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Comience colocando un portaobjetos de vidrio con una monocapa endotelial estimulada por citoquinas adherente en una cámara de flujo.
Estas células endoteliales expresan moléculas de adhesión superficial, como selectinas, y señales migratorias unidas al endotelio, como las quimiocinas.
Introducir leucocitos marcados con fluorescencia en la cámara de flujo.
A medida que los leucocitos fluyen sobre la monocapa endotelial, se involucran con las células endoteliales activadas.
Las selectinas en las células endoteliales se unen a sus ligandos correspondientes en los leucocitos.
Las interacciones selectina-ligando son débiles y transitorias, lo que permite que los leucocitos rueden a lo largo de la monocapa endotelial bajo la fuerza de un medio que fluye.
El rodillo permite que los leucocitos interactúen con las quimiocinas, activando las integrinas y promoviendo la detención firme de los leucocitos.
Posteriormente, los leucocitos se propagan a través de la monocapa endotelial, lo que significa su potencial de transmigración, un paso crucial en la respuesta inmune.
Este ensayo ayuda a estudiar el mecanismo de adhesión, desadhesión y transmigración de los leucocitos mientras los perfunde sobre las células endoteliales.
Utilice un micromolar de tinción de ácido nucleico fluorescente verde permeable para etiquetar fluorescentemente los leucocitos. Después del etiquetado, incube los leucocitos durante 30 minutos a 37 grados centígrados. Luego, centrifuga las células a 300 veces g durante 5 minutos para granular las células.
Vuelva a suspender en solución salina tamponada con fosfato para lavar las células. Luego, centrifugar las células a 300 veces g durante 5 minutos. Según el caudal, suspenda 5 mililitros de las células en el tampón de ensayo. Luego, calienta un baño de agua para mantener los 37 grados centígrados.
A continuación, reserve una jeringa de perfusión de 50 mililitros e instálela en el soporte de la jeringa. Luego, configure la bomba en modo de extracción, con el volumen de la bomba a 0 mililitros y el diámetro a 26,70 milímetros. A continuación, conecte un acoplador Luer-lock a la jeringa y conecte el tubo con el conector Luer de codo al acoplador Luer-lock. Luego, conecte el extremo libre del tubo a la cámara de flujo. Para adherir los leucocitos a las plaquetas inmovilizadas, conecte el portaobjetos con la jeringa.
Para perfundir los leucocitos y luego adherirlos a un lecho de monocapa vascular o plaquetaria, conecte un segundo tubo a un tubo cónico de 50 mililitros que contenga el tampón de ensayo y luego llene el tubo con una pipeta de 1 mililitro. Una vez que el tubo esté lleno, apriételo y conéctelo a la cámara de flujo. Antes de perfundir los leucocitos, agregue 3 milimolares de cloruro de calcio y 2 milimolares de cloruro de magnesio a la suspensión celular. Luego, incube las células a 37 grados centígrados durante 5 minutos.
Para eliminar el posible aire atascado en la cámara y en el tubo, perfunda con tampón de ensayo antes de perfundir las células. A continuación, apriete los tubos para cerrar el extremo y cambie el tubo del tampón de ensayo a la suspensión celular, evitando así que queden burbujas de aire atrapadas en su interior.
Para que lleguen las primeras celdas, perfundir las celdas a la velocidad de flujo y al esfuerzo cortante adecuados. Siga perfundiendo las celdas, manteniendo el caudal y el esfuerzo cortante durante dos minutos. Luego, capture seis imágenes de las células rodantes y disuasorias entre 2 y 6 minutos usando un microscopio de fluorescencia con un aumento de 10 veces conectado a una cámara digital.