Ensayo de protección enzimática basado en lisostafina: un método in vitro para cuantificar la carga intracelular de Staphylococcus aureus mediante la muerte selectiva mediada por enzimas de bacterias extracelulares

0 vistas4:04 min • July 8th, 2025

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Comience con una monocapa de células epiteliales en un medio de cultivo adecuado. Estas células expresan integrinas, receptores de superficie que abarcan la membrana. El medio de cultivo contiene fibronectina secretada por células epiteliales, una glicoproteína.

Agregue una suspensión de Staphylococcus aureus, una bacteria patógena grampositiva, a la placa de cultivo. Estas bacterias contienen proteínas de unión a fibronectina, o FnBP, ancladas en su pared celular.

Incubar la placa para iniciar la infección bacteriana, en la que la fibronectina se une a la FnBP de las bacterias y a las integrinas de las células epiteliales del huésped. Esta interacción tripartita FnBP-fibronectina-integrina media la internalización bacteriana en el huésped.

Trate las células con lisostafina, una enzima endopeptidasa, e incube. La lisostafina ingresa selectivamente a las paredes celulares de las bacterias extracelulares. Escinde los puentes de pentaglicina en los peptidoglicanos, lisándolos mientras las bacterias intracelulares permanecen protegidas de la lisostafina.

Complemente el cultivo con una enzima proteolítica para desactivar la lisostafina restante, evitando que mate las bacterias intracelulares en los pasos.

Agregue un tampón de lisis al cultivo, que rompe las células epiteliales del huésped y libera bacterias intracelulares en el lisado celular. Posteriormente, coloque el lisado celular que contiene bacterias en una placa de cultivo adecuada e incube.

Las bacterias crecen y se multiplican para formar colonias bacterianas, que pueden analizarse para estimar el grado de internalización bacteriana en las células huésped.

Antes de la inoculación celular, observe cada pocillo de la placa de 24 pocillos mediante microscopía de bajo aumento para asegurarse de que las células estén sanas y crezcan como se esperaba. Luego, retire y deseche el medio de cultivo celular gastado de la placa de 24 pocillos y agregue 500 microlitros de la suspensión bacteriana a cada pocillo que contenga células 100% confluentes. Incube las células durante 2 horas a 36 grados centígrados y 5% de dióxido de carbono.

Para cuantificar las bacterias intracelulares con el ensayo de protección enzimática mejorado, prepare un tampón de lisis 4X, Triton X-100 al 2%, tripsina-EDTA y existencias de lisostafina y soluciones de trabajo como se menciona en el manuscrito del texto.

A continuación, prepare 6,25 mililitros de medio de infección completa suplementado con lisostafina, agregando 6 mililitros de medio de infección completa a 250 microlitros de la solución de trabajo de lisostafina. Luego, agregue 250 microlitros del medio de infección completo suplementado con lisostafina en cada pocillo y agite suavemente la placa girándola con la mano.

Para permitir que la lisostafina mate las bacterias extracelulares, incube las células durante 1 hora a 36 grados centígrados y 5% de dióxido de carbono. Luego, inactive la lisostafina agregando 10 microlitros de proteinasa K a 20 microgramos por mililitro en cada pocillo e incubando las células durante 2 minutos a temperatura ambiente.

A continuación, agregue 250 microlitros de tampón de lisis 4X para lisar las células por choque osmótico e incube las células durante 10 minutos a 36 grados centígrados. Después de la incubación, pipetee el lisado celular hacia arriba y hacia abajo varias veces, para asegurarse de que las células estén completamente lisadas y homogeneizadas.

Luego, use un plato en espiral automático para determinar la carga de Staphylococcus aureus de cada pocillo e incube las placas de agar durante 18 a 24 horas a 36 grados Celsius. Al día siguiente, cuente el número de colonias con un contador de colonias para calcular la carga intracelular de Staphylococcus aureus de cada pocillo.

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Última actualización: 1 agosto 2026