Name: Desplegable de proteínas de unión a calmodulina (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-01-23T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 51 s
Description: Aprende el ensayo de desplegable de calmodulina para estudiar interacciones proteicas dependientes de calcio usando perlas de CaM-sefarosa. Este método permite identificar proteínas que se unen a calmodulina y analizar su función en señalización celular.

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Los autores desean agradecer a Tiffany de la cereza en su ayuda en la optimización de este protocolo. Este trabajo fue financiado por el Instituto Nacional del Envejecimiento (AG032320), así como el avance de una mejor salud de Wisconsin.

Refiérase a la Figura 1 para un esquema básico de principios procedimiento con el homogeneizado. Tiempo estimado de preparación de extractos celulares de elución de la CAM con destino proteínas es de aproximadamente seis a siete horas. 1. Preparación de tejidos <ol><li> Inyectar organotípicos rodajas de hipocampo con un virus que contiene un plásmido que expresa la proteína recombinante de interés (en este ejemplo, la proteína verde fluorescente (GFP)-etiquetados Ng) y permitir que el tejido que expresan la proteína durante la noche. </li><li> Aproximadamente 12 a 18 horas después de la inyección viral (dependiendo de la época la expresión viral), se preparan para recoger el tejido. Añadir 1 ml de buffer de la disección (glucosa 10 mM, 4 mM KCl, 26 mm de NaHCO3, 233mM sacarosa, 5 mM MgCl2, 1 mM CaCl 2, y el 0,1% de fenol-rojo, cámaras de gas con 5% de CO 2 95% O 2) a una placa de Petri. Transferencia de cultivo de tejidos / inserción de placa de Petri y añadir 2 ml de búfer disección de la inserción a sumergir el tejido. </li><li> Recolecciónt organotípicos tejido del hipocampo (entre 5 y rodajas de 10), raspando suavemente en el tejido libre de la membrana insertar utilizando un bisturí. En concreto la eliminación de una determinada región de interés (por ejemplo, CA1) es también una opción. Transferir el tejido suspendido a un tubo de microcentrífuga de 1,5 ml con una pipeta Pasteur invertida. </li><li> Centrifugar las muestras a 1.500 rcf durante 1 min para separar el tejido de la memoria intermedia de disección. Retire con cuidado el sobrenadante por aspiración. Asegúrese de no perturbar el sedimento. </li><li> Para cada sector utiliza, agregar 30 a 60 l de tampón de homogeneización (150 mM NaCl, 20 mM Tris pH 7,5, DTT 1 mM, leupeptina 1μg/mL, chemostatin 1μg/mL, antipain 1μg/mL, pepstatina 1μg/mL, y el 1% Triton X -100) a los tejidos y homogeneizar completamente con mortero. </li><li> Con el fin de eliminar los desechos celulares, centrifugar el homogenado restantes a 1.100 rcf durante 10 minutos y retirar con cuidado el sobrenadante por aspiración y evitando la contaminación del sedimento. </li><li> Tomar el 10% del sobrenadante como una muestra de la entrada (muestra 1). Guarde el resto de sobrenadante en hielo durante la preparación de las cuentas de la CaM-sefarosa para su uso en el paso 3. </li></ol> Nota: El tejido utilizado aquí son organotípicos rodajas de hipocampo. Sin embargo, se podría utilizar las neuronas disociadas o cualquier sistema de cultivo de células. En tal caso, comience por el paso 1.4 después de recoger el tejido de la manera adecuada. 2. Preparación de cuentas de pull-down En el manejo de las cuentas, es importante para salvar las cuentas y maximizar la eficiencia de las reacciones mediante la prevención de los granos se sequen en los lados del tubo. Para ello, lo mejor es rotar los tubos de su lado, permitiendo que la solución para humedecer los granos en las paredes del tubo, inmediatamente antes de la centrifugación. <ol><li> Para cada pull-down, una pipeta 400 l de suspensión Sepharose calmodulina cuentas en un tubo de microcentrífuga de 2 ml con un fla relativamentet-fondo para maximizar el área superficial y la interacción de sus soluciones con las cuentas durante su incubación. </li><li> Centrífuga cuentas en 21.000 rcf durante 30 segundos y retirar con cuidado el sobrenadante por aspiración. Asegúrese de no molestar a las cuentas. </li><li> Para lavar los granos, añadir 100 ml de tampón de homogeneización respectivos que contienen 2 mM CaCl 2 a las que se utilizan para tirar hacia abajo de Ca 2 +-CAM proteínas de unión y 2 mM EDTA (un quelante conocido Ca 2 +) para los granos tirando hacia abajo ApoCaM proteínas de unión. Golpee suavemente el tubo para volver a suspender cuentas y centrifugar a 1.500 rcf durante 1 min. Retire con cuidado el sobrenadante por aspiración, asegurándose de no molestar a las cuentas. </li></ol> Nota: Para todos los pasos de aspiración, se recomienda utilizar una pipeta de punta que tiene una abertura muy bien (por ejemplo, puntas de carga de gel) para permitir la remoción de la solución sin necesidad de retirar cuentas. 3. CAM-sefarosa unión de las proteínas <ol><li> Dividir en dos el sobrenadante que contiene las condiciones de un volumen igual. Dependiendo de su estado, agregar la cantidad adecuada de CaCl 2 o EDTA para su sobrenadante hasta una concentración de 2 mM de cada uno. </li><li> Añadir sobrenadante del paso de 1,7 a cuentas de lavado en tampón de homogeneización correspondientes. Golpee suavemente el tubo para mezclar. </li><li> Incubar las muestras a 4 ° C durante 3 horas en un agitador. Vuelva a suspender cuentas cada 30 minutos o más para aumentar la eficiencia de la unión. </li><li> Tubo de centrífuga que contienen las muestras y los granos en 1500 rcf durante 3 min. </li><li> Tome 50μL del sobrenadante como una muestra de la proteína unida (muestra 2) y retirar con cuidado el resto de sobrenadante por aspiración y descarte. </li><li> Lávese las cuentas tres veces como se describe en el paso 2.3 con 100μL de tampón de homogeneización respectivos. </li></ol> 4. Elución <ol><li> Añadir 50μL de tampón de elución (50 mM Tris-HCl pH 7,5, NaCl 150 mM y) con la condición opuesta (10 mM Cacl 2 o EDTA 10 mM) a las perlas. Por ejemplo, las muestras que se homogeneizaron y encuadernado en un tampón que contiene Ca 2 + se eluyen en el tampón de elución que contiene EDTA y viceversa. </li></ol> Opcional: Calentamiento del tampón de elución de 37 ° C antes de añadir a los granos pueden mejorar el rendimiento. <ol start="2"><li> Incubar solución con los granos a temperatura ambiente durante 30 minutos en un agitador. Mezclar el golpeando suavemente el tubo de aproximadamente cada 5 minutos. </li><li> Centrífuga cuentas en 1500 rcf durante 3 minutos y retirar con cuidado el sobrenadante de 50μL para la unión a proteínas (muestra 3) por aspiración. Asegúrese de no molestar a las cuentas. </li><li> Añadir buffer de proteína de carga para todas las muestras (es decir, proteínas homogeneizado, no consolidados y consolidados, así como los que siguen vinculados a las cuentas). </li></ol> Nota: Para maximizar la elución (especialmente en el caso de elución ineficiente), añadir 50μL de tampón de elución correspondiente (por ejemplo, agregar buf contiene EDTAfer de cuentas vinculado en CaCl 2) a las cuentas antes de calentar las muestras para ayudar a eluir cualquier proteína restante atado y repita los pasos descritos en el apartado 4.3 para quitar restantes proteínas unidas. 5. SDS-PAGE y Western Blot Conducta SDS-PAGE y análisis mediante Western blot de sondeo para la proteína de interés y la sonda de una proteína conocida por obligar a CAM en la condición opuesta, como control positivo. 6. Resultados representante La Figura 2b muestra un ejemplo de un ensayo CAM-pull-down de pruebas de la unión CAM de GFP-etiquetados en comparación con Ng Ng endógeno. Para ello, las buenas prácticas agrarias-Ng se sobreexpresa en nuestras secciones de hipocampo organotípicos noche a la mañana y el tejido homogeneizado fue. El homogeneizado se incubó con Cam-sepharose bolas en presencia de cualquiera de Ca 2 + o EDTA. Homogeneizado de entrada muestra que la GFP-Ng se expresó además endógeno Ng y Ca 2 + / CaM-quinasa dependiente de II(CaMKII). Como era de esperar sobre la base de la unión conocida de Ng endógena (que se ilustra en la fig. 2A), GFP-etiquetados Ng se eluyó en ausencia de Ca 2 + (proteína EDTA unido) y no consolidados en la presencia de Ca 2 + (Fig. 2B) . En cambio, el control, CaMKII, se eluyó sólo en la presencia de Ca 2 + (proteínas) y fue sin enlazar en su ausencia (EDTA). Esto demuestra que las cuentas de CAM están funcionando correctamente y el eluciones eran eficientes. Lo más importante, esto demuestra que las buenas prácticas agrarias-Ng se une a ApoCaM de una manera similar a la forma endógena, lo que sugiere que la etiqueta de las buenas prácticas agrarias no alteren el funcionamiento de nuestra proteína recombinante. <img src="/files/ftp_upload/3502/3502fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Esquema de la CAM pull-down de ensayo (A) homogeneizado de tejido se centrifuga para eliminar los restos celulares. Aproximadamente el 10% del sobrenadante se toma como una muestra de la entrada (1). El sobrenadante restante se divide por igual para los diferentescondiciones y los reactivos adecuados (CaCl 2 o EDTA) se añaden a la prueba obligatoria en esas condiciones. Cada sobrenadante (que contiene cualquiera de CaCl2 o EDTA) se carga en el preparado, respectivamente CAM-sepharose bolas y (B) se incuban para permitir la unión. Proteínas no unidos son eliminados (2) y (C) las proteínas unidas (3) se eluyen fuera de las cuentas con tampón de elución (EB), que contiene la condición opuesta a la unión. La composición de proteínas de estas tres muestras de la proteína puede ser analizada mediante SDS-PAGE y Western blot. <img src="/files/ftp_upload/3502/3502fig2.jpg" alt="Figura 2" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Figura 2"> Figura 2. A) Esquema de Ca 2 +-dependiente vinculante CAM y elución en los ejemplos de ensayo de pull-down se dan de dos tipos de proteínas que se unen a una webcam en una Ca 2 +-dependiente. Neurogranina (Ng) representa proteínas que se unen apo-CAM y CaMKII representa las proteínas que se unen al Ca 2 +-ricosCaM. CAM se muestra en su estado disociado antes de la incubación con las proteínas de homogeneizado. Una vez que se incuba en condiciones de alta concentración de Ca 2 + (2 mM) o en presencia de un quelante de Ca 2 +, EDTA (2 mM), las proteínas se unen a CAM en consecuencia. Ng se une CAM en la condición de EDTA, ya que es poco o nada de Ca 2 + presentes, y se eluyó de las perlas de la CaM-sefarosa en presencia de Ca 2 +. CaMKII, sin embargo, se unen a CAM en la presencia de altas cantidades de Ca 2 + y se disocia una vez que el Ca 2 + se quelados. B) Los resultados de CAM ejemplo desplegable ensayo. Esta cifra demuestra el resultado final previsto de una cam-sefarosa desplegable con las muestras probaron para Ng y CaMKII. Tanto el Ng endógeno y las buenas prácticas agrarias Ng-están presentes en las calles de proteínas unidas a la CAM en la presencia de EDTA. No Ng está obligado cuando las muestras se incuban con la CAM en la presencia de Ca 2 +, lo que demuestra que Ng sólo obliga a apo-CAM. Nuestro control positivo, CaMKII, por el contrario, se une a la CaM en presencia de Ca 2 +.

<ol><li>Vincenzi, F. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Calmodulin+in+the+regulation+of+intracellular+calcium%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+West+Pharmacol+Soc%22%5BJournal%5D)">Calmodulin in the regulation of intracellular calcium.</a> Proc. West Pharmacol Soc. 22, 289-294 (1979).</li>
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<li>Needham, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Myosin+and+adenosinetriphosphate+in+relation+to+muscle+contraction%5BTitle%5D)+AND+%22Biochim.+Biophys.+Acta%22%5BJournal%5D)">Myosin and adenosinetriphosphate in relation to muscle contraction.</a> Biochim. Biophys. Acta. 4, 42-49 (1950).</li>
<li>Hathaway, D. R., Adelstein, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+platelet+myosin+light+chain+kinase+requires+the+calcium-binding+protein+calmodulin+for+activity%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Human platelet myosin light chain kinase requires the calcium-binding protein calmodulin for activity.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 76, 1653-1657 (1979).</li>
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<li>Yang, S. D., Tallant, E. A., Cheung, W. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Calcineurin+is+a+calmodulin-dependent+protein+phosphatase%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem.+Biophys.+Res.+Commun%22%5BJournal%5D)">Calcineurin is a calmodulin-dependent protein phosphatase.</a> Biochem. Biophys. Res. Commun. 106, 1419-1425 (1982).</li>
<li>Huestis, W. H., Nelson, M. J., Ferrell, J. E. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Calmodulin-dependent+spectrin+kinase+activity+in+human+erythrocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Prog.+Clin.+Biol.+Res%22%5BJournal%5D)">Calmodulin-dependent spectrin kinase activity in human erythrocytes.</a> Prog. Clin. Biol. Res. 56, 137-155 (1981).</li>
<li>Yamniuk, A. P., Vogel, H. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Calmodulin%27s+flexibility+allows+for+promiscuity+in+its+interactions+with+target+proteins+and+peptides%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Calmodulin's flexibility allows for promiscuity in its interactions with target proteins and peptides.</a> Mol. Biotechnol. 27, 33-57 (2004).</li>
<li>Zhong, L., Kaleka, K. S., Gerges, N. Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neurogranin+phosphorylation+fine-tunes+long-term+potentiation%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Neurogranin phosphorylation fine-tunes long-term potentiation.</a> Eur. J. Neurosci. 33, 244-250 (2011).</li>
</ol>

No hay conflictos de interés declarado.

El protocolo al que se utiliza CAM-sepharose bolas para investigar la Ca 2 +-dependencia de la CAM-proteínas de unión. Muchas proteínas se unen una webcam en una Ca 2 +-dependiente. Estas interacciones son de gran importancia dada la cantidad de proteínas de unión a CaM y su papel fundamental en muchas vías de señalización. En este protocolo, la CAM-sepharose bolas se utilizan para separar la CaM proteínas de unión a partir de tejido homogeneizado en la presencia o ausencia de Ca 2 +. Lo...

<table border="1"><tr><td> Producto </td><td> Empresa </td><td> Número de catálogo </td><td> Notas </td></tr><tr><td> Calmodulina-Sepharosa cuentas </td><td> GE Healthcare </td><td> 17-0529-01 </td><td></td></tr><tr><td> Anti-alfa CamKII </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> C6974 </td><td></td></tr><tr><td> Anti-neurogranina </td><td> Millipore </td><td> 07-425 </td><td></td></tr><tr><td> Gel Consejos Cargando Pipet </td><td> Pescador </td><td> 02-707-138 </td><td> El uso de la aspiración de sobrenadantes </td></tr><tr><td> Tubos de microcentrífuga (2,0 ml) </td><td> Pescador </td><td> 05-408-146 </td><td> Uso de todos los pasos que involucran la calmodulina-sefarosa cuentas </td></tr></table>

desplegable de proteínas de unión a calmodulina

Pull-down of Calmodulin-binding Proteins

Calcio (Ca 2 +) es un ion fundamental en la regulación de la función celular a través de una variedad de mecanismos. Gran parte de Ca 2 + señalización está mediada por la proteína de unión a calcio se conoce como la calmodulina (CaM) 1,2. CAM está involucrado en múltiples niveles en casi todos los procesos celulares, incluyendo la apoptosis, el metabolismo, la contracción del músculo liso, la plasticidad sináptica, el crecimiento del nervio, la inflamación y la respuesta inmune. Una serie de proteínas ayudan a regular estas vías a través de su interacción con la CAM. Muchas de estas interacciones dependen de la conformación del CAM, que es muy diferente cuando se une a Ca 2 + (Ca 2 +-CaM) en oposición a su Ca 2 +-estado libre (ApoCaM) 3. Aunque la mayoría de las proteínas diana se unen Ca 2 +-CAM, sólo ciertas proteínas se unen a ApoCaM. Algunos CAM se unen a través de su coeficiente intelectual es de dominio, incluyendo neuromodulin 4, neurogranina (Ng) 5, y algunas miosinas <sup&gt; 6. Estas proteínas se ha demostrado que juegan un papel importante en la función presináptica 7, la función postsináptica 8, 9 y la contracción muscular, respectivamente. Su capacidad para unirse y liberación de CAM en la ausencia o presencia de Ca 2 + es fundamental en su función. Por el contrario, muchas proteínas sólo se unen Ca 2 +-CAM y requieren este enlace para su activación. Los ejemplos incluyen la cinasa de la cadena ligera de miosina 10, Ca 2 + / CaM-quinasas dependientes (CaMK) 11 y fosfatasas (por ejemplo, la calcineurina) 12, y espectrina quinasa 13, que tienen una variedad de efectos directos y aguas abajo 14. Los efectos de estas proteínas en la función celular a menudo dependen de su capacidad para unirse a la CAM en una Ca 2 +-dependiente. Por ejemplo, hemos probado la relevancia de Ng-CAM vinculante en la función sináptica y cómo las diferentes mutaciones afectan a esta unión. Hemos generado una estafa GFP-etiquetados Ngestructura con mutaciones específicas en el CI en el dominio que iba a cambiar la capacidad de Ng a unirse una webcam en una Ca 2 +-dependiente. El estudio de estas mutaciones diferentes nos dio una gran comprensión de los procesos importantes que intervienen en la función sináptica 8,15. Sin embargo, en estos estudios, es esencial para demostrar que las proteínas mutadas se espera que la unión a CaM alterado. A continuación, presentamos un método para probar la capacidad de las proteínas que se unen a CAM en la presencia o ausencia de Ca 2 +, con CaMKII y Ng como ejemplos. Este método es una forma de cromatografía de afinidad a que se refiere como una cámara desplegable ensayo. Utiliza CAM-Sepharosa cuentas para poner a prueba las proteínas que se unen a la leva y la influencia de Ca 2 + en este enlace. Es un tiempo considerablemente más eficiente y requiere menos proteína en relación con la cromatografía de columna y otros ensayos. En conjunto, esto proporciona una valiosa herramienta para explorar Ca 2 + / CAM y señalización de las proteínas que, encontrarrestar con la CAM.

Calmodulina (CaM) pull-down de ensayo es una forma efectiva para investigar la interacción de la CAM con varias proteínas. Este método utiliza CAM-sepharose bolas para el análisis eficiente y específica de la CAM-proteínas de unión. Esta es una importante herramienta para explorar la señalización CAM en la función celular.

Desplegable de proteínas de unión a calmodulina

El calcio (Ca2+) es un ion fundamental en la regulación de la función celular a través de diversos mecanismos. Gran parte de la señalización por Ca2+ está mediada por el...

El objetivo general de este procedimiento es probar proteínas que se unen a la calmodulina de manera dependiente del calcio. Esto se logra primero recolectando las proteínas de interés. A continuación, se preparan perlas de calmodulina para la unión de proteínas.Luego, las proteínas se incuban con perlas de calmodulina. Finalmente, se eluyen las proteínas que se unen de manera dependiente del calcio. En última instancia, se pueden obtener resultados que muestran proteínas que se unen a la calmodulina tanto en presencia como en ausencia de calcio mediante análisis por sanguado occidental.La principal ventaja de esta técnica frente a otros métodos existentes, como la cromatografía en calma y la inmunoprecipitación, es que requiere menos proteína y menos tiempo. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo de señalización de la modlina bovina, como qué proteínas se unen a la modlina bovina de manera dependiente del calcio y cómo las modificaciones postraduccionales pueden afectar su unión a la modlina bovina. La demostración visual de este método es fundamental, ya que los pasos de manipulación de las perlas son esenciales y la descripción de la resuspensión y rete

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Investigación

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Biology

Biología

El retículo endoplasmático juega un papel clave en la biogénesis de proteínas y en la homeostasis del calcio. Hemos establecido un sistema experimental que nos permite abordar el papel de los canales de Ca2 + de fugas y para caracterizar sus mecanismos de regulación putativo. Este sistema consiste en el silenciamiento de genes mediada por siRNA y de células vivas imágenes de Ca2 +.

Imágenes en vivo del calcio celular combinado con el silenciamiento de genes mediada por siRNA Identifica Ca 2 + Canales de fugas en la membrana del ER y sus mecanismos de regulación

Transmembrana de la fibrosis quística regulador de la conductancia (CFTR), un canal de cloro del epitelio, se ha informado de interactuar con varias proteínas y regular procesos celulares importantes, entre ellos los CFTR PDZ mediadas por motivo de las interacciones han sido bien documentados. Este protocolo describe los métodos que hemos desarrollado para montar un macromolecular CFTR PDZ-dependiente de señalización...

Análisis in vitro de PDZ-dependientes de complejos macromoleculares de señalización CFTR

Presentamos protocolos para la aplicación de nuestro indicador de calcio codificado genéticamente (GECI) CatchER + para el monitoreo de transitorios rápidos de calcio en el retículo endoplasmático / sarcoplasmático (ER / SR) de HEK293 y células C2C12 de músculo esquelético usando microscopía de fluorescencia en tiempo real. También se discute un protocolo para la medición y calibración in situ K d .

Seguimiento de la liberación de calcio ER / SR con el Ca<sup&gt; 2+</sup&gt; Sensor de Captura<supUnesdoc.unesco.org unesdoc.unesco.org</sup

El ensayo Differential Radial Capillary Action of Ligand Assay (DRaCALA) se puede utilizar para identificar pequeñas proteínas de unión a ligandos de un organismo mediante el uso de una biblioteca ORFeome.

Identificación de las proteínas de unión de pequeños ligandos con la acción capilar radial diferencial del ensayo de ligandos (DRaCALA)

El presente protocolo describe la preparación de muestras y el análisis de datos para cuantificar la fosforilación de proteínas utilizando un ensayo mejorado de extracción de una sola molécula (SiMPull).

Un ensayo optimizado de extracción de una sola molécula para la cuantificación de la fosforilación de proteínas

Aquí, describimos un método para la coexpresión bacteriana de proteínas marcadas diferencialmente utilizando un conjunto de vectores compatibles, seguido de las técnicas convencionales de pulldown para estudiar complejos de proteínas que no pueden ensamblarse in vitro.

Ensayo pulldown junto con coexpresión en células bacterianas como una herramienta eficiente en el tiempo para probar interacciones desafiantes proteína-proteína

Se ha desarrollado un protocolo mejorado para un ensayo de movilización de calcio con células endoteliales, utilizado para identificar ligandos de receptores activados por proteasas (PAR). El nuevo protocolo reduce el tiempo total de ensayo entre 90 y 120 minutos y produce curvas de concentración-respuesta reproducibles.

Caracterización de moduladores de receptores activados por proteasas con un ensayo de movilización de calcio mediante un lector de placas

En este vídeo, se demuestra un método para la separación electroforética de las proteínas usando poli-acrylimide electroforesis en gel (PAGE).

Separación electroforética de las proteínas

Después de la separación por métodos de electroforesis, las proteínas en un gel puede ser detectado por varios métodos de tinción. Tinción de las proteínas con azul de Coomassie, tinción de plata, naranja SYPRO, Ruby SYPRO se muestran en este video.

Tinción de proteínas en geles de

Impresión por microcontacto se utiliza ampliamente a las proteínas de patrones y otras moléculas en las superficies de material. Se demuestra los pasos básicos de este proceso, los patrones de estampación de la fibronectina sobre el cristal.

Microcontacto de impresión de las proteínas de Biología Celular

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Desplegable de proteínas de unión a calmodulina

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