Inmunocaptura y citometría de flujo de vesículas extracelulares para la caracterización antigénica

0 vistas4:05 min • July 8th, 2025

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Comience con un tubo que lleve partículas unidas a la membrana derivadas de células denominadas vesículas extracelulares, o EV, que exhiben composiciones antigénicas únicas.

Introducir nanopartículas magnéticas, MNP, que contengan anticuerpos de captura conjugados con fragmentos de Fab marcados con fluorescencia.

Incubar para facilitar la interacción entre los MNPs con antígenos específicos de los EVs, formando complejos MNP-EV.

Agregue inmunoglobulina-G para bloquear los sitios de unión de Fc, luego introduzca anticuerpos de detección marcados con fluorescencia para teñir otros antígenos en las partículas capturadas.

Cargue esta mezcla en una columna magnética prelavada colocada en un separador magnético.

El campo magnético retiene las partículas capturadas por MNP dentro de la columna. Intercambie el tampón para eliminar los anticuerpos no unidos.

Recupere la columna del separador magnético, eluya las partículas capturadas por MNP con un tampón y fíjelas para preservar su integridad estructural.

Analice las partículas inmunocapturadas mediante citometría de flujo; las distintas señales de fluorescencia de los antígenos teñidos se correlacionan con características antigénicas únicas de los EV.

Comience combinando 60 microlitros de MNP por condición y 5 microlitros de fragmentos de Fab marcados específicos para el isotipo del anticuerpo de captura de interés en un tubo de microcentrífuga de 1,5 mililitros. Incube la solución a temperatura ambiente durante 30 minutos con mezcla continua. Luego, humedezca previamente un concentrador de 100k con 300 microlitros de PBS y gire el concentrador en una microcentrífuga.

Al final de la centrifugación, purifique los complejos marcados en una columna de 100k, seguido de otra centrifugación, resuspendiendo el pellet en 200 microlitros de PBS fresco. Para capturar las partículas de interés, incube los MNP marcados con anticuerpos con la partícula de interés para el período de incubación y la temperatura adecuados.

A continuación, bloquee cualquier unión de FC no específica con la especie apropiada de anticuerpo IgG, agite suavemente e incube la solución de partículas durante 3 a 5 minutos a temperatura ambiente. Luego, agregue la concentración recomendada por el fabricante de cada anticuerpo de detección a las partículas o anticuerpos de control de isotipo a la muestra de control de isotipo durante 20 minutos adicionales de incubación a temperatura ambiente.

Para separar las partículas capturadas por MNP del anticuerpo no unido, primero coloque una columna de separación magnética en un imán separador y humedezca previamente la columna con 500 microlitros de tampón de lavado. Deje que el tampón de lavado fluya a través de la columna. Luego, agregue los complejos de partículas MNP a la columna, recogiendo el flujo en un contenedor de desechos.

Cuando toda la solución compleja haya pasado a través de la columna, lave la columna tres veces con 500 microlitros de tampón de lavado. Luego, transfiera la columna a un tubo de 12 por 75 milímetros. Después de tres minutos, agregue 200 microlitros de PBS, permitiendo que las perlas eluyan por gravedad.

Cuando todo el PBS haya pasado a través de la columna, agregue 200 microlitros de PBS fresco al tubo y fije las partículas con 200 microlitros de paraformaldehído al 4%. A continuación, cargue PBS filtrado de 0,22 micras en un citómetro de flujo y ajuste el voltaje PMT en el citómetro hasta que el PBS filtrado muestre cero o muy pocos eventos. Luego, ejecute las partículas capturadas por MNP usando un flujo bajo con un filtro en línea de 0.04 micrones para el fluido de la vaina colocado en serie detrás del filtro de vaina estándar de 0.2 micrones para eliminar aún más cualquier evento falso.

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Última actualización: 15 agosto 2026