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Tomemos bicapas lipídicas soportadas por perlas, o BSLB, perlas de sílice recubiertas con bicapas lipídicas conjugadas con complejos péptido-MHC antigénicos, moléculas de adhesión y coestimulación, que actúan como células sintéticas presentadoras de antígenos.
Incubar con células T.
Los TCR se unen a péptidos antigénicos en los BSLB, que, junto con las señales coestimuladoras, forman una sinapsis inmune, activando las células T.
Esta unión desencadena cascadas de señalización intracelular, induciendo el reordenamiento de actina y formando microgrupos en la sinapsis que contienen moléculas de adhesión y señalización.
Las células T liberan vesículas transsinápticas enriquecidas en TCR, moléculas coestimuladoras y contenido de gránulos líticos en la sinapsis, uniéndose a BSLB.
Enfríe gradualmente el cocultivo para separar los BSLB de las células T.
Centrifugar y desechar el sobrenadante. Use un tampón que contenga proteínas para bloquear los sitios de unión libres en las superficies.
Centrifugar y tratar BSLB y células T con anticuerpos conjugados con fluoróforos que se unen a moléculas específicas de señalización y coestimulación.
Mediante citometría de flujo, analice las señales de fluorescencia de BSLB y células T para cuantificar la salida sináptica.
Vuelva a suspender 500,000 BSLB por pocillo en 200 microlitros de tampón HBS / HSA. Transfiera 100 microlitros de BSLB por pocillo a una nueva placa de 96 pocillos con fondo en U para hacer un duplicado, de modo que la cantidad final de BSLB por pocillo sea de 250,000. Gire los BSLB a 300 veces g durante dos minutos a temperatura ambiente. Deseche el sobrenadante y luego, vuelva a suspender los BSLB usando 100 microlitros de suspensión de células T. Mezclar suavemente para evitar la formación de burbujas. Incubar los cocultivos durante 90 minutos a 37 grados centígrados.
Proteja las células de la luz y enfríe los cocultivos incubándolos primero a temperatura ambiente durante un mínimo de 15 minutos. Centrifugar los cocultivos a temperatura ambiente durante 5 minutos a 500 g. Desechar el sobrenadante y volver a suspender los cocultivos en BSA-PBS al 2% sin iones de calcio y magnesio a temperatura ambiente para su bloqueo. Coloque las celdas en hielo durante 45 minutos y protéjalas de la luz.
Prepare la mezcla maestra de anticuerpos utilizando BSA y PBS al 2% filtrados al 2 % con filtro de 0,22 micrómetros como tampón de tinción. Esta mezcla maestra proporcionará un bloqueo adicional. Gire los cocultivos a 500 veces g durante 5 minutos y 4 grados centígrados. Deseche los sobrenadantes y, a continuación, utilice una pipeta multicanal para volver a suspender las células en la mezcla maestra permanente que contiene concentraciones de anticuerpos optimizadas.
Incluya células marcadas con isotipo y BSLB, BSLB fluorescentes y no fluorescentes, y células y BSLB teñidos solos. Mezclar suavemente pipeteando hacia arriba y hacia abajo la mitad del volumen. Incubar durante 30 minutos en hielo y protegerlos de la luz. Lave las celdas y los BSLB dos veces con BSA-PBS al 2% helado Gírelos a 500 veces g durante 5 minutos a 4 grados centígrados. Después de la centrifugación, verifique los cocultivos sedimentados en el fondo de los pocillos. Luego, vuelva a suspender los cocultivos lavados en 100 microlitros de PBS y adquiera inmediatamente.