Un ensayo para estudiar el papel de la vitronectina en la adherencia bacteriana a las células epiteliales del huésped

0 vistas3:53 min • July 8th, 2025

Tome una placa de pocillos múltiples que contenga monocapas de células epiteliales adheridas. Reemplace los medios con medios sin suero, evitando la interferencia de proteínas séricas. Después de la incubación, retire el medio. Lave las células con tampón. Agregue medios fríos sin suero que contengan vitronectina. Incubar a temperaturas más bajas.

El dominio RGD N-terminal de la vitronectina se une a los receptores de integrina de la superficie celular epitelial. Las temperaturas más bajas inhiben la internalización celular del complejo vitronectina-integrina.

Después de la saturación del receptor de integrina, retire el medio. Lavar con tampón para eliminar el exceso de vitronectina, lo que podría afectar la unión bacteriana de la integrina dependiente de vitronectina.

Agregue la suspensión de Haemophilus influenzae tipo f o Hif, un patógeno bacteriano gramnegativo. Incubar.

La proteína H en la superficie de Hif se une al extremo C de la vitronectina, lo que facilita la adherencia de Hif a la célula epitelial y la posterior internalización.

Retire el medio y lave con tampón para eliminar el Hif no unido. Use una enzima de desprendimiento celular para recolectar las células. Agregue medios que contengan suero para detener la reacción enzimática. Transfiera la suspensión celular a un tubo de vidrio que contenga perlas de vidrio. Vórtice para lisar las células, liberando bacterias internalizadas y adheridas a la superficie.

Diluir el lisado con medios sin suero y semillas en una placa de agar de chocolate. Incubar para que Hif forme colonias. Cuente las colonias.

Un mayor número de colonias indica una mayor adherencia de Hif a las células epiteliales en presencia de vitronectina.

Cultive células epiteliales A549 como se describe en el protocolo de texto. Después de un lavado y tripsinización de las células a 37 grados Celsius, diluya la suspensión celular a 5,000 células por mililitro usando un medio completo que contenga 5 microgramos por mililitro de gentamicina.

Antes de la infección bacteriana, reemplace el medio en los pocillos con medio F12 e incube durante la noche a 37 grados centígrados. Lave la monocapa celular tres veces con 1 mililitro de PBS a temperatura ambiente. Luego, coloque la placa sobre hielo y agregue 200 microlitros de medio F12 preenfriado, que contiene 10 microgramos por mililitro de vitronectina.

Después de incubar la placa a 4 grados centígrados durante 1 hora, deseche la solución pipeteando y lave la capa celular dos veces con 1 mililitro de PBS a temperatura ambiente. Agregue 100 microlitros de Hif wild-type recién cultivado en medio F12 a cada pocillo. Incube la placa durante 2 horas a 37 grados centígrados. Luego aspire el medio con una pipeta y lave las células epiteliales A549 tres veces con PBS a 50 microlitros por pocillo de solución de desprendimiento celular y siga con una incubación de 5 minutos a 37 grados Celsius.

A continuación, agregue 50 microlitros de medio completo F12 por pocillo para detener la reacción enzimática. Transfiera las células epiteliales de cada pocillo a un tubo de vidrio de 6 mililitros que contenga 4 perlas de vidrio. Lisar las células a temperatura ambiente mediante un vórtice durante 2 minutos.

Después de diluir el lisado celular 100 veces, coloque 10 microlitros de la muestra diluida en una placa de agar de chocolate. Cuente las colonias después de una incubación nocturna a 37 grados centígrados.

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Última actualización: 29 agosto 2026