Estimulación in vitro y visualización de trampas extracelulares de macrófagos

0 vistas4:31 min • July 8th, 2025

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Comience con un cultivo de macrófagos adherentes.

Agregue citoquinas proinflamatorias.

La citocina se une a los receptores de la superficie de los macrófagos, iniciando una serie de eventos inflamatorios.

Primero, la señalización de citoquinas desencadena la producción de péptidos antimicrobianos.

Simultáneamente, la cromatina dentro del núcleo del macrófago sufre descondensación.

Este proceso, junto con los cambios en la composición de la membrana, interrumpe la membrana nuclear, liberando cromatina descondensada en el citoplasma.

En el citoplasma, el péptido antimicrobiano interactúa con la cromatina liberada.

La permeabilización de la membrana celular mediada por la señalización de citocinas hace que la cromatina descondensada se libere en el espacio extracelular, formando una trampa extracelular de macrófagos o MET.

Estas estructuras en forma de red consisten en ADN, histonas, moléculas antimicrobianas y enzimas.

Agregue SYTOX green, un colorante de ácido nucleico fluorescente que se une selectivamente al ADN expuesto en las trampas extracelulares.

Bajo un microscopio de fluorescencia, el MET aparece como rayas verdes de ADN extracelular liberadas por el macrófago estimulado.

En condiciones estériles, prepare los medios de cultivo que contienen diferentes estimuladores de MET para liberar el medio RPMI 1640 completo. Para experimentos con estimulación con ácido hipocloroso, prepare 200 micromolares de ácido hipocloroso en un tubo Falcon con HBSS que se haya precalentado a 37 grados Celsius.

Después del tratamiento de polarización, aspire el medio celular de cada pocillo y lave cuidadosamente las células tres veces con alícuotas de 1 mililitro de PBS estéril para la estimulación de PMA, TNF-alfa e interleucina-8, o HBSS para la estimulación del ácido hipocloroso.

Después de retirar el PBS en el paso final de lavado, agregue 1 mililitro de medio completo que contenga PMA, TNF-alfa o interleucina-8. Incube las células a 37 grados Celsius y 5% de dióxido de carbono en una incubadora celular durante seis horas para la estimulación con TNF-alfa y 24 horas para la estimulación con PMA o interleucina-8.

Para experimentos con ácido hipocloroso, después de eliminar el HBSS en el paso final de lavado, agregue 1 mililitro de ácido hipocloroso recién preparado. Luego, incube las células durante 15 minutos a 37 grados Celsius en presencia de un 5% de dióxido de carbono en una incubadora de células. Después de eso, aspire cuidadosamente el sobrenadante celular y lave las células tres veces con alícuotas de 1 mililitro de HBSS.

Después de retirar el HBSS del paso de lavado final, agregue 1 mililitro de medios de cultivo RPMI 1640 completos. Luego, incube las células durante 24 horas a 37 grados Celsius en presencia de un 5% de dióxido de carbono en una incubadora de células.

Preparar el colorante verde SYTOX en HBSS a una concentración de 40 micromolares. Agregue directamente 25 microlitros del tinte a cada pocillo que contenga HMDM. Incube las células a temperatura ambiente durante 5 minutos en la oscuridad. Luego, coloque el HMDM en pocillos de cultivo de tejidos en la platina del microscopio de un microscopio fluorescente invertido para obtener imágenes.

Encienda una fuente de luz fluorescente de amplio espectro, una fuente de luz de campo brillante y un microscopio invertido instalado con una cámara digital a color de alta resolución. Gire la rueda de filtros a la posición número 2 para fluorescencia verde con excitación a 504 nanómetros y emisión a 523 nanómetros.

Usando el objetivo 5X, enfoque la imagen con el enfoque grueso, luego las perillas de enfoque fino en el microscopio hasta que la imagen aparezca nítida, clara y enfocada. Cambie el microscopio al modo de cámara.

Inicie el software asociado. Haga clic en el botón Reproducir para obtener una vista previa de la imagen y ajuste la perilla de enfoque fino en el microscopio hasta que la imagen aparezca nítida, clara y enfocada en la ventana de vista previa del software. Haga clic en el botón Capturar.

Dentro del software, haga clic en Archivo, Guardar como el tipo de archivo de imagen requerido. En el microscopio, gire la rueda de filtros a la posición número 5 para obtener imágenes de campo claro y repita los procedimientos de captura para obtener la imagen de campo claro correspondiente.

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Última actualización: 1 agosto 2026