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Macerar el bazo y los ganglios linfáticos del ratón en un colador celular. Enjuague el colador con un tampón adecuado para recolectar esplenocitos y linfocitos.
Incube las células con un cóctel de anticuerpos biotinilados y microperlas magnéticas de antibiotina que se unen a las células no CD8+.
Pasar la suspensión celular a través de una columna magnética. Debido a la fuerza magnética, las células no CD8+ unidas a perlas se unen a la pared de la columna mientras que las células T CD8+ eluyen.
Incubar las células eluidas con células presentadoras de antígenos artificiales, aAPC. Se trata de nanopartículas magnéticas funcionalizadas con proteína de fusión de inmunoglobulina del complejo principal de histocompatibilidad cargado de antígeno, MHC-Ig y anticuerpo anti-CD28.
Los MHC-Igs cargados de antígeno se unen a distintos receptores en las células T CD8+ específicas de antígeno. Los anticuerpos anti-CD28 interactúan con los receptores CD28 de las células T, iniciando la activación de las células T.
Coloque el tubo que contiene nanopartículas magnéticas y la mezcla de células en un soporte magnético. Las células T CD8+ unidas a aAPC son atraídas por el campo magnético, mientras que las células T CD8+ no específicas permanecen suspendidas. Retire el sobrenadante.
Retire el tubo del soporte magnético. Vuelva a suspender las células unidas a APC en medios que contienen factor de crecimiento de células T. Sembrarlos en un plato de varios pocillos.
Los factores de crecimiento inducen la expansión de células T CD8+ específicas de antígeno.
Para aislar las células T CD8 positivas específicas de antígeno, macerar el bazo y los ganglios linfáticos de ratones C57Black/6j de tipo salvaje a través de un colador celular estéril de 70 micrómetros con enjuagues frecuentes de PBS, y usar un kit de aislamiento de células T CD8 positivas sin contacto, de acuerdo con las instrucciones del fabricante, para eliminar las células T no CD8 positivas.
Después del recuento, recolecte las células T CD8 positivas aisladas por centrifugación y vuelva a suspender el sedimento en 100 microlitros de PBS, suplementado con albúmina sérica bovina al 0,5% y EDTA 2 milimolares.
Luego, incube las células con las células presentadoras de antígeno artificiales de nanopartículas de modo que haya 1 x 1011 MHC-Ig cargado de péptidos, por 1 x 106 células T CD8 positivas aisladas en un tubo estéril de poliestireno de fondo redondo de 5 mililitros durante 1 hora a 4 grados Celsius con mezcla continua.
Al final de la incubación, lave la suspensión celular de nanopartículas tres veces en el soporte magnético como se demuestra, volviendo a suspender las células presentadoras de antígenos artificiales y las células T CD8 positivas enriquecidas en 500 microlitros de medio fresco suplementado con factor de crecimiento de células T al 1%, después del último lavado.
Para obtener la máxima recuperación de las células, es fundamental dejar las partículas en las células en la columna magnética durante al menos 2 minutos y aspirar el tampón con cuidado sin interrumpir las partículas y las células sujetas al campo magnético.
Después del recuento, siembre 2,5 x 105 células T CD8 positivas enriquecidas y una mezcla de partículas magnéticas por 160 microlitros de medio suplementado más 1% de TCGF en una placa con fondo en U de 96 pocillos. El tercer día, alimente las células con 80 microlitros de medio suplementado con un factor de crecimiento de células T del 2% por pocillo y devuelva la placa a la incubadora de cultivos celulares durante cuatro días más.
El séptimo día, recolecte las células estimuladas en un tubo de fondo redondo de 5 mililitros para contarlas y recolecte las células por centrifugación. Vuelva a suspender el gránulo en 0,5 mililitros de PBS suplementado con azida sódica al 0,05% y suero bovino fetal al 2% para el recuento, y alícuota 5 x 10 4 a 5 x 105 células en nuevos tubos de fondo redondo de 5 mililitros para la tinción específica del antígeno.
Etiquete los tubos apropiados con MHC-Ig biotinilado y CD8a anti-ratón durante 1 hora a 4 grados Celsius, seguido de un lavado por centrífuga en PBS fresco, para eliminar cualquier exceso de inmunoglobulina biotinilada. Luego, tiña las muestras con un anticuerpo secundario conjugado con estreptavidina apropiado y una tinción de células muertas reparable viva / muerta apropiada durante 15 minutos a 4 grados Celsius, y lee las células en un citómetro de flujo para determinar la especificidad y el número de células T CD8 positivas específicas de antígeno, de acuerdo con los protocolos estándar.