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Tome esplenocitos agotados en glóbulos rojos en un tampón que contenga un tinte fluorescente sensible al calcio permeable a las células, Indo-1 AM.
Las esterasas intracelulares escinden Indo-1 AM en Indo-1 impermeable a la membrana, que se une a los iones de calcio, cambiando la señal de fluorescencia de Indo-1 de azul a violeta.
Introducir anticuerpos específicos de antígeno conjugados con fluoróforos que se unan específicamente a los respectivos antígenos en las células.
Usando citometría de flujo, identifique las células B marcadas con fluoróforo y mida su relación de fluorescencia violeta-azul Indo-1.
Ahora, trate las células con liposomas antigénicos que comprenden fragmentos de IgM Fab conjugados con bicapas liposomales.
Los receptores de células B se unen a los antígenos acoplados a liposomas, activando las tirosina quinasas citoplasmáticas asociadas y desencadenando la activación de la fosfolipasa-C gamma-2.
La fosfolipasa-C activada escinde el fosfolípido de membrana, fosfatidilinositol 4,5-bisfosfato, generando segundos mensajeros, incluido el inositol 1,4,5-trifosfato o IP3.
IP3 se une a los canales de calcio activados por IP3 en el retículo endoplásmico, liberando iones de calcio en el citoplasma.
Estos iones de calcio se unen a las moléculas de Indo-1 no unidas, aumentando la fluorescencia violeta.
Una mayor proporción de fluorescencia violeta-azul Indo-1 en las células B marcadas confirma su activación exitosa por liposomas antigénicos.
Para monitorear la respuesta de las células B a la activación de liposomas antigénicos, vuelva a suspender 1,5 x 107 esplenocitos en tampón de carga de flujo de calcio y agregue 1,5 micromolares de Indo-1 a las células, invirtiendo la solución en el tubo varias veces para mezclar. Después de una incubación en baño de agua de 30 minutos a 37 grados Celsius protegida de la luz, agregue 5 veces el volumen de tampón de carga de flujo de calcio y centrifugue las células marcadas con Indo-1.
Para la activación de células B, tiñe las células con anticuerpos anti-CD5 y anti-B220 en 0,5 mililitros de tampón de carga a 4 grados Celsius durante 20 minutos protegidas de la luz. Al final de la incubación, lave las células en un tampón de carga de flujo de calcio fresco y vuelva a suspender el sedimento a 1 a 2 x 107 células por mililitro de tampón de flujo de calcio fresco para almacenarlas en hielo protegido de la luz, hasta el análisis.
Luego, agregue 0,5 mililitros de celdas a un tubo de poliestireno de fondo redondo de 5 mililitros con tapa y caliente las celdas a 37 grados Celsius en un baño de agua. Después de 3 a 5 minutos, transfiera el tubo a una cámara con camisa de agua a 37 grados Celsius conectada a un baño de agua de recirculación y pase el tubo en la camisa de agua en el citómetro de flujo.
Después de recopilar de 5,000 a 10,000 eventos por segundo, permita que las células se estabilicen durante 15 a 30 segundos y reinicie la adquisición de datos, recopilando los datos durante al menos 10 segundos para establecer una lectura de fondo. En la marca de 10 segundos, retire rápidamente el tubo del citómetro de flujo y agregue la concentración experimental adecuada de liposomas antigénicos. Luego, pulse el vórtice de las células y lea el tubo del citómetro durante 3 a 5 minutos adicionales.