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Las trampas extracelulares de macrófagos, MET, son estructuras en forma de red liberadas por los macrófagos para atrapar y eliminar patógenos.
Los MET comprenden fibras de cromatina extracelular asociadas con la metaloproteinasa-9 de la matriz, MMP-9 y la histona H3, H3Cit citrulinada, una proteína histona modificada en la que la arginina se convierte en citrulina.
Para caracterizar los MET en secciones de tejido pulmonar murino fijado en formol e incluido en parafina, en primer lugar, secar los portaobjetos. Sumergir en xileno para desparafinar las secciones. Use etanol acuoso para rehidratar las secciones.
Caliente las secciones para romper los enlaces cruzados de proteínas inducidos por formalina, exponiendo los antígenos diana para la posterior unión de anticuerpos.
Agregue una solución que contenga proteínas para bloquear los sitios de unión no específicos. Incubar con un cóctel de anticuerpos primarios anti-MMP-9, anti-H3Cit y anti-F4/80.
El anticuerpo anti-F4/80 se une a la glicoproteína F4/80 de la superficie celular de los macrófagos. Los anticuerpos anti-MMP-9 y anti-H3Cit se unen a los MMP-9 y H3Cit en los MET, respectivamente. Agregue diferentes anticuerpos secundarios conjugados con fluoróforos que se unan a sus respectivos anticuerpos primarios unidos a sus objetivos.
Monte las secciones con un medio de montaje que contenga DAPI. DAPI tiñe las fibras de cromatina de los MET. Usando un microscopio confocal, obtenga imágenes de las secciones para visualizar la fluorescencia de los marcadores MET.
Los MET se caracterizan por sus fibras de cromatina extracelular y la coexpresión de F4 / 80, MMP-9 y H3Cit.
Para pretratar las muestras FFPE con una solución de recuperación de antígenos, seque los portaobjetos en el horno a 60 grados centígrados durante 60 minutos. Luego, transfiera los portaobjetos a una solución de xileno durante 30 minutos, antes de transferir las muestras a etanol al 70% a temperatura ambiente durante 5 minutos.
Después de usar agua del grifo para enjuagar los portaobjetos, colóquelos en una envoltura de plástico resistente al calor y sométalos a una mayor recuperación de antígenos colocándolos en una olla a presión con Tris-EDTA pH 9.0 durante 10 minutos. Enfríe las muestras durante 20 minutos y transfiéralas al agua del grifo. Luego, colóquelos en una mecedora durante 5 minutos. Repita el lavado con agua del grifo y luego, lave las diapositivas una vez en PBS en el balancín.
Para bloquear las muestras, agregue suero de pollo al 10% en BSA / PBS al 5% e incube a temperatura ambiente durante 30 minutos. Luego, para definir trampas extracelulares de macrófagos, o MET en macrófagos, agregue una dilución de 1 a 100 de anticuerpos primarios en BSA / PBS al 1% e incube los portaobjetos a 4 grados Celsius durante 16 horas.
Use PBS para lavar las muestras dos veces en un balancín durante 5 minutos cada una. Agregue los anticuerpos secundarios fluorescentes correspondientes en BSA / PBS al 1% e incube los portaobjetos a temperatura ambiente durante 40 minutos. Después de los lavados PBS, use un medio de montaje que contenga DAPI para teñir la cromatina y montar las muestras.
Usando un cabezal de escaneo láser confocal conectado a un microscopio invertido, capture imágenes fluorescentes usando objetivos de aire de 20X 0.1 NA y 40X 1.0 NA de aceite. Capture imágenes de un solo plano de 512 por 512 píxeles haciendo clic en el botón de nivelación secuencial de líneas. Obtenga al menos 10 campos de visión por sección para el análisis y los datos de cada resultado.