Preparación y cuantificación de Mycobacterium bovis BCG lux Inóculo para la infección

0 vistas4:06 min • July 8th, 2025

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Comience con un cultivo descongelado de Mycobacterium bovis BCG lux, una cepa bioluminiscente modificada genéticamente de Mycobacterium bovis atenuada que expresa la enzima luciferasa reportera.

Inocular la suspensión en un matraz de cultivo que contenga el medio de crecimiento antibiótico suplementado con higromicina. Incubar. BCG lux alberga el gen resistente a la higromicina, lo que facilita su supervivencia y crecimiento.

Después de la incubación, prepare diluciones de cultivo adecuadas utilizando un tampón en tubos de luminómetro. Transfiera al luminómetro, cargado con una solución de sustrato de aldehído alifático de cadena larga. Durante la carrera, el aldehído se inyecta en la suspensión micobacteriana que ingresa a las células.

La luciferasa bacteriana cataliza la oxidación del mononucleótido de flavina reducida endógena y el aldehído, lo que da como resultado la emisión de luz azul verdosa. La intensidad de bioluminiscencia medida indica la actividad metabólica de BCG lux y se correlaciona con la medida de bacterias viables o unidades formadoras de colonias, UFC.

A continuación, centrifugar el cultivo de micobacterias restante. Vuelva a suspender el gránulo de micobacterias en un tampón que contenga un tensioactivo no iónico para evitar la formación de grumos micobacterianos.

Utilizando las mediciones de bioluminiscencia, diluya la suspensión para obtener la densidad celular deseada. Prepare diluciones seriadas de micobacterias y colóquelas en placas de agar nutritivo suplementadas con higromicina. Incubar, permitiendo que BCG lux forme colonias.

Calcule la UFC para confirmar la correlación con la intensidad de la bioluminiscencia. El inóculo de BCG lux preparado se puede utilizar para estudios de infección.

Para comenzar, descongele una reserva de glicerol congelada de 1,2 mililitros de Mycobacterium bovis BCG lux. La cepa de la vacuna de Montreal se transformó con el plásmido lanzadera PSMT-1 que transporta los genes luxAB. En un matraz Erlenmeyer de 250 mililitros etiquetado, inocular 15 mililitros de caldo Middlebrook 7H9 con la alícuota descongelada de 1,2 mililitros de BCG lux.

Coloque el matraz en un recipiente de bioseguridad sellado e incube a 37 grados Celsius en una incubadora agitadora orbital a 220 RPM durante 72 horas. Después de la incubación, prepare de una a 10 diluciones del cultivo en solución salina tamponada con fosfato en tubos de luminómetro. Vortex y cargue los tubos del luminómetro en el luminómetro.

Cargue el sustrato n-decil aldehído al 1% en etanol absoluto en la plataforma del inyector y mida la bioluminiscencia. Convierta la bioluminiscencia en unidades formadoras de colonias para verificar el crecimiento del cultivo BCG lux.

Transfiera el cultivo a un tubo de centrífuga y centrifugue a 2.175 veces g durante 10 minutos a temperatura ambiente para granular las células. Deseche el sobrenadante en un desinfectante apropiado con actividad micobactericida conocida. Lave el sedimento celular dos veces en 50 mililitros de PBS-T centrifugando a 2.175 veces g durante 10 minutos para evitar la formación de grumos bacterianos.

Después del lavado final, decantar el sobrenadante de desecho y volver a suspender el gránulo de células micobacterianas en el volumen requerido de PBS-T para diluir la suspensión micobacteriana a la densidad celular deseada. Luego, prepare diluciones seriadas de 10 veces del inóculo en placas de 24 pocillos usando PBS-T.

Coloque 10 microlitros de cada dilución en placas de agar Middlebrook 7H11 por duplicado para enumerar los recuentos de UFC de inóculo.

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Última actualización: 15 agosto 2026