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Tome una placa de microscopio con tampón que contiene células endoteliales humanas transfectadas y tratadas con superantígenos, con los superantígenos complejados con moléculas MHC de clase II.
Estas células presentadoras de antígenos artificiales coexpresan diferentes proteínas fluorescentes en sus membranas y citoplasma.
A continuación, introduzca los linfocitos T, que interactúan con los superantígenos en las células endoteliales a través de los receptores de células T, formando una unión estable célula-célula, una sinapsis inmunológica.
Esto desencadena el reordenamiento del citoesqueleto de los linfocitos T, iniciando la propagación celular y la extensión de la actina, lo que da como resultado la formación de protuberancias similares a los invadosomas, o ILP, enriquecidas con actina, adhesión y moléculas de señalización.
Las moléculas de adhesión se unen a receptores específicos en las células endoteliales, fortaleciendo la interacción.
La formación de sinapsis activa las vías de señalización de los linfocitos T, elevando los niveles de calcio intracelular y estabilizando las ILP.
Los ILP inducen la flexión localizada de la membrana en las células endoteliales, formando anillos superficiales transitorios.
Bajo un microscopio de fluorescencia, analice la topología de la sinapsis que comprende zonas circulares oscuras de desplazamiento de citoplasma fluorescente en la célula endotelial, colocalizadas con diferentes anillos de membrana fluorescentes alrededor de ILP, confirmando la formación de sinapsis inmunológicas.
Para obtener imágenes en vivo de las células, encienda el sistema de microscopio y abra el software de captura de imágenes adecuado. Establezca los parámetros apropiados para la adquisición automatizada de imágenes de lapso de tiempo multicanal, así como el intervalo de adquisición de 10 a 30 segundos y una duración total de aproximadamente 20 a 60 minutos.
A continuación, agregue aceite fresco al objetivo. Monte un plato de microscopio que contenga 0,5 mililitros de tampón A en el adaptador de platina calefactora y encienda inmediatamente el adaptador, previamente ajustado a 37 grados Celsius. Después de dos o tres minutos de equilibrio, use una pipeta de 20 microlitros para agregar los linfocitos cargados con Fura-2 en reposo en la cámara de placa del microscopio montada y encienda las imágenes de campo claro.
Seleccione la ruta de luz hacia los oculares y use la perilla de enfoque grueso para poner el objetivo en contacto con la parte inferior de la placa del microscopio. Luego, use el ocular y la perilla de enfoque fino para ubicar las células T asentadas en la parte inferior del plato, y use los controles de la etapa XY para seleccionar un campo que contenga al menos 10 celdas.
Cuando se hayan localizado las células adecuadas, cambie del campo claro a la fuente de luz fluorescente, y de la imagen del ocular a la cámara CCD. Optimice los parámetros de adquisición y, a continuación, adquiera imágenes Fura2-340 y Fura2-380 en reposo.
Uno de los pasos clave para generar resultados exitosos es la optimización cuidadosa de los parámetros de adquisición de fluorescencia, asegurando que se recopile suficiente señal y, en el caso de Fura-2, que la relación de referencia 340/380 sea cercana a 1.
Cuando se hayan establecido los tiempos de exposición de Fura-2, reemplace la placa de células T con la placa de microscopio de células endoteliales. Con una pipeta de transferencia desechable, retire rápidamente el medio y enjuague las celdas una vez con 1 mililitro de tampón A precalentado, luego, reemplace el lavado con 0,5 mililitros de tampón A nuevo.
Usando el objetivo, identifique los campos en los que las células endoteliales brillantemente fluorescentes parecen sanas, luego, ajuste los parámetros de adquisición para membrana-YFP y DsRed como se acaba de demostrar para Fura-2, teniendo cuidado de que la intensidad media de la señal fluorescente en cada canal se encuentre entre el 25% y el 75% del rango dinámico del detector.
Antes de realizar el experimento de imágenes de células vivas, capture varios intervalos de imágenes de las células endoteliales solas para establecer una línea de base con el software automatizado. Luego, insertando la punta de una pipeta de pequeño volumen en el medio cerca del centro del objetivo, dispense lentamente 5 microlitros de linfocitos concentrados cargados con Fura-2 al centro del campo de imágenes de la placa del microscopio.
A medida que los linfocitos se asientan, realice ajustes finos en el enfoque para asegurarse de que las interfaces de células T / células endoteliales se mantengan en el plano focal. Con los objetivos 40x y 63x, lo óptimo es de 10 a 20 celdas por campo.