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Las células somáticas adultas pueden reprogramarse genéticamente para obtener células madre pluripotentes inducidas, iPSC, que exhiben estados proliferativos e indiferenciados similares a las células madre.
Para diferenciar las iPSC humanas en macrófagos, glóbulos blancos que fagocitan patógenos y desechos celulares, comience con una placa de cultivo con una superficie adhesiva no celular.
Agregue medios que contengan los factores de crecimiento, la proteína morfogenética ósea, el factor de células madre y el factor de crecimiento endotelial vascular. Siembra las iPSC e incuba.
La superficie no adhesiva evita la unión de iPSC y mantiene las células en suspensión, lo que facilita la agregación en cuerpos embrioides tridimensionales, EB. Los factores de crecimiento inician la diferenciación de iPSC dentro de los EB en células de linaje mesodérmico.
Transfiera los EB diferenciados a un tubo de centrífuga. Deja que se asienten por gravedad. Vuelva a suspender los EB en medios nuevos que contengan interleucina-3, IL3 y factor estimulante de colonias de macrófagos, CSF1. Coloque los EB en una placa de cultivo celular recubierta de gelatina.
La gelatina, una proteína de la matriz extracelular, facilita la unión de EB. IL3 estimula a los EB para que se diferencien en células madre progenitoras hematopoyéticas, dando lugar a células mieloides. CSF1 apoya la proliferación de células mieloides y su diferenciación en precursores de macrófagos que se liberan y permanecen en suspensión en el medio.
Recoge las celdas de suspensión y centrifuga. Vuelva a suspender las células en medios suplementados con CSF1.
Coloque las células en placas de cultivo sin recubrimiento.
CSF1 induce la diferenciación terminal de los precursores de macrófagos en macrófagos maduros adherentes y completamente funcionales.
Para comenzar el proceso de diferenciación el día cero, agregue 2,25 mililitros de medios de etapa 1 en dos pocillos de una placa de 6 pocillos de fijación ultrabaja. Luego, para un pocillo confluente del 180% de iPSC en una placa de 6 pocillos, reemplace el medio de mantenimiento con 1,5 mililitros de medios de etapa 1. Corta colonias con una nueva herramienta de paso de células. Con una pipeta, transfiera las colonias cortadas a los dos pocillos de la placa de 6 pocillos de fijación ultrabaja.
El día 2, ajuste las concentraciones de citoquinas agregando 0,5 mililitros de medios hESC-SFM a la placa de 6 pocillos que contiene los cuerpos embrioides del día dos.
El día 4, cubra cuatro pocillos de una placa de cultivo de tejidos de 6 pocillos con gelatina al 0,1%. Después de incubar durante al menos 10 minutos, retire la gelatina y agregue 2,5 mililitros de medios de la etapa 2.
Recoja los cuerpos embrioides formados de los dos pocillos de una placa de 6 pocillos y colóquelos en un tubo de centrífuga de 50 mililitros. Deje que se asienten en el fondo del tubo por gravedad. Luego, aspire cuidadosamente el medio del tubo y vuelva a suspender los cuerpos embrioides en 2 mililitros de medio de etapa 2.
Transfiera de 10 a 15 cuerpos embrioides a un pocillo recubierto de gelatina, que contenga 2,5 mililitros de medios de etapa 2, e incube a 37 grados Celsius con dióxido de carbono al 5%. Durante dos o tres semanas, cambie los medios cada tres o cuatro días.
El revestimiento de los EB es crucial. Tener menos de 10 o más de 15 EB, o tenerlos distribuidos de manera desigual, puede conducir a bajos rendimientos de macrófagos.
Después de dos o tres semanas, los cuerpos embrioides comienzan a liberar células hematopoyéticas no adherentes en suspensión. Con un colador de 40 micrómetros, recoja estas células en un tubo de 50 mililitros y luego reponga el medio. Centrifugar la suspensión de células hematopoyéticas a 200 x g durante tres minutos.
Vuelva a suspender las células hematopoyéticas en el medio de la etapa 3. Luego, coloque las celdas a una densidad de 0.2 x 106 por mililitro. Cambie el medio de la etapa 3 cada cinco días.
Después de nueve a 11 días, los macrófagos estarán completamente diferenciados y completamente funcionales.