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Tome diluciones seriadas de anticuerpos específicos para citomegalovirus humano o HCMV.
Al agregar HCMV, los anticuerpos se unen a la glicoproteína B en la envoltura viral, neutralizando el virus.
Transfiera la mezcla a fibroblastos humanos e incube.
Un complejo de glicoproteína trímero en los virus no neutralizados se une a receptores celulares específicos, desencadenando la fusión de la membrana virus-huésped mediada por glicoproteína B y liberando la nucleocápside que contiene ADN genómico en su interior.
El genoma liberado ingresa al núcleo, codificando proteínas localizadas en el núcleo inmediatamente temprano, o IE.
La neutralización de anticuerpos evita la entrada viral en las células.
Elimine los virus no internalizados. Tratar con etanol a una temperatura bajo cero para fijar y permeabilizar las células.
Introducir un anticuerpo primario que se une a las proteínas IE.
Agregue un anticuerpo secundario conjugado con fluoróforo que se une al anticuerpo primario y una tinción fluorescente que se une al ADN.
Bajo un microscopio, detecte células con doble tinción que estén infectadas por virus. Calcular el porcentaje de células infectadas para determinar la neutralización del virus a las diferentes concentraciones de anticuerpos.
El día antes del experimento, prepare las células diana para la infección cultivando células de fibroblastos, cultivadas en medios completos, que consisten en DMEM suplementado con un 10% de FBS, en una placa estéril de 96 pocillos.
Después de 24 horas, prepare la mezcla de virus y anticuerpos agregando 90 microlitros de solución de anticuerpos diluidos en los pocillos de una placa nueva de 96 pocillos. Prepare diluciones seriadas de solución de anticuerpos utilizando medios completos.
Además, agregue 60 microlitros de la solución del virus, prediluidos en medios completos, en cada pocillo que contenga anticuerpos para generar varias concentraciones de las mezclas de virus y anticuerpos e incubar.
Ahora, para infectar las células diana, tome la placa sembrada con fibroblastos. Agregue 100 microlitros de diferentes concentraciones de la mezcla de virus y anticuerpos a las células e incube la placa objetivo durante 24 horas.
Después de 24 horas, para detectar la infección viral mediante inmunofluorescencia, fije las células con etanol absoluto e incube en un congelador de -20 grados centígrados. Después de la fijación, continúe con los pasos posteriores en la mesa de laboratorio.
Pipetear 100 μl del anticuerpo primario en todos los pocillos de la placa. Coloque el plato a temperatura ambiente durante una hora.
Retire la solución de anticuerpos primarios de los pocillos. Agregue una mezcla de anticuerpo secundario conjugado con fluoróforo y solución DAPI a todos los pocillos. Incube el plato durante una hora en la oscuridad y lávelo.
Para cuantificar la infección, visualice la placa bajo un microscopio y adquiera imágenes utilizando los canales azul y rojo. Calcule el porcentaje de infección por pozo, como se detalla en el protocolo de texto.