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Comience con una placa de varios pocillos que contenga macrófagos murinos adheridos, o células inmunitarias fagocíticas.
Introducir una suspensión celular fúngica de Cryptococcus, que interactúa con los receptores de macrófagos e internaliza a través de la fagocitosis.
El fagosoma se fusiona con el lisosoma, formando un fagolisosoma. El ambiente ácido del fagolisosoma favorece la supervivencia y multiplicación de hongos.
Introduzca una alta concentración de primaquina, un fotosensibilizador, en los pocillos de prueba, mientras que el control carece del fotosensibilizador. Incubar para facilitar la absorción de primaquina por los macrófagos.
Exponga la placa a la luz ultravioleta para un tratamiento fotodinámico o PDT.
En el pozo de prueba, la primaquina forma cationes radicales que interactúan con el oxígeno molecular, produciendo especies reactivas de oxígeno o ROS.
Las ROS inducen la muerte de los hongos, mientras que las enzimas antioxidantes de los macrófagos neutralizan las ROS, previniendo el daño celular.
Permeabiliza los macrófagos, liberando células fúngicas.
Distribuya el contenido de células diluidas en placas de agar selectivas, produciendo distintas colonias de hongos.
Menos colonias en la placa de prueba en comparación con el control indican la mayor eficiencia fagocítica de los macrófagos debido al tratamiento fotodinámico con primaquina.
Comience con una suspensión de una línea celular de macrófagos murinos en medio RPMI 1640 completo como se menciona en el protocolo de texto. Dispense 100 microlitros de esta suspensión celular en los pocillos de una placa de cultivo estéril de fondo plano de 96 pocillos. Incube la placa durante la noche en una incubadora.
Al día siguiente, retire la placa de la incubadora. Reemplace el medio gastado con 100 microlitros de medio RPMI-1640 nuevo. Luego, dispense 100 microlitros de suspensión de células criptocócicas en la placa de cultivo que contiene macrófagos con semillas.
Para estudiar el efecto fotodinámico, prepare las concentraciones de trabajo deseadas del fotosensibilizador. Agregue 100 microlitros de solución de trabajo a la placa previamente sembrada con macrófagos y células criptocócicas.
Incube la placa en la oscuridad para que las células reaccionen con el medicamento. Después de la incubación, exponga las placas a la luz ultravioleta durante dos minutos.
Después de iniciar el tratamiento fotodinámico, incubar las placas de cultivo durante 18 horas. Después de la incubación, retire el sobrenadante y lave las células con 200 microlitros de solución tampón de fosfato.
Agregue 300 microlitros de Triton X-100 al 0,1% a los pocillos e incube a temperatura ambiente durante 10 minutos.
Aspire el contenido de cada pocillo y dispense en tubos de plástico estériles individuales de 1,5 mililitros. Diluir las células 10 veces con agua destilada y pipetear 50 microlitros de la dilución en placas individuales de agar de levadura-malta-extracto.
Utilice un método de placa extendida para crear un césped confluente de células en la superficie de la placa de agar. Incube las placas durante 48 horas. Cuente las unidades formadoras de colonias en las placas de agar.