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La patología de expansión, o ExPath, es una técnica de preparación de muestras para muestras biológicas, que permite a la microscopía óptica convencional obtener imágenes de estructuras a nanoescala expandiéndolas mediante un sistema de polímeros.
Primero, tome un portaobjetos de muestra de tejido inmunoteñido procesado y cúbralo con una solución de anclaje que contenga grupos reactivos de proteínas y polímeros. El grupo proteico reactivo del reactivo de anclaje se une a las aminas de las biomoléculas dentro de las células.
A continuación, agregue una solución gelificante adecuada sobre la muestra e incube para permitir su difusión dentro del tejido. El grupo polímero-reactivo del reactivo de anclaje se une a los monómeros libres dentro de la solución gelificante, lo que permite que las biomoléculas se anclen al polímero a medida que se polimeriza.
Una vez completada la polimerización de la muestra, cubra el portaobjetos con una solución de proteinasa. Las proteinasas digieren las proteínas citoesqueléticas para eliminar cualquier resistencia estructural, lo que permite que las células se expandan sin romperse. Tras la digestión enzimática, la muestra gelificada se desprende del portaobjetos y pasa a la suspensión.
Ahora, transfiera la muestra a un tampón de lavado adecuado en un recipiente compatible con microscopio. A continuación, reemplace el tampón con agua e incube. El polímero absorbe una enorme cantidad de agua en relación con su masa y se hincha.
A medida que el polímero se expande, las biomoléculas ancladas a la red de polímeros se separan mientras conservan su orientación espacial. Esto permite su fácil visualización bajo un microscopio óptico convencional.
Prepare la solución de anclaje de acuerdo con las instrucciones del manuscrito. Coloque los portaobjetos en una placa de Petri de 100 milímetros. Pipetear la solución de anclaje sobre el tejido e incubarlos durante al menos 3 horas a temperatura ambiente. Luego, prepare la solución gelificante de acuerdo con las instrucciones del manuscrito.
Retire el exceso de solución de anclaje de la sección de tejido y vuelva a colocar el portaobjetos en la placa de Petri. Agregue una solución gelificante fría fresca a la muestra e incube la mezcla durante 30 minutos a 4 grados centígrados. Para construir una cámara en el portaobjetos alrededor de la muestra, cree espaciadores cortando finamente piezas de vidrio de cobertura con un cuchillo de diamante. Asegure los espaciadores a ambos lados del pañuelo con agua y coloque con cuidado una tapa de vidrio sobre el portaobjetos, asegurándose de evitar que las burbujas de aire queden atrapadas sobre el pañuelo.
Luego, incube la muestra a 37 grados centígrados en un ambiente humidificado durante 2 horas. Retire la tapa de la cámara de gelificación deslizando suavemente una cuchilla de afeitar debajo del cubreobjetos y levantándola lentamente de la superficie del gel. Recorta el gel en blanco alrededor del tejido para minimizar el volumen, asegurándote de cortar el gel asimétricamente para seguir la orientación.
Diluya la proteinasa K 1:200 en el tampón de digestión, asegurándose de preparar suficiente solución para sumergir completamente el gel. Luego, incube la muestra con la solución en un recipiente cerrado durante 3 horas a 60 grados centígrados. Si la muestra no se desprende durante la digestión, use una cuchilla de afeitar para retirarla suavemente.
Utilice un pincel suave para transferir la muestra a 1X PBS en un recipiente compatible con el sistema de imágenes deseado y lo suficientemente grande como para acomodar el gel completamente expandido. Lave la muestra en PBS durante 10 minutos y, si lo desea, vuelva a teñirla con DAPI de 300 milimolares. Amplíe las muestras lavándolas con un volumen excesivo de agua destilada doble de 3 a 5 veces durante 10 minutos por lavado. Luego, realice imágenes de fluorescencia.