Name: La lesión del nervio Salvados (SNI) Modelo de alodinia mecánica inducida en ratones (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-08-18T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 44 s
Description: Aprende a establecer el modelo de lesión del nervio salvado en ratones para estudiar alodinia mecánica mediante filamentos de von Frey. Este método permite cuantificar la sensibilidad al dolor neuropático y evaluar posibles tratamientos.

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Este trabajo fue apoyado por la Fundación Lundbeck, la Fundación Carlsberg y Dagmar Marshall Foundation.

1. von Frey mediciones de referencia antes de la cirugía Para el procedimiento de von Frey prueba, por favor refiérase a la sección 5. 2. Anestesia / preparación <ol><li> Anestesiar a los animales (inyección intraperitoneal de una mezcla de ketamina y 100mg/kg 15 xilazina mg / kg). </li><li> Colocar el animal en un lugar tranquilo hasta que esté completamente anestesiado (por ejemplo, cubierta con una toalla de papel). </li><li> Revisar los reflejos pellizcando la punta de la cola y las patas con un par de pinzas. Asegúrese de que los animales no responden antes de proceder. </li><li> Por vía subcutánea inyección (zona posterior del hombro) con 0,5 ml de solución salina isotónica antibióticos, por ejemplo, ampicilina (para evitar la deshidratación y prevenir la infección, aunque este es un procedimiento quirúrgico menor). </li><li> Usando una máquina de afeitar eléctrica, afeitarse el campo operatorio desde ligeramente por debajo del área de la rodilla a la cadera (para las personas diestras la extremidad posterior izquierda es recomendable). </li><li> Aplique un ungüento oftálmico para los ojos con un bastoncillo de algodón. </li><li> Colocar el animal sobre su lado derecho y colocar la extremidad posterior izquierda en una pequeña plataforma para mantenerla elevada. Asegurar la pierna con cinta adhesiva. </li><li> Desinfectar el campo operatorio con la alternancia de matorrales de etanol y betadine de fuera del sitio quirúrgico. </li></ol> 3. Cirugía <ol><li> Localice la rodilla con el pulgar de su mano izquierda y el uso de un bisturí para realizar una aplicación. Incisión de 1 cm en la dirección longitudinal proximal a la rodilla. </li><li> Abrir la piel mediante disección roma con la punta de unas tijeras estériles. </li><li> Separar la capa muscular mediante disección roma justo al lado de los vasos sanguíneos visibles, cerca del hueso del muslo (fémur). Si se hace correctamente, las capas musculares fácilmente por separado sin ningún tipo de hemorragia, dejando al descubierto el nervio ciático derecho debajo de los músculos. Si se produce una hemorragia por ejemplo, por el daño a los vasos sanguíneos cerca de la rodilla, el uso de lana estéril bastoncillos de algodón o pedazos de la mirada para absorber la sangre. Pulse hasta que se detenga el sangrado. </li><li> Coloque el ratón debajo de un microscopio estereoscópico y separar cuidadosamente los músculos con un par de pinzas estériles (n º 2) para visualizar el nervio ciático. Retractores también se puede aplicar. </li><li> Identificar el área donde las ramas del nervio sural del nervio ciático. El nervio sural es el más pequeño de los tres poderes, la ramificación a la derecha en la pierna izquierda. </li><li> Aplicar sutura (6-0 sutura) en torno a las otras dos ramas que todavía están funcionando en paralelo (los nervios peroneo común y tibial), teniendo mucho cuidado de no tocar la rama sural. Este es un paso crítico como el nervio sural tiene que ser dejado intacto. </li><li> Haga un nudo apretado quirúrgica. Si el primer nudo es apretado, las contracciones de las extremidades se observan. </li><li> Coge los nervios a cortar por debajo de la sutura con un par de pinzas (n º 5), y cortar los nervios encima y debajo de las pinzas con un pequeño par de tijeras. En primer lugar, el corte por encima del par de pinzas, halando de los nervios se evita. </li><li> Corte los extremos de sutura con un par de tijeras micro y cierre suavemente la capa muscular. Añadir una gota de lidocaína en la herida y la sutura con nudos quirúrgicos. </li></ol> 4. Después de la cirugía <ol><li> Compruebe si ungüento para los ojos es todavía suficiente. </li><li> Coloque el ratón en una jaula limpia con una toalla de papel en una postura cómoda. Si la habitación es fría, colocar una almohadilla de calor en una parte de la caja (sólo en la parte de la jaula, el animal debe ser capaz de escapar a un área más fría si se prefiere). </li><li> Asegurar que el agua de fácil acceso y comida. </li></ol> 5. prueba de von Frey (línea de base, y desde el día después de la cirugía) <ol><li> Coloque el ratón en rojo cilindros de plástico de color colocados sobre una mesa de malla de alambre de dos días y un día antes de la cirugía. Habituarse durante 15 minutos en los cilindros antes de la prueba. El color rojo de los cilindros de ayuda a los ratones para relajarse rápidamente, ya que no pueden verse entre sí y se encuentran en una zona más oscura. </li><li> Verifique que los ratones son tranquilas y aplicar filamentos de von Frey a la parte lateral de la pata: A partir del filamento de 0,02 g, en primer lugar aplicar la fuerza de la pata izquierda cinco veces durante un período total de 30 segundos (aproximadamente 2 segundos por estímulo) y evaluar la reacción de los ratones después de cada aplicación. Repita el procedimiento con el mismo filamento y la garra izquierda de otros ratones, y luego comenzar de nuevo con la pata derecha del ratón antes de pasar a la siguiente filamento, por ejemplo: <ul><li> 1 del ratón: la pata izquierda 5 veces con filamentos de 0,02 g </li><li> Mouse 2: pata izquierda 5 veces con filamentos de 0,02 g, etc </li><li> 1 del ratón: la pata derecha 5 veces con filamentos de 0,02 g </li><li> Mouse 2: pata derecha 5 veces con filamentos de 0,02 g, etc </li><li> 1 del ratón: la pata izquierda 5 veces con filamentos de 0,04 g </li><li> Mouse 2: pata izquierda 5 veces con filamentos de 0,04 g, etc </li></ul></li><li> Respuesta en tres de los cinco estímulos se considera una reacción positiva. Filamentos por encima de threshold se puede aplicar para verificar el nivel de umbral. Respuesta = retirada de la pata súbita, repentina inmutarse, la pata de repente lamer. </li></ol> 6. Los resultados representativos <img src="/files/ftp_upload/3092/3092fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Von Frey prueba en C57BL / 6 ratones de edad 8-10 semanas de edad se realizó un día antes de la operación y en varias ocasiones después de la cirugía. Animales 8.4 se incluyeron en cada grupo. Von Frey prueba en el lado operado está representado por ipsilateral y la parte de control no funciona es representado por contralateral. El día después de la cirugía los animales desarrollan hipersensibilidad significativa en la pata operada, mientras que la no operada es sólo ligeramente afectada en relación con los ratones con operación simulada. (* &lt;0,05, ** &lt;0,01, *** &lt;0,001, en relación ipsilateral a contralateral).

<ol><li>Costigan, M., Scholz, J., Woolf, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuropathic+pain%3A+a+maladaptive+response+of+the+nervous+system+to+damage%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Neuropathic pain: a maladaptive response of the nervous system to damage.</a> Annu. Rev. Neurosci. 32, 1-32 (2009).</li>
<li>Decosterd, I., Woolf, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spared+nerve+injury%3A+an+animal+model+of+persistent+peripheral+neuropathic+pain%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">Spared nerve injury: an animal model of persistent peripheral neuropathic pain.</a> Pain. 87, 149-158 (2000).</li>
<li>Bourquin, A. -F., Süveges, M., Pertin, M., Gilliar, N., Sardy, S., Davidson, A. C., Spahn, D. R., Decosterd, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+and+analysis+of+mechanical+allodynia-like+behavior+induced+by+spared+nerve+injury+%28SNI%29+in+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">Assessment and analysis of mechanical allodynia-like behavior induced by spared nerve injury (SNI) in the mouse.</a> Pain. 122, 14.e1-14.e14 (2006).</li>
<li>Chaplan, S. R., Bach, F. W., Pogrel, J. W., Chung, J. M., Yaksh, T. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+assessment+of+tactile+allodynia+in+the+rat+paw%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci.+Methods%22%5BJournal%5D)">Quantitative assessment of tactile allodynia in the rat paw.</a> J. Neurosci. Methods. 53, 55-63 (1994).</li>
<li>Bennett, G. J., Xie, Y. -K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+peripheral+mononeuropathy+in+rat+that+produces+disorders+of+pain+sensation+like+those+seen+in+man%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">A peripheral mononeuropathy in rat that produces disorders of pain sensation like those seen in man.</a> Pain. 33, 87-107 (1988).</li>
<li>Seltzer, Z., Dubner, R., Shir, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+behavioral+model+of+neuropathic+pain+disorders+produced+in+rats+by+partial+sciatic+nerve+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">A novel behavioral model of neuropathic pain disorders produced in rats by partial sciatic nerve injury.</a> Pain. 43, 205-218 (1990).</li>
<li>Hargreaves, K., Dubner, R., Brown, F., Flores, C., Joris, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+and+sensitive+method+for+measuring+thermal+nociception+in+cutanous+hyperalgesia%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">A new and sensitive method for measuring thermal nociception in cutanous hyperalgesia.</a> Pain. 32, 77-88 (1988).</li>
<li>Erichsen, H. K., Blackburn-Munro, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pharmacological+characterization+of+the+spared+nerve+injury+model+of+neuropathic+pain%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">Pharmacological characterization of the spared nerve injury model of neuropathic pain.</a> Pain. 98, 151-161 (2002).</li>
</ol>

No hay conflictos de interés declarado.

Los pasos críticos Daño en el nervio sural se debe evitar con el fin de estudiar los cambios patológicos en el intacta lesión del nervio sural siguientes a los nervios peroneo común y tibial. El daño colateral en el nervio sural puede conducir a la parálisis y por lo tanto puede ser visualizado como el arrastre de la extremidad posterior funcionamiento. Sólo la parte lateral de la pata es inervado por el nervio sural ahorrado y, por tanto, sólo que esta zona se desarrolla una neuropatía. Prueba de otras áreas, inervados por los nervios seccionados, puede muy sesgo en la evaluación del umbral de mecánica alterada. Posibles modificaciones Otros tipos de ligaduras pueden ser complementarios en términos de estudio de las condiciones patológicas del dolor después de una lesión de nervios periféricos, tales como la lesión de constricción crónica [5] o la ligadura parcial del nervio [6]. Los resultados de cada procedimiento experimental en distintos cambios fenotípicos que deben ser considerados antes de la prueba después de la cirugía. Además, otras pruebas sensoriales, tales como la hiperalgesia térmica se puede aplicar [7], aunque este fenotipo es menos robusto SNI siguientes. Las futuras aplicaciones Esta técnica puede ser utilizada para las pruebas de drogas que alteran el desarrollo o mantenimiento de la alodinia mecánica [8]. Análisis del nervio ciático, los ganglios de la raíz dorsal (DRG) y / o la médula espinal lumbar permitir la investigación de los mecanismos moleculares responsables del fenotipo inducido. La experimentación con animales se realizó de acuerdo a buenas prácticas de laboratorio en plena conformidad con las normas danesas y europeas. Todos los experimentos fueron aprobados por el danés experimentos con animales de Inspección del Ministerio de Justicia (número de la autorización 2006/561-1206).

<table border="1"><tbody><tr><td> Anestesia: La ketamina y xilazina </td><td> Bisturí </td></tr><tr><td> Oftálmicos pomada </td><td> Pinzas nr. 2 </td></tr><tr><td> Rasuradora eléctrica </td><td> Pinzas nr. 5 </td></tr><tr><td> Guantes </td><td> Par de tijeras para disección roma </td></tr><tr><td> 70% (v / v) de etanol </td><td> Micro tijeras </td></tr><tr><td> Lana de bastoncillos de algodón / la mirada </td><td> 6.0 Prolene sutura no absorbible </td></tr><tr><td> Microscopio estereoscópico </td><td> 2 x porta-agujas </td></tr><tr><td> Cinta adhesiva </td><td> Almohadilla de calor </td></tr><tr><td colspan="2"> filamentos de von Frey (0,02 - 2,0 g para los ratones) (Stoelting) </td></tr></tbody></table>

la lesión del nervio salvados (sni) modelo de alodinia mecánica inducida en ratones

The Spared Nerve Injury (SNI) Model of Induced Mechanical Allodynia in Mice

El dolor neuropático periférico es una afección grave dolor crónico que puede resultar de un trauma a los nervios sensoriales del sistema nervioso periférico. La lesión del nervio escatimado (SNI) modelo induce los síntomas del dolor neuropático, como la alodinia mecánica es decir, dolor debido a los estímulos táctiles que no suelen provocar una respuesta dolorosa [1]. El modelo de ratón SNI consiste en la ligadura de dos de las tres ramas del nervio ciático (el nervio tibial y el nervio peroneo común), mientras que el nervio sural se deja intacto [2]. Los resultados de la lesión en la hipersensibilidad marcada en la zona lateral de la pata, que es inervado por el nervio sural ahorrado. El lado no operado del ratón se puede usar como control. Las ventajas del modelo de SNI son la solidez de la respuesta y que no requiere conocimientos de expertos de microcirugía. El umbral para la respuesta al dolor mecánico está determinado por las pruebas con filamentos de von Frey de la creciente fuerza de flexión, que son repetidamente presiona contra la zona lateral de la pata [3], [4]. Una reacción positiva del dolor se define como repentina retirada de la pata, acobardarse y / o la pata lamiendo inducida por el filamento. Una respuesta positiva en tres de los cinco estímulos repetitivos se define como el umbral del dolor. Como se demuestra en el protocolo de vídeo, los ratones C57BL / 6 experiencia alodinia profunda tan pronto como al día siguiente de la cirugía y mantener esto durante varias semanas.

La lesión del nervio Salvados modelo animal es descrito aquí como un modelo de ratón del dolor neuropático periférico después de denervación parcial del nervio ciático por lesionar las ramas tibial y peroneo común del nervio, dejando el nervio sural se mantiene intacta. Modificación de la conducta resultante de la alodinia mecánica se cuantifica por filamentos de von Frey.

La lesión del nervio Salvados (SNI) Modelo de alodinia mecánica inducida en ratones

El dolor neuropático periférico es una afección de dolor crónico grave que puede derivarse de un traumatismo en los nervios sensoriales del sistema nervioso periférico. Los...

El objetivo general de este procedimiento es establecer un modelo murino de dolor neuropático tras una lesión nerviosa periférica. Esto se logra primero anestesiando al ratón, colocando la pata trasera en la posición adecuada y exponiendo el nervio ciático. A continuación, se induce una lesión nerviosa definida mediante la sutura de dos ramas del nervio ciático, dejando la tercera rama intacta.En este video, los nervios tibial y peroneo común se suturan y seccionan, mientras que el nervio sural se conserva. Sin embargo, se pueden aplicar otras combinaciones tras una lesión nerviosa. La rata se coloca en un recipiente cilíndrico sobre una mesa de malla metálica y se le permite habituarse; luego se evalúa mediante el ensayo de Von Frey, que permite una medición cuantitativa de la alodinia mecánica inducida.Los filamentos Von Frey calibrados se aplican en orden ascendente sobre la zona lateral del poro operado. Con el fin de detectar el umbral mecánico en la extremidad trasera operada en comparación con la no operada, se define una respuesta dolorosa como la retirada rápida del poro, espasmos y/o lamido del poro tras la estimulación con el filamento. En última instancia, el desarrollo de alodinia mecánica en la pata operada en comparación con el lado no operado puede visualizarse mediante la representación gráfica del umbral mecánico a lo largo del tiempo, lo que permite investigar diversas vías moleculares o tratamientos farmacológicos tras una lesión del nervio periférico.Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo de la lesión del nervio periférico, como las vías moleculares implicadas en el desarrollo del dolor neuropático. Además, también se pueden probar fármacos destinados a impedir el desarrollo del dolor o a aliviar los síntomas dolorosos. Dos días antes de la cirugía, coloque los ratones en cilindros de plástico de color rojo colocados sobre una mesa de malla metálica en una habitación tranquila; habitúe a los ratones a los cilindros durante 15 minutos antes de la prueba. Tras 15 minutos, verifique que los ratones estén tranquilos y luego aplique filamentos von Frey en orden ascendente, comenzando con el filamento de 0,02 gramos. Primero aplique la fuerza en la zona lateral del poro izquierdo cinco veces durante un período total de 30 segundos, y evalúe la reacción del ratón tras cada aplicación. Repita con el mismo filamento y el poro izquierdo del otro ratón, y luego comience de nuevo con el poro derecho antes de pasar al siguiente filamento.Se define una reacción positiva al dolor como la retirada repentina del poro, la separación de los dedos del pie y/o el lamido excesivo del poro inducidos por el filamento, y se define como umbral del dolor la respuesta positiva en tres de cinco estímulos repetitivos. Anestesiar a los animales mediante inyección intraperitoneal de una mezcla de ketamina y xilazina y colocar a los animales en un lugar tranquilo hasta que estén completamente anestesiados. Verificar los reflejos pellizcando la punta de la cola y la pausa con un par de pinzas, asegurándose de que los animales no respondan antes de continuar.A continuación, inyecte subcutáneamente 0.5 mililitros de solución salina isotónica con antibióticos para evitar la deshidratación y prevenir infecciones. Con una afeitadora eléctrica, afeite el campo operatorio desde ligeramente por debajo de la rodilla hasta la zona de la cadera para diestros. Las personas que trabajen con la extremidad trasera izquierda pueden encontrarlo más conveniente. Aplique ungüento en los ojos con un bastoncillo de algodón.Coloque al animal sobre su lado derecho y coloque la pata trasera izquierda sobre una plataforma pequeña para mantenerla elevada, asegurando la pata con cinta adhesiva. Una vez posicionado el animal, desinfecte el campo operatorio con fricciones alternadas de etanol y Betadine, comenzando desde el sitio quirúrgico hacia afuera, y deje secar. Localice la rodilla con el pulgar de su mano izquierda y use un escalpelo para realizar una pequeña incisión en dirección longitudinal por encima de la rodilla. Abra la piel mediante disección romo utilizando la punta de un par de tijeras.A continuación, coloque el ratón bajo un microscopio estereoscópico y localice el vaso sanguíneo claramente visible cerca del fémur. Luego, separe la capa muscular mediante disección romo. Si se realiza correctamente, las capas musculares se separarán fácilmente sin sangrado, revelando el nervio ciático justo debajo de los músculos.Si ocurre un sangrado debido al daño de un vaso sanguíneo cercano, use bastoncillos de algodón o trozos de gasa para absorber la sangre aplicando presión hasta que el sangrado se detenga. Separe cuidadosamente las capas musculares separadas con un par de pinzas número dos. Para visualizar el nervio ciático, aplique retractores si es necesario y localice la zona donde el nervio sural se ramifica a partir del nervio ciático.El nervio sural es el más pequeño de los tres ramas que se ramifican hacia la derecha en la pata izquierda. En ratones C57BL/6, aplicar una sutura 6-0 firmemente alrededor de las otras dos ramas, que aún corren en paralelo, teniendo mucho cuidado de no tocar la rama sural.Agarre los nervios que deben cortarse debajo del punto de sutura con un par de pinzas número cinco, y luego corte los nervios primero por encima y luego por debajo de las pinzas con un par de tijeras pequeñas para evitar tirar de los nervios. Una vez que los nervios hayan sido cortados, recorte los extremos de la sutura con un par de tijeras y luego cierre suavemente la capa muscular. Normalmente no se necesita anillo de sutura.Agregue una gota de lidocaína en la herida y suture con nudos quirúrgicos. Verifique si la pomada ocular sigue siendo suficiente, luego coloque al ratón en una jaula limpia con una toalla de papel. En una postura cómoda, proporcione agua y alimento de fácil acceso.Si la habitación está fría, coloque una almohadilla térmica debajo de una parte de la jaula después de un día de recuperación postoperatoria y obtenga mediciones con von Frey de ratones operados y falsamente operados como se describió para la recolección de las mediciones basales. Aquí se muestran los resultados de la prueba de von Frey en grupos de cuatro a seis ratones, tanto un día antes de la cirugía como diariamente durante dos semanas posteriores a la cirugía. Al día siguiente de la cirugía, los animales desarrollaron una hipersensibilidad mecánica significativa en la pata operada o ipsilateral, mientras que la pata no operada o contralateral permaneció sin afectación.El umbral en el lado contralateral se encuentra ligeramente disminuido en comparación con los ratones sometidos a cirugía simulada, lo que indica que la alodinia por IM podría presentarse en menor grado en los ratones operados. Tras ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo localizar y manipular las ramas del nervio S en un ratón anestesiado. El ensayo de fray permite además una lectura funcional cuantitativa para evaluar la respuesta de animales transgénicos o de fármacos tras una lesión periférica parcial del nervio.

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Debido a la simplicidad de la cirugía y el resultado del comportamiento robusto, constricción crónica del nervio ciático es uno de los modelos animales de pre-eminentes de dolor neuropático. Dentro de las 24 horas siguientes a la cirugía, la hipersensibilidad del dolor se establece y se puede medir cuantitativamente utilizando una de von Frey aesthesiometer (ensayos mecánicos) y el medidor de la analgesia plantar (ensayo térmico).

La constricción crónica del nervio ciático y pruebas de hipersensibilidad dolor en ratas

Este video muestra cómo probar la función de los nervios sensoriales en un modelo de ratón denervando quirúrgicamente un lado y dejando el otro como control. La respuesta a la estimulación mecánica confirma el papel de los nervios sensoriales.

Prueba de la función nerviosa sensorial en un modelo de ratón denervado quirúrgicamente

El modelo de transección del nervio tibial es un bien tolerado, validado, y reproducible modelo de atrofia del músculo esquelético. El modelo de protocolo quirúrgico se describe y se demuestra en C57Black6 ratones.

Transección del nervio tibial - Un modelo normalizado para la atrofia del músculo esquelético denervación inducida en ratones

El dolor neuropático es una consecuencia de una lesión o enfermedad que afecta al sistema somatosensorial. El "modelo de puño" del dolor neuropático en ratones consiste en la implantación de un manguito de polietileno alrededor de la rama principal del nervio ciático. La alodinia mecánica se prueba utilizando filamentos de von Frey.

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Presentamos un protocolo quirúrgico que detalla cómo realizar una axotomía cortada o aplastada en el nervio facial en el ratón. La axotomía del nervio facial se puede emplear para estudiar la respuesta fisiológica a la lesión nerviosa y probar técnicas terapéuticas.

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La cirugía modificada es un método simplificado para el modelo de lesión nerviosa sin nervios en ratones o ratas que requiere solo una ligadura y un corte para lesionar los nervios peroneo y sural comunes.

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El ensayo mecánico de evitación de conflictos se utiliza como una lectura no reflexiva de la sensibilidad al dolor en ratones que se puede utilizar para comprender mejor las respuestas afectivo-motivacionales en una variedad de modelos de dolor de ratón.

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La ligadura parcial del nervio ciático induce dolor neuropático crónico de larga duración, caracterizado por respuestas exageradas a estímulos térmicos y mecánicos. Este modelo de ratón de dolor neuropático se usa comúnmente para estudiar terapias innovadoras para el manejo del dolor. Este artículo describe en detalle el procedimiento quirúrgico para mejorar la estandarización y la reproducibilidad.

Ligadura parcial del nervio ciático: un modelo de ratón de dolor neuropático crónico para estudiar el efecto antinociceptivo de nuevas terapias

La lesión crónica por constricción del nervio infraorbitario distal en ratones induce cambios en el comportamiento espontáneo (aumento de la actividad de acicalamiento facial) y el comportamiento nocifensivo en respuesta a la estimulación táctil (hiperreactividad a la estimulación del cabello de von Frey) que son signos de dolor continuo y alodinia, y sirven como modelo para el dolor neuropático del trigémino.

Lesión crónica por constricción del nervio infraorbitario distal (DIoN-CCI) en ratones para estudiar el dolor neuropático del trigémino

Este protocolo presenta un modelo de rata reproducible que utiliza nervios sensoriales para imitar el dolor del neuroma humano y evaluar los tratamientos quirúrgicos, ofreciendo una herramienta valiosa para la investigación traslacional del neuroma.

Nuevo modelo quirúrgico de roedores para estudiar las opciones de tratamiento del dolor del neuroma mediante la reinervación muscular dirigida a través del nervio safeno

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