mantener el tejido entre los riñones con un juego de pinzas de agarre y de la glándula suprarrenal adjunta a uno de los riñones con las pinzas de otros. La glándula adrenal debe ser unido a la cápsula renal. Con cuidado, vaya a la glándula suprarrenal y la cápsula lejos de alrededor del exterior del riñón, de forma similar a pelar un plátano. Tenga cuidado de no dividir el riñón a la mitad, mientras se pelan, y asegúrese de no dañar el tejido renal por debajo de la cápsula. Retire con cuidado el resto de la cápsula, así como el uréter si todavía está conectado. Repita con el otro riñón. </li><li> Utilice una pipeta de corte para colocar los riñones en un tubo de poliestireno de 5 ml de HBSS. Repita los pasos 2.2 a 2.4 por cada embrión. Los riñones se pueden juntar 8 por tubo. Con la eliminación práctica de la disección y la cápsula se llevará a 2-3 minutos de cada embrión. </li></ol> 3. La digestión enzimática de los riñones (todas las medidas a temperatura ambiente a menos se indique lo contrario) <ol><li> Retire la solución HBSS de tubos de 5 ml que contienen los riñones con una pipeta evitando cuidadosamente el contacto con los riñones. Inmediatamente añadir 1,5 ml de colagenasa A / pancreatina solución de digestión en el tubo de 5 ml que contienen los riñones antes de pasar a la siguiente muestra. Repita este procedimiento para cada tubo de los riñones. </li><li> Se colocan los tubos con la enzima renal / digiere en un nutator en un pre-calentado incubadora a 37 ° C durante 15 minutos. 2 minutos antesfinalización de la digestión, añadir 3 l de DNasa (1 U / ml) a un nuevo tubo de poliestireno de 5 ml por cada digestión se realiza. </li><li> Quite rápidamente la digestión de la incubadora, añadir 75 l de FBS y se invierte tres veces para mezclar. Deje reposar en el banco durante 2 minutos. </li><li> La transferencia de 1,4 ml de la suspensión de células en el tubo de poliestireno de 5 ml que contienen DNasa (1 U / ml), dejando los restantes 0,2 ml de suspensión celular y los riñones por detrás. El extra 0,2 ml de solución se dejó contener impurezas tales como la matriz extracelular. </li><li> Mezcle la suspensión de células / DNasa en una nutator en un 37 precalentado ° C incubadora durante 10 minutos. </li><li> Eliminar rápidamente las suspensiones de células de la incubadora y la transferencia de cada uno a un tubo Eppendorf de 1,5 ml. Giro suspensiones celulares en microcentrífuga a 325 g durante 5 minutos. </li><li> Quitar el sobrenadante de pellet de células y resuspender pellet en 1 ml de 5% de SFB / HBSS, pipeteando arriba y abajo 5 a 6 veces. Cap cada tubo antes de pasar a la siguiente muestra. </li><li> Giro suspensiones celulares en una microcentrífuga a 325 g durante 5 minutos. </li><li> Aspirar el sobrenadante y añadir 0,5 ml de queratinocitos medio libre de suero (KSFM), con aditivos para cada tubo y el tubo de tapa antes de pasar a la siguiente muestra. Después de medio ha sido añadido a todos los tubos, suavemente resuspender cada pellet de células pipeteando arriba y abajo 5 a 6 veces con una micropipeta de 1 ml. Combine todas las suspensiones de células en un tubo de poliestireno de 5 fresca ml. </li><li> Humedecer previamente dos de 40 micras de células colador-caps colocado en un tubo de 5 ml de poliestireno de fondo redondo con KSFM por muestra. Pase suspensiones celulares a través de un tapón del filtro mediante la transferencia de células con una micropipeta de 1 ml. Evite tocar el filtro con la punta de la pipeta. Recoger el filtrado y repetir filtración a través de la tapa del filtro de segundo. Quite la tapa del filtro de células y reemplazar con una nueva tapa de un tubo de poliestireno normal 5 ml. </li><li> Recuento de células con un hemocitómetro o celulares cuenta-y las células de transferencia a los pozos de una placa de cultivo de la fibronectina recubierto con una densidad de 100.000-200.000 células por cm 2, según sea necesario diluir con KSFM con aditivos. Por lo general, se recupera aproximadamente 4.5x10 6 células de embriones por camada 10. </li><li> Se incuban las células en un 37 ° C incubadora humidificada con 5% de CO 2. </li><li> Permiten a las células para recuperarse y conectar de 2-4 horas en medio antes de la estimulación con reactivos adicionales. Estimular las células con el compuesto de interés de 1 a 48 horas. Purificar el ARN para análisis de PCR utilizando el kit Qiagen RNeasy Micro siguiendo las instrucciones del fabricante o siga las instrucciones para la inmunotinción con fluorescencia de las células. </li></ol> 4. Preparación de los reactivos para la fijación de las células y la inmunotinción <ol><li> Prepare un 4% PFA: Disuelva 4% de paraformaldehído en PBS (v / v) a 55 ° C con agitación periódica. Enfriar a temperatura ambiente antes de su uso. Esta solución es tóxico y debe ser desechado en recipientes de desperdicio. </li><li> Prepare una solución de permeabilización mediante la adición de Triton X-100 a PBS para obtener una solución al 0,3% (v / v). </li><li> Prepare una solución al 5% de bloqueo en PBS con suero de la misma especie que se utilizó para elevar el anticuerpo secundario que se utilizará. Por ejemplo, si se quiere detectar un anticuerpo de conejo contra el antígeno diana con un burro anti-conejo Alexa Fluor 568, prepare una solución de bloqueo con 5% de suero de burro. Almacenar a 4 ° C. </li><li> Prepare una solución de anticuerpo primario mediante la adición de la concentración adecuada de anticuerpos contra el 5% de solución de bloqueo. </li><li> Prepare una solución de anticuerpo secundario inmediatamente antes del uso. Añadir anticuerpo conjugado con fluoróforo a una concentración recomendada por el fabricante junto con la nuclear DAPI de contraste y otros marcadores de orgánulos como phalloidin de solución al 5% de bloqueo. Si el almacenamiento es necesario, mantener la solución en la oscuridad a 4 ° C hasta su uso. </li><li> Prepare 50% de glicerol / PBS solución (v / v) para el almacenamiento de células inmuno-. Por otra parte, Vectashield se puede utilizar. </li></ol> 5. La fijación de las células y la inmunotinción <ol><li> El siguiente protocolo se ha diseñado para la fijación y la tinción de NZCs en una placa de 24 pocillos. Los volúmenes indicados se refieren a un solo pozo. Los reactivos deben ser cuidadosamente pipeta durante todos los pasos para evitar la separación de las células, y la agitación de placas no se recomienda en las etapas de incubación. </li><li> Retire con cuidado el medio con una micropipeta de 1 ml y añadir 0,5 ml de PFA al 4% de las células cultivadas adjunta. Incubar durante 15 minutos a temperatura ambiente sin perturbaciones. </li><li> Quitar el 4% PFA y añadir 0,5 ml por pocillo de solución de permeabilización. Incubar durante 10 minutos a temperatura ambiente. </li><li> Eliminar la solución de permeabilización y enjuague suavemente dos veces con 0,5 ml de PBS por aclarar. </li><li> Añadir 0,5 ml de solución de bloqueo e incubar a temperatura ambiente durante 60 minutos. </li><li> Retire la solución de bloqueo y añadir 0,225 ml de solución de anticuerpo primario. </li><li> Incube a temperatura ambiente durante 2 horas o toda la noche a 4 ° C. </li><li> Eliminar la solución de anticuerpo primario y ri suavementense dos veces con 0,5 ml de PBS por aclarar. </li><li> Añadir 0,225 ml de solución de anticuerpo secundario. Incubar la placa en la oscuridad a temperatura ambiente durante 60 minutos. </li><li> Eliminar la solución de anticuerpo secundario y enjuague suavemente dos veces con 0,5 ml de PBS por aclarar. </li><li> Añadir 0,3 ml de 50% de glicerol / PBS solución (v / v) o Vectashield suficiente para cubrir el fondo de la superficie también. </li><li> Las celdas de imagen con microscopio de epifluorescencia o tienda envueltos en papel de aluminio a 4 ° C. </li></ol> 6. Resultados representante <img src="/files/ftp_upload/2555/2555fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. NZCs fueron purificados a partir de E17.5 embriones, chapada a 200.000 células por cm 2 y se incuba a 37 ° C durante un total de 24 horas. Las células fueron fotografiadas por contraste de fases con un microscopio Leica DM IRB invertido antes de la tinción de inmunofluorescencia. (A) 20 veces vista fase de contraste de NZCs después de 24 horas en la cultura. (B) Las células fueron fijadas y teñidas con un conejo anti-PAX2 anticuerpo específico para células progenitoras de nefronas (rojo) y uno secundario Alexa Fluor 568 burro conjugado anti-conejo. Nota núcleos azules contrastados con DAPI. (C) Fase de 40X ver el contraste de un grupo de progenitores de nefronas (centro) después de 24 horas en la cultura. (D) de la imagen 40X NZCs aislado de LacZ + embriones de la cepa Foxd1 LacZ, que expresa β-galactosidasa bajo el control del promotor Foxd1. Foxd1 se expresa en la población de células del estroma en la zona nefrogénica de los riñones en desarrollo. Las células se tiñeron con la F-actina phalloidin marcador (Oregon verde primario conjugado), la nuclear tinte DAPI (azul) y de conejo anti-β-galactosidasa (secundaria - Alexa Fluor burro anti-conejo de 568) para la detección de las células del estroma Foxd1 + ( rojo).

<ol><li>Blank, U., Brown, A., Adams, D. C., Karolak, M. J., Oxburgh, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((BMP7+promotes+proliferation+of+nephron+progenitor+cells+via+a+JNK-dependent+mechanism%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">BMP7 promotes proliferation of nephron progenitor cells via a JNK-dependent mechanism.</a> Development. 136, 3557-3566 (2009).</li>
<li>Brunskill, E. W., Aronow, B. J., Georgas, K., Rumballe, B., Valerius, M. T., Aronow, J., Kaimal, V., Jegga, A. G., Grimmond, S., McMahon, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Atlas+of+gene+expression+in+the+developing+kidney+at+microanatomic+resolution%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+Cell%22%5BJournal%5D)">Atlas of gene expression in the developing kidney at microanatomic resolution.</a> Developmental Cell. 15, 781-791 (2008).</li>
<li>Godin, R. E., Takaesu, N. T., Robertson, E. J., Dudley, A. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+BMP7+expression+during+kidney+development%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Regulation of BMP7 expression during kidney development.</a> Development. 125, 3473-3482 (1998).</li>
<li>Grobstein, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inductive+epitheliomesenchymal+interaction+in+cultured+organ+rudiments+of+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Inductive epitheliomesenchymal interaction in cultured organ rudiments of the mouse.</a> Science. 118, 52-55 (1953).</li>
<li>Grobstein, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Morphogenetic+interaction+between+embryonic+mouse+tissues+separated+by+a+membrane+filter%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Morphogenetic interaction between embryonic mouse tissues separated by a membrane filter.</a> Nature. 172, 869-870 (1953).</li>
<li>Hatini, V., Huh, S. O., Herzlinger, D., Soares, V. C., Lai, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Essential+role+of+stromal+mesenchyme+in+kidney+morphogenesis+revealed+by+targeted+disruption+of+Winged+Helix+transcription+factor+BF-2%5BTitle%5D)+AND+%22Genes+and+Development%22%5BJournal%5D)">Essential role of stromal mesenchyme in kidney morphogenesis revealed by targeted disruption of Winged Helix transcription factor BF-2.</a> Genes and Development. 10, 1467-1478 (1996).</li>
<li>Oxburgh, L., Chu, G. C., Michael, S. K., Robertson, E. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((TGFb+superfamily+signals+are+required+for+morphogenesis+of+the+kidney+mesenchyme+progenitor+population%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">TGFb superfamily signals are required for morphogenesis of the kidney mesenchyme progenitor population.</a> Development. 131, 4593-4605 (2004).</li>
<li>Srinivas, S., Watanabe, T., Lin, C. S., William, C. M., Tanabe, Y., Jessell, T. M., Costantini, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cre+reporter+strains+produced+by+targeted+insertion+of+EYFP+and+ECFP+into+the+ROSA26+locus%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Developmental+Biology%22%5BJournal%5D)">Cre reporter strains produced by targeted insertion of EYFP and ECFP into the ROSA26 locus.</a> BMC Developmental Biology. 1, 4-4 (2001).</li>
<li>Yu, J., Carroll, T. J., McMahon, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sonic+hedgehog+regulates+proliferation+and+differentiation+of+mesenchymal+cells+in+the+mouse+metanephric+kidney%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Sonic hedgehog regulates proliferation and differentiation of mesenchymal cells in the mouse metanephric kidney.</a> Development. 129, 5301-5312 (2002).</li>
</ol>

En este protocolo se describe un método para aislar y cultivar células de la zona nefrogénica del riñón embrionario. Es el desarrollo de un método publicado inicialmente como parte de un estudio de los efectos de BMP7 tratamiento de las células de la zona nefrogénica (al blanco y otros., 2009). En el estudio inicial, una serie de experimentos para caracterizar los tipos de células representadas en la población NZC se llevaron a cabo. En pocas palabras, la purificación de NZCs de los periodistas genétic...

<table><tbody><tr><td>Relojero&amp;rsquo;s fórceps n.º 5</td><td>Roboz Surgical Instruments Co.</td><td>RS-4905</td><td>2 pares requeridos</td></tr><tr><td>Colagenasa A</td><td>Grupo Roche</td><td>10 103 578 001</td><td>Usar mascarilla</td></tr><tr><td>Pancreatina porcina</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P8096</td><td>Usar mascarilla</td></tr><tr><td>DPBS con Ca, Mg</td><td>Lonza Inc.</td><td>17-513F</td><td>Con Mg &amp;y Ca</td></tr><tr><td>Suero bovino fetal (SBF)</td><td>BioWhittaker</td><td>14-901E</td><td></td></tr><tr><td>HBSS</td><td>GIBCO, por Life Technologies</td><td>14175</td><td></td></tr><tr><td>KSFM</td><td>GIBCO, por Life Technologies</td><td>10724-011</td><td>sin factores de crecimiento añadidos</td></tr><tr><td>L-glutamina 200 mM</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G7513</td><td>Usar al 1% v/v</td></tr><tr><td>PenStrep 10.000 U de penicilina/ml, 10 mg de estreptomicina/ml</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P4333</td><td>Usar al 1% v/v</td></tr><tr><td>Fibronectina</td><td>BD Biosciences</td><td>356008</td><td>Suministrado en forma de polvo</td></tr><tr><td>placa de cultivo de 24 pocillos</td><td>Thermo Fisher Scientific, Inc.</td><td>142485</td><td>Nunclon</td></tr><tr><td>DPBS sin Mg &amp;y Ca</td><td>Lonza Inc.</td><td>17-512F</td><td></td></tr><tr><td>tubos de poliestireno de 5 mL</td><td>BD Biosciences</td><td>352235</td><td></td></tr><tr><td>DNasa (1 U/&amp;mu;l)</td><td>Invitrogen</td><td>18068-015</td><td>4 &amp;#x03BC;l por 1,5 ml</td></tr><tr><td>Filtro celular de 40 micrones </td><td>BD Biosciences</td><td>352235</td><td>con tapa y tubo</td></tr><tr><td>Paraformaldehído</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P6148</td><td>Usar al 4 % p/v</td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>VWR international</td><td>VW3929-2</td><td>Usar al 0,3 % v/v</td></tr><tr><td>PBS</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P3813</td><td>Suministrado en forma de polvo</td></tr><tr><td>Suero de asno</td><td>Jackson ImmunoResearch</td><td>017-000-121</td><td> Usar al 5 % v/v</td></tr><tr><td>Conejo anti-PAX2 </td><td>Invitrogen</td><td>71-6000</td><td>Diluir 1:100</td></tr><tr><td>Anticuerpo anti-conejo&amp;#946;-gal</td><td>MP Biomedicals</td><td>559762</td><td>Diluir 1:200</td></tr><tr><td>Oregon Green 488 faloidina</td><td>Invitrogen</td><td>O7466</td><td>Diluir 1:200</td></tr><tr><td>Anticuerpo secundario de asno anti-conejo Alexa Fluor 568</td><td>Invitrogen</td><td>A10042</td><td>Diluir 1:200</td></tr><tr><td>DAPI</td><td>Invitrogen</td><td>D1306</td><td>Diluir 1:5000</td></tr><tr><td>Vectashield</td><td>Vector Laboratories</td><td>H-1000</td><td></td></tr><tr><td>Glicerol</td><td>EMD Millipore</td><td>GX0185-6</td><td>Mezcle 50 % con H&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;O</td></tr><tr><td>RNeasy Micro Kit</td><td>Qiagen</td><td>74004</td><td>Uso &quot;DNasa en columna&quot; protocolo</td></tr><tr><td>Pipetas Pasteur, 3 ml</td><td>BD Biosciences</td><td>357575</td><td></td></tr></tbody></table>

aislamiento y cultivo de células de la zona nefrogénica del riñón de embriones de ratón

Isolation and Culture of Cells from the Nephrogenic Zone of the Embryonic Mouse Kidney

El desarrollo embrionario del riñón ha sido ampliamente estudiado como un modelo para la interacción epitelio-mesénquima en la organogénesis y para ganar la comprensión de los orígenes de la enfermedad renal congénita. Más recientemente, la posibilidad de dirigir ingenuo células madre embrionarias hacia destinos nefrogénica ha sido explorada en el campo emergente de la medicina regenerativa. Los estudios genéticos en ratones han identificado varios caminos necesarios para el desarrollo del riñón, y un catálogo global de la transcripción de genes en el órgano ha sido recientemente generada <a href="http://www.gudmap.org/">http://www.gudmap.org/</a> , proporcionando numerosas candidato reguladores de las funciones esenciales del desarrollo. Organogénesis del riñón de roedores puede ser estudiado en cultivos de órganos, y muchos informes se ha utilizado este enfoque para analizar los resultados de la aplicación de cualquiera de las proteínas candidatas o derribar la expresión de genes candidatos mediante siRNA o morfolinos. Sin embargo, la aplicabilidad de la cultura de órganos para el estudio de la señalización que regula la madre / la diferenciación de células progenitoras en comparación con la renovación en el riñón en desarrollo es limitado, como órganos cultivados contienen una difusión compacta de la matriz extracelular limitación de las macromoléculas y las partículas de virus. Para el estudio de la señalización celular eventos que influyen en la madre / nicho de células progenitoras en el riñón, hemos desarrollado un sistema de célula primaria que establece la zona nefrogénica o nicho de células progenitoras de la ex vivo de riñón en desarrollo en el aislamiento del inductor de la diferenciación del epitelio. Utilizando digestión enzimática limitada, las células de la zona nefrogénica puede ser liberado de forma selectiva el desarrollo de los riñones en E17.5. Después de la filtración, estas células pueden ser cultivadas en una monocapa irregular con las condiciones más favorables. Análisis de marcadores de genes demuestra que estos cultivos contienen una distribución de los tipos celulares característicos de la zona nefrogénica en vivo, y que mantienen la expresión adecuada del gen marcador durante el período de cultivo. Estas células son muy accesibles a pequeñas moléculas y tratamiento de proteínas recombinantes, y esto es importante también para la transducción viral, lo que facilita enormemente el estudio de los candidatos madre / progenitoras efectos sobre las células del regulador. Parámetros básicos de biología celular como la proliferación y muerte celular, así como cambios en la expresión de marcadores moleculares característicos de la nefrona células madre / progenitoras in vivo puede ser utilizado con éxito como los resultados experimentales. Trabajo en curso en nuestro laboratorio con esta nueva técnica de células primarias tiene como objetivo descubrir los mecanismos básicos que rigen la regulación de la auto-renovación versus diferenciación en nefrona células madre / progenitoras.

En este informe se describe un método para el aislamiento y la cultura de los nichos de células progenitoras de los riñones de embriones de ratón que pueden utilizarse para estudiar las vías de señalización que regulan células madre / progenitoras de los riñones en desarrollo. Estas células cultivadas son muy accesibles a pequeñas moléculas y tratamiento de proteínas recombinantes, y esto es importante también para la transducción viral, que permite la manipulación eficiente de las vías de candidato.

Aislamiento y cultivo de células de la zona nefrogénica del riñón de embriones de ratón

El desarrollo embrionario del riñón ha sido estudiado extensamente tanto como modelo de interacción epitelio-mesenquimal en la organogénesis como para obtener...

El objetivo general de este procedimiento es generar un cultivo primario de células de la zona nefrogénica a partir del riñón en desarrollo. Esto se logra primero mediante la disección de riñones de embriones de día 17,5. El siguiente paso del procedimiento consiste en eliminar las cápsulas renales.A continuación, se realiza una digestión enzimática limitada de los órganos para desprender las células del mesénquima de la cúpula y del estroma cortical de la zona nefrogénica. El paso final del procedimiento consiste en sembrar las células sobre fibronectina y cultivarlas en medio libre de suero. Finalmente, se pueden obtener resultados que demuestran una población purificada de células de la zona nefrogénica mediante tinción inmunológica de marcadores específicos.Aunque este método puede utilizarse para estudiar la señalización celular, también puede aplicarse para comprender los requisitos del sustrato para la expansión celular. Por ejemplo, para técnicas de injerto, el procedimiento será demostrado por Derek Adams, quien es técnico en mi laboratorio, y Aaron Brown, quien es investigador posdoctoral en mi laboratorio. Después de preparar las soluciones necesarias y tratar las placas

isolation-culture-cells-from-nephrogenic-zone-embryonic-mouse

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Investigación

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Biology

Biología

Este video describe el método para aislar glomérulos intactos de riñones de ratón. Los glomérulos encapsulados y descapsulados así obtenidos pueden utilizarse posteriormente para cultivar las excrecencias de las células epiteliales parietales del riñón murino.

Aislamiento de glomérulos: una técnica para obtener glomérulos intactos a partir de riñón murino

En este video, demostramos los pasos para aislar y purificar células epiteliales tubulares renales para una amplia gama de estudios de biología molecular y cultivos celulares.

Aislamiento de células renales murinas: una técnica para aislar y generar cultivo primario de células epiteliales tubulares renales

Este protocolo describe un método para aislar y cultivar rudimentos metanefricos de embriones de ratón.

Disección y cultivo de riñón embrionario de ratón

Aquí presentamos un método de aislamiento y de la cultura de grado clínico novela para riñón células estromales perivasculares (kPSCs) basado en perfusión de órgano entero con enzimas digestivas y células NG2 enriquecimiento. Con este método, es posible adquirir un número suficiente de células para terapia celular.

Un método de aislamiento de grado clínico novedoso para Stromal células de riñón humano perivasculares

Este protocolo proporciona un enfoque rentable para aislar y caracterizar ratón primario células tubulares renales que posteriormente pueden cultivarse el evaluar funciones biológicas renal ex vivo, incluyendo bioenergética mitocondrial.

Aislamiento, caracterización y alto rendimiento análisis de flujo extracelular de ratón células epiteliales tubulares renales primarias

El objetivo principal de este protocolo es eficaz aislar culturas viables glomérulos primarios con contaminantes mínimos para el uso en una variedad de aplicaciones posteriores. Los glomérulos aislados mantienen relaciones estructurales entre los tipos de componentes de la célula y pueden ser cultivadas ex vivo para un a corto plazo.

Un método eficiente de tamizado para aislar intactos glomérulos del riñón de rata adulta

Este artículo describe un método para cultivar y analizar los crecimientos de células epiteliales parietales glollares de glomérulos encapsulados aislados del riñón de ratón. Este método se puede utilizar para estudiar las vías implicadas en la proliferación y migración de células epiteliales parietales.

Crecimiento glomerular como ensayo ex vivo para analizar las rutas involucradas en la activación de células epiteliales parietales

Aquí, presentamos un protocolo para aislar núcleos de alta calidad de riñones de ratones congelados que mejoran la representación de los tipos de células renales medulares y evitan los artefactos de expresión génica de la disociación enzimática del tejido.

Aislamiento de núcleos de riñón de ratón adulto para secuenciación de ARN de un solo núcleo

Este estudio desarrolló un protocolo optimizado para el aislamiento de células mesangiales murinas (MCs) y su cultivo celular ex vivo . Estas células pueden pasar varias veces, congelarse, revivirse y cultivarse sin comprometer el crecimiento celular o la expresión de proteínas.

Optimización del aislamiento y la purificación de las células mesangiales glomerulares murinas

Se desarrolló un enfoque robusto y reproducible para establecer cultivos primarios 2D de células enriquecidas en zona glomerulosa y zona fasciculata para la corteza suprarrenal del ratón. Este sistema preserva características moleculares y funcionales clave de cada zona, permitiendo una investigación enfocada de las vías de señalización, la producción hormonal y el comportamiento de las células corticales suprarrenales ex vivo.

Establecimiento de cultivos primarios enriquecidos en zonas a partir de la corteza suprarrenal del ratón

Aprende a aislar y cultivar células de la zona nefrogénica de riñones de embriones de ratón E17.5 mediante digestión enzimática. Este método permite estudiar vías de señalización en progenitores renales para investigaciones en nefrología y medicina regenerativa.

Aislamiento y cultivo de células de la zona nefrogénica del riñón de embriones de ratón

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