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Comience ensamblando un portaobjetos de ensayo de microarrays pretratados con distintos puntos que contienen anticuerpos de captura específicos de proteínas para la detección de múltiples proteínas.
Cargue las diluciones del patrón proteico y las muestras de suero prediluidas en pocillos separados. Estas diluciones crean un rango de concentraciones de proteínas para una cuantificación precisa.
Incubar para facilitar las interacciones proteína-anticuerpo. Lave para eliminar las proteínas no unidas, desmonte y seque el portaobjetos.
Invierta el portaobjetos de ensayo en un aparato de presión que contenga un portaobjetos de transferencia rehidratado manchado con anticuerpos de detección biotinilados específicos de proteínas en las mismas posiciones que el portaobjetos de ensayo.
Cierre el aparato y presione para encajar las diapositivas entre sí. Esto facilita la transferencia de los anticuerpos de detección a los puntos correspondientes en el portaobjetos del ensayo, minimizando la reactividad cruzada.
Separar los portaobjetos para permitir la interacción de los anticuerpos de detección con las proteínas unidas, formando inmunocomplejos.
Vuelva a ensamblar el portaobjetos del ensayo, enjuáguelo e introduzca estreptavidina conjugada con fluoróforos, interactuando con anticuerpos biotinilados.
Usando un escáner, detecte puntos de fluorescencia en varios lugares, lo que indica múltiples proteínas en la muestra de suero. Compare las intensidades puntuales con el estándar para la cuantificación de proteínas.
Para comenzar el inmunoensayo, retire el portaobjetos de ensayo preparado del congelador y déjelo calentar a temperatura ambiente en su bolsa sellada durante 30 minutos. Prepare siete soluciones diluidas en serie de proteínas en PBS con polisorbato-20 al 0,05%. Preparar soluciones de muestra diluidas adecuadamente en el mismo tampón.
Sujete una junta de silicona de 24 pocillos en el portaobjetos de ensayo a temperatura ambiente. Cargue las siete diluciones de proteínas en siete de los ocho pocillos de una columna. Cargue PBS sin proteínas con polisorbato-20 al 0,05 % en el último pocillo de esa columna. Cargue las soluciones de muestra en los pocillos restantes.
Agite los portaobjetos a 450 RPM durante 1 hora a temperatura ambiente o a 4 grados centígrados durante la noche. Luego, lave el portaobjetos tres veces. Retire la junta y seque la corredera bajo una corriente de gas nitrógeno.
A continuación, deje que el portaobjetos de transferencia de anticuerpos de detección se caliente a temperatura ambiente durante 30 minutos en su bolsa sellada. Luego, incube los portaobjetos durante 20 minutos en una cámara cerrada con una humedad relativa del 60% para rehidratar las matrices. Utilice los pasadores pogo para fijar la corredera de transferencia de detección boca arriba en el aparato de presión.
Coloque la diapositiva de ensayo boca abajo sobre los pasadores pogo y alinee la diapositiva con los pasadores rectos. Cierre el aparato y transfiera rápidamente los anticuerpos de detección al portaobjetos de ensayo. Retire los portaobjetos del aparato e incube el portaobjetos de ensayo durante una hora.
Sujete una junta de silicona de 24 pocillos al portaobjetos y lávelo tres veces. Luego, cargue en cada pocillo 80 microlitros de una solución de 2.5 microgramos por mililitro de fluoróforo de estreptavidina en PBS. Agite el tobogán a 450 RPM durante 20 minutos.
Lave el portaobjetos tres veces con una solución al 0,1% de polisorbato-20 en PBS y una vez con agua destilada. Luego, retire la junta y seque el portaobjetos. Escanee el portaobjetos con un escáner fluorescente y mida las intensidades de los puntos. Determinar los límites de detección y las concentraciones de proteínas.