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Durante la infección, los macrófagos alveolares liberan trampas extracelulares de macrófagos o MET para eliminar patógenos.
Los MET consisten en fibras de cromatina complejadas con peptidil arginina deiminasas, PAD, metaloproteinasas de matriz e histonas citrulinadas.
Para visualizar los MET en macrófagos del líquido de lavado broncoalveolar, primero, centrifugue el líquido.
Coloque las celdas resuspendidas en cubreobjetos dentro de pocillos de placas de pocillos múltiples.
Los macrófagos se adhieren a los cubreobjetos, mientras que otras células permanecen suspendidas y se descartan.
Fije los macrófagos, preservando la estructura celular. Permeabilizarlos para acceder a los objetivos celulares.
Agregue proteínas bloqueadoras, evitando la unión de anticuerpos inespecíficos.
Complementar con un cóctel de anticuerpos primarios que se une a las histonas citrulinadas diana, las PAD y las metaloproteinasas de la matriz, respectivamente.
Agregue diferentes anticuerpos secundarios marcados con fluoróforos que se unan a los anticuerpos primarios unidos a proteínas MET diana.
Monte las celdas con un medio de montaje que contenga DAPI. DAPI, un tinte fluorescente, tiñe las fibras de cromatina.
Usando un microscopio confocal, visualice los MET caracterizados por fibras de cromatina extracelular fluorescentes con histonas citrulinadas, PAD y metaloproteinasas.
Después de obtener macrófagos pulmonares de humanos y ratones mediante lavado broncoalveolar, o BAL, de acuerdo con el protocolo de texto, use azul de tripano y un hemocitómetro para realizar un recuento de células viables en la solución de BAL. Pipetee de 1 a 4 x 105 macrófagos en 500 microlitros de medio de cultivo en cubreobjetos en los pocillos de placas de 24 pocillos. Luego, incube las células a 37 grados centígrados durante la noche para que las células se adhieran.
Retire el medio de cultivo y use PBS para lavar las células una vez. Luego, agregue paraformaldehído / periodato / lisina al 2% o fijador PLP e incube las muestras durante 10 minutos. Después de usar PBS para lavar brevemente las células, agregue Tween-20 al 0,2% en PBS e incube las células durante 20 minutos.
A continuación, para bloquear las células, agregue suero de pollo al 10% en BSA al 5% diluido en PBS e incube las muestras a temperatura ambiente durante 30 minutos. Luego, reemplace la solución en bloque con una concentración de 1 a 100 de anticuerpos primarios y de control de isótopos, e incube las células a temperatura ambiente durante una hora. Después de la incubación, use PBS para lavar las células antes de agregar los anticuerpos secundarios correspondientes. Luego, incube las muestras durante 40 minutos a temperatura ambiente.
Después de lavar las celdas en PBS, monte las muestras con un medio de montaje basado en DAPI. Luego, visualice las muestras con un microscopio confocal.