Monitorización de la llegada de proteínas de superficie marcadas con GFP a la red Trans-Golgi utilizando nanocuerpos funcionalizados

0 vistas5:00 min • July 8th, 2025

Comience con células cancerosas privadas de sulfato que expresan una proteína de superficie marcada con GFP.

Agregue sulfato radiomarcado y nanocuerpos anti-GFP modificados, un anticuerpo de cadena única que lleva un motivo de sulfatación de tirosina, e incube.

Las células privadas de sulfato internalizan los sulfatos radiomarcados, incorporándolos a los componentes celulares.

El nanocuerpo anti-GFP se une a la proteína de superficie marcada con GFP y se endocita en una vesícula. Esta vesícula transporta el complejo de proteínas de la superficie del nanocuerpo a lo largo de vías intracelulares específicas, incluida la red trans-Golgi o TGN.

Dentro del TGN, la sulfotransferasa en presencia de un sustrato transfiere un sulfato radiactivo a residuos específicos de tirosina en el nanocuerpo, marcándolo así con radiomarcado.

Lavar las células. A continuación, lisar las células.

Centrifugar el lisado para eliminar los restos celulares grandes. Aísle los nanocuerpos utilizando un método de purificación basado en perlas de níquel.

Cargue la fracción aislada en un gel SDS-PAGE para separar el nanocuerpo radiomarcado en bandas distintas.

Someter el gel a autorradiografía.

La autorradiografía resultante revela regiones oscuras, lo que indica la presencia del nanocuerpo radiomarcado.

En una campana de cultivo celular, siembre entre 400.000 y 500.000 células HeLa que expresan de manera estable una proteína reportera etiquetada con GFP en placas de 35 mm o grupos de 6 pocillos, con un medio completo que contenga antibióticos. Incube las células a 37 grados centígrados con 7,5% de dióxido de carbono durante la noche. Al día siguiente, retire el medio completo y lave las células dos veces con 1X PBS a temperatura ambiente. Matar de hambre a las células con medio sin sulfato durante 1 hora a 37 grados centígrados con 7,5% de dióxido de carbono.

Mientras tanto, en una campana ventilada o banco designado para trabajos de radiactividad, prepare un medio de etiquetado de sulfato que contenga 0,5 milicurios por mililitro de sulfato de sodio S35 en un medio sin sulfato. A continuación, mezcle VHH sulf de doble nivel en 1X PBS con medio de etiquetado de sulfato hasta una concentración final de 2 microgramos por mililitro. Cuando se complete la incubación, reemplace el medio sin sulfato con 0,7 mililitros de la mezcla de medio preparada, que contiene sulfato de sodio S35 y VHH sulf de doble nivel. Incubar las células durante 1 hora a 37 grados centígrados en una incubadora de dióxido de carbono al 7,5%, diseñada para trabajar con radiactividad.

Después de esto, retire el medio de etiquetado y lave las celdas dos o tres veces con PBS 1X helado en una placa de enfriamiento o en hielo. Agregue 1 mililitro de tampón de lisis, complementado con dos milimolares de PMSF y 1X cóctel de inhibidores de la proteasa. Incube las células durante 10 a 15 minutos en una plataforma oscilante a 4 grados centígrados. Luego, raspe y transfiera el lisado a un nuevo tubo de 1,5 mililitros, agite el lisado y colóquelo en un rotador de extremo a extremo a 4 grados Celsius durante 10 a 15 minutos. Centrifugar a 10.000 g y a 4 grados centígrados durante 10 minutos para preparar un lisado postnuclear. Transfiera el lisado postnuclear a un tubo de 1,5 mililitros que contenga perlas de níquel preparadas e incube en un agitador de extremo a extremo a 4 grados Celsius durante 1 hora para aislar los nanocuerpos.

Después de esto, lave las perlas tres veces con 1X PBS o tampón de lisis granulando suavemente a 1000 g durante 1 minuto. Retire con cuidado todo el tampón de lavado de las perlas y agregue 50 microlitros de tampón de muestra 2X. Hervir a 95 grados centígrados durante 5 minutos. Luego, cargue las perlas hervidas en un gel midi SDS-PAGE al 12,5% y ejecute de acuerdo con el protocolo estándar PAGE hasta que el colorante de referencia haya llegado al final del gel separador. Fije el gel separador en aproximadamente 30 mililitros de tampón de fijación durante 1 hora a temperatura ambiente. Lave el gel tres veces con aproximadamente 50 mililitros de agua desionizada y luego seque el gel, como se describe en el protocolo de texto. Cuando se complete el secado, use una imagen de pantalla de fósforo para autorradiografiar el gel.

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Última actualización: 29 agosto 2026