$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Tome una placa de microtitulación y agregue diluciones en serie de nuevos péptidos antimicrobianos o AMP, los compuestos de prueba.
Designe un subconjunto de pozos como controles de crecimiento y agregue agua estéril sin los AMP.
Agregue un hongo patógeno suspendido en medios de crecimiento en pocillos seleccionados.
Agregue solo el medio, desprovisto del hongo, en un subconjunto de pocillos designados como controles en blanco.
Selle la placa e incube en condiciones húmedas propicias para el crecimiento de hongos.
Después de la incubación, observe los pocillos bajo un microscopio.
Los controles de crecimiento parecen turbios debido al crecimiento de hongos en ausencia de AMP. La turbidez en todas las diluciones de un AMP indica su ineficacia contra el hongo.
Los controles en blanco, desprovistos de crecimiento de hongos, parecen claros. Compare los pocillos de prueba con los controles en blanco para confirmar la ausencia de crecimiento, lo que indica la actividad antifúngica de los AMP.
La concentración más baja de un AMP que inhibe el crecimiento de hongos se denomina concentración inhibitoria mínima o MIC.
El ensayo antifúngico se realiza por triplicado en microplacas de poliestireno de 96 pocillos utilizando una dilución seriada de 2 veces de cada péptido y antifúngico de control y un volumen final de 50 microlitros por pocillo.
El paso más crucial en el protocolo son las diluciones en serie. Así que tenga mucho cuidado durante los próximos pasos para evitar cualquier error que comprometa todo su análisis.
Con una pipeta, agregue 100 microlitros del péptido antifúngico en la concentración de doble fuerza de la concentración final deseada más alta en las columnas uno a tres en la fila A. Con una pipeta multicanal, agregue 50 microlitros de agua estéril a los otros pocillos en las filas B a H. Retire 50 microlitros de los pocillos con la concentración más alta, Transferir a los pocillos correspondientes de la siguiente concentración y homogeneizar pipeteando hacia arriba y hacia abajo varias veces.
Repita la dilución en serie hasta alcanzar los pocillos con la concentración más baja y deseche 50 microlitros de estos pocillos. Deje las columnas 11 y 12 de las filas A, B y C con solo agua para los controles en blanco o los controles de crecimiento negativo. Agregue 50 microlitros del inóculo de doble concentración ajustado en RPMI1640 medio a cada pocillo de las columnas 1 a 3 más la columna 11.
La concentración final de C. albicans será de 2.000 células por mililitro, y la concentración final de C. neoformans será de 10.000 células por mililitro. Prepare controles de crecimiento negativos mezclando 50 microlitros de agua y 50 microlitros de inóculo ajustado sin el antifúngico. Prepare controles en blanco combinando 50 microlitros de agua y 50 microlitros de medio sin celdas.
Cargue los controles en los pocillos apropiados. Observe todos los pocillos con un microscopio óptico invertido y luego incube las placas a 37 grados agitando a 200 RPM. Después del período de incubación, observe todos los pozos nuevamente para verificar cambios en la morfología, así como para verificar si hay signos de contaminación.