Name: Una unidad motora funcional en la placa de cultivo: Co-cultivo de explantes de la médula espinal y las células musculares (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-04-12T12:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 6 s
Description: Aprende a reproducir una unidad motora funcional in vitro mediante co-cultivo de células musculares humanas primarias con explantes de médula espinal de embriones de rata. Este método permite estudiar la inervación muscular y evaluar fenotipos celulares.

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Nuestro trabajo es apoyado por la Swiss National Science Foundation (SNF), la Iniciativa de Suiza en Biología de Sistemas (SystemsX.ch), la Asociación de Distrofia Muscular EE.UU. (MDA), la Asociación Francesa contra las Miopatías (AFM), la United Mitochondrial Disease Foundation (UMDF), la Fundación Gebert-Ruf Enfermedades Raras Programa (GRF), la Sociedad Suiza para la Investigación de las Enfermedades Musculares (SSEM / FSRMM), el Swiss Life &quot;Jubiläumsstiftung für Medizinische Forschung und Volksgesundheit&quot;, la Roche Fundación para la Investigación y la Universidad de Basilea.

1. Preparación de la primaria la cultura humana de la célula muscular <ol><li> Establecer los cultivos de músculo de células humanas de acuerdo con la técnica de re-explantación-4 explantación. En primer lugar, eliminar los no-tejido muscular de las biopsias. A continuación, incorporar 1 mm 3 explantes de músculo en un coágulo de plasma, lo que permite salir de los fibroblastos para los explantes. </li><li> Los explantes incrustadas se transfieren a un plato recubierto de plasma gelatina y dejarlas crecer en medio de crecimiento normal (MEM suplementado con 25% medio 199, 10% de suero fetal bovino [FBS], 1% de penicilina / estreptomicina, 10 mg / ml de insulina, 10 ng / ml de factor de crecimiento epidérmico humano [EGF], 12,5 ng / ml de factor de crecimiento de fibroblastos humanos [FGF]) en una monocapa. Las células que surgen de los explantes bajo esas condiciones son las células musculares. Estas células continuará creciendo en una monocapa después de la eliminación de los explantes. </li><li> Cultivar las células aneurally en gelatina al 0,1% recubiertos con placas en medio de crecimiento normal. Las células pueden seraneurally cultivaron y se amplifica cuando sea necesario. Es mejor utilizar células del músculo en un paso entre 3 y 8 para realizar los co-cultivos. Es de suma importancia para inervar miotubos jóvenes, después de este punto, los co-cultivos tienen un alto riesgo de fracasar. Además, miotubos no debe ser demasiado grande y demasiado grueso. </li><li> Dos días antes de la inervación está previsto, la placa de las células musculares en placas de 35 mm de cultivo de tejidos (o placas de 6 pocillos) a una densidad de 500.000 células por placa en medio de crecimiento normal. En ese densidad, las células están en la confluencia adecuado para iniciar la fusión en el día siguiente, y la inervación posterior del día después. Utilizando esas condiciones, los miotubos se encuentran en la etapa correcta de la inervación y la contracción de la fibra óptima, por tanto posterior. </li><li> Al día siguiente, reemplazar el medio de crecimiento normal con un medio de fusión compuesta de MEM suplementado con 25% medio 199, 5% de FBS, insulina 10 ug / ml y 1% de penicilina / estreptomicina. </li></ol> 2. Isolati<html> el de la rata explantes embrionarias de la médula espinal Todo el procedimiento para aislar los explantes de médula espinal se realiza bajo un microscopio binocular, en solución salina equilibrada de Hank (HBSS, Gibco / Invitrogen ref 14170) que contiene 10% suero bovino fetal (FBS). <ol><li> Es crucial que los embriones de rata se encuentran entre 13 y 14 de la disfunción eréctil como una etapa de desarrollo diferente pondría en peligro todo el procedimiento. El sacrificio de una mujer embarazada de CO 2 y recoger toda la cadena de embriones en un medio de HBSS. Aislar cada embrión y decapitar a favor de la eutanasia. </li><li> Disecar el cordón espinal de embriones desde el resto del cuerpo de una sola pieza y quitar músculo que rodea y tejido conectivo. Tenga mucho cuidado de mantener los ganglios de raíz dorsal (GRD) conectados a la médula espinal para garantizar la inervación funcional. </li><li> Corte cada médula espinal transversalmente de manera que cada explante contiene al menos 2 DRG unido a él (explantes de 1 mm 3). </li></ol><html> ove_title &quot;&gt; 3. Inervación de las células musculares embrionarias humanas con explantes médula espinal de ratas <ol><li> Eliminar el medio de fusión en el cultivo de células del músculo, dejando una fina capa de medio sobre la monocapa. </li><li> Coloque los explantes con cuidado en la capa de células musculares, cinco explantes uniformemente espaciados por placa de 35 mm. </li><li> Añadir muy lentamente, gota a medio sabio, la fusión en cada explante. Es necesario añadir medio para las células musculares para sobrevivir, pero no demasiado para permitir que los explantes de adherirse primero y hacer contacto con las células. Si el medio no se agrega correctamente (demasiado fuerte o demasiado medio), los explantes se flotará y no podrá inervan las células musculares. </li><li> Una vez que los explantes de empezar a cumplir, arriba del medio de la fusión de 2 ml por placa de 35 mm, y poner los platos con mucho cuidado de nuevo en la incubadora. </li></ol> 4. El mantenimiento de los heterólogos nervio-músculo Co-culturas <ol><li> Cambiar el medio de la fusión dos veces por semana. </li></ol>_title &quot;&gt; 5. Los resultados representativos Tan pronto como dos días después de la inervación, es posible ver las neuritas que salen de cada explante y establecer contactos con las células musculares, representadas por las estructuras como botón-(Fig. 1). Ya en 4-6 días después de la inervación, unos pocos fibras individuales comenzará a contraerse. Las contracciones persistir durante muchos meses, mantiene simplemente cambiando el medio de cultivo dos veces a la semana. Después de aproximadamente 2 semanas, el explante de la médula espinal se degenera, pero la inervación se conserva. Esto es normal. Una fina capa de componente nervio queda en la superficie de la capa de células del músculo. Esta red nervioso es suficiente para mantener la funcionalidad de la unidad de motor. Si los explantes flotar en el medio el día después de inervación, nunca se adherirá. Esto ocurre cuando la capa de células del músculo esno suficientemente confluente, o cuando el medio se añade demasiado áspero. A veces, los explantes se adhiere, pero no saldrá neuritas. Esto es probablemente debido a la falta de DRG adjunto a la misma. En este caso también, la inervación no se establecerá. Manipular los platos con mucho cuidado la primera semana, ya que los explantes todavía se puede separar fácilmente. Para intercambiar los medios de fusión, añadir el líquido gota a gota con una velocidad mínima para evitar el desprendimiento de células. <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/3616/3616fig1.jpg" /> Figura 1. De la médula espinal, las células musculares explantes co-cultivos a partir del día 1 al día 15.

<ol><li>Delaporte, C., Dautreaux, B., Fardeau, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+myotube+differentiation+in+vitro+in+different+culture+conditions%5BTitle%5D)+AND+%22Biol.+Cell%22%5BJournal%5D)">Human myotube differentiation in vitro in different culture conditions.</a> Biol. Cell. 57, 17-22 (1986).</li>
<li>Kobayashi, T., Askanas, V., Engel, W. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+muscle+cultured+in+monolayer+and+cocultured+with+fetal+rat+spinal+cord%3A+importance+of+dorsal+root+ganglia+for+achieving+successful+functional+innervation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Human muscle cultured in monolayer and cocultured with fetal rat spinal cord: importance of dorsal root ganglia for achieving successful functional innervation.</a> J. Neurosci. 7, 3131-3141 (1987).</li>
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<li>Askanas, V., Engel, W. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+program+for+investigating+adult+human+skeletal+muscle+grown+aneurally+in+tissue+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Neurology%22%5BJournal%5D)">A new program for investigating adult human skeletal muscle grown aneurally in tissue culture.</a> Neurology. 25, 58-67 (1975).</li>
<li>Guettier-Sigrist, S., Coupin, G., Warter, J. M., Poindron, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+types+required+to+efficiently+innervate+human+muscle+cells+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Cell+Res%22%5BJournal%5D)">Cell types required to efficiently innervate human muscle cells in vitro.</a> Exp. Cell Res. 259, 204-212 (2000).</li>
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<li>Durbeej, M., Campbell, K. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Muscular+dystrophies+involving+the+dystrophin-glycoprotein+complex%3A+an+overview+of+current+mouse+models%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Muscular dystrophies involving the dystrophin-glycoprotein complex: an overview of current mouse models.</a> 12, 349-361 (2002).</li>
<li>Schnabel, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuroscience%3A+Standard+model%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Neuroscience: Standard model.</a> Nature. 454, 682-685 (2008).</li>
<li>Benatar, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lost+in+translation%3A+treatment+trials+in+the+SOD1+mouse+and+in+human+ALS%5BTitle%5D)+AND+%22Neurobiol.+Dis%22%5BJournal%5D)">Lost in translation: treatment trials in the SOD1 mouse and in human ALS.</a> Neurobiol. Dis. 26, 1-13 (2007).</li>
<li>Dorchies, O. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Normal+innervation+and+differentiation+of+X-linked+myotubular+myopathy+muscle+cells+in+a+nerve-muscle+coculture+system%5BTitle%5D)+AND+%22Neuromuscul.+Disord%22%5BJournal%5D)">Normal innervation and differentiation of X-linked myotubular myopathy muscle cells in a nerve-muscle coculture system.</a> Neuromuscul. Disord. 11, 736-746 (2001).</li>
<li>McFerrin, J., Engel, W. K., Askanas, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impaired+innervation+of+cultured+human+muscle+overexpressing+betaAPP+experimentally+and+genetically%3A+relevance+to+inclusion-body+myopathies%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroreport%22%5BJournal%5D)">Impaired innervation of cultured human muscle overexpressing betaAPP experimentally and genetically: relevance to inclusion-body myopathies.</a> Neuroreport. 9, 3201-3205 (1998).</li>
</ol>

No tenemos nada que revelar.

Una herramienta fisiológica in vitro para estudiar la función de las células musculares en el contexto normal y lo patológico es de mayor interés para los myologists, debido a cultivos de células musculares no suelen recapitular la importancia de las células y las conexiones múltiples de tipo celular. La adición de las neuronas motoras purificadas a las células musculares no es suficiente para lograr una unidad de motor funcional ya que la presencia de células de Schwann se requiere para la inervación para ser ...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nombre de reactivo </td><td> Empresa </td><td> Número de catálogo </td></tr><tr><td> HBSS </td><td> Gibco / Invitrogen </td><td> 14170 </td></tr><tr><td> MEM </td><td> Gibco / Invitrogen </td><td> 31095 </td></tr><tr><td> Medio 199 </td><td> Gibco / Invitrogen </td><td> 31153 </td></tr><tr><td> Suero Bovino Fetal </td><td> Fetal Clone Perbio </td><td> SH30066.03 </td></tr><tr><td> La insulina </td><td> Sigma </td><td> I9278 </td></tr><tr><td> EGF humano </td><td> Sigma </td><td> E9644 </td></tr><tr><td> Humanos FGF </td><td> SiGMA </td><td> F0291 </td></tr><tr><td> La penicilina / estreptomicina solución </td><td> Gibco </td><td> 15140 </td></tr></tbody></table>

una unidad motora funcional en la placa de cultivo: co-cultivo de explantes de la médula espinal y las células musculares

A Functional Motor Unit in the Culture Dish: Co-culture of Spinal Cord Explants and Muscle Cells

Las células musculares primarias cultivaron en monocapa aneurally raramente contraen espontáneamente porque, en ausencia de un componente de nervio, la diferenciación celular y el motor se limita la estimulación de neuronas que falta 1. Estas limitaciones dificultan el estudio in vitro en el de muchas enfermedades neuromusculares en las células musculares cultivadas. Es importante destacar que las limitaciones experimentales de células monocapa, músculo cultivadas pueden ser superados por la inervación funcional de miofibras con explantes de médula espinal en co-cultivos. Aquí, se muestran los diferentes pasos necesarios para lograr una inervación eficiente, adecuada de las células musculares primarios, que conduce a completar la diferenciación y la contracción de fibra de acuerdo con el método desarrollado por Askanas 2. Para ello, las células musculares son co-cultivadas con explantes de la médula espinal de embriones de rata en el ED 13,5, con los ganglios de la raíz dorsal todavía unido a las rebanadas de la médula espinal. Después de unos días, el músculo fibros comenzará a contraerse y, eventualmente, convertirse en la cruz-estriado a través de inervación por neuritas funcionales que se proyectan desde los explantes de la médula espinal que se conectan a las células musculares. Esta estructura puede mantenerse durante muchos meses, simplemente por intercambio regular del medio de cultivo. Las aplicaciones de esta herramienta de valor incalculable son numerosas, ya que representa un modelo funcional para realizar análisis multidisciplinarios de desarrollo de los músculos humanos y la inervación. De hecho, una completa instalación de novo unión neuromuscular se produce en un plato de cultivo, permitiendo una fácil medición de muchos parámetros en cada paso, en un contexto fundamental y fisiológicas. Sólo para citar algunos ejemplos, genómica y / o estudios de proteómica se puede realizar directamente en la co-culturas. Además, los efectos de pre y post-sináptica puede ser específica y se evaluó por separado en la unión neuromuscular, debido a que ambos componentes provienen de diferentes especies,rata y humano, respectivamente. El nervio-músculo co-cultivo también puede realizarse con células musculares humanas aisladas de pacientes que sufren de enfermedades neuromusculares músculo o 3, y por lo tanto puede ser utilizado como una herramienta de detección para los fármacos candidatos. Finalmente, ningún equipo especial, pero una instalación normal BSL2 se necesita para reproducir una unidad de motor funcional en una placa de cultivo. Este método, por lo que es valioso tanto para el músculo, así como las comunidades de investigación neuromusculares para estudios fisiológicos y mecanicista de la función neuromuscular, en un contexto normal y la enfermedad.

Las células cultivadas del músculo son un modelo inadecuado para recapitular músculo inervado<em&gt; En vivo</em&gt;. Una unidad motora funcional puede ser reproducida<em&gt; In vitro</em&gt; Por la inervación de las células humanas diferenciadas musculares primarias, utilizando explantes de embriones de rata de la médula espinal. En este artículo se describe cómo co-cultivos de explantes de la médula espinal y las células musculares se han establecido.

Una unidad motora funcional en la placa de cultivo: Co-cultivo de explantes de la médula espinal y las células musculares

Las células musculares primarias humanas cultivadas de forma aneural en monocapa rara vez se contraen espontáneamente debido a que, ante la ausencia de un componente nervioso, la célula...

El objetivo general de este procedimiento es reproducir una unidad motora funcional in vitro. Esto se logra cultivando células musculares humanas primarias junto con explantes de médula espinal aislados de embriones de rata. Luego, se permite que los implantes de la médula espinal inerven las células musculares humanas manteniendo el explante aún adherido.El cultivo se alimenta cuidadosamente con medio hasta que las células musculares se diferencien completamente. Luego, el fenotipo molecular y/o celular de las células musculares diferenciadas puede evaluarse mediante una selección de herramientas moleculares. La demostración visual de este método es fundamental porque, en primer lugar, es difícil aprender a aislar la médula espinal.Y sobre todo, es necesario ser muy delicado al añadir el medio de cultivo a las células musculares innovadoras. Sacrificar una rata preñada con embriones en estadios comprendidos entre ED 12.5 y ED 13.5.Sea preciso, ya que esta etapa es crucial para todo el procedimiento. Diseque el útero y recoja toda la cadena de embriones en medio HBSS con 10 %FBS bajo un estereoscopio, aísle y decapite cada embrión. Aísle la médula espinal completa y elimine el músculo circundante y el tejido conectivo.Para ello primero, fije los embriones con tijeras microquirúrgicas. Corte una línea en cada lado de la médula espinal y retire cuidadosamente la piel. Luego coloque el embrión de lado y aísle cuidadosamente la médula espinal con el ganglio de la raíz dorsal o DRG aún adherido.La inervación funcional no ocurrirá si los ganglios de la raíz dorsal no permanecen unidos a la médula espinal. La médula espinal es más blanca que el tejido conectivo y el músculo rosa circundantes. Retire cuidadosamente los tejidos circundantes sin perturbar los ganglios de la raíz dorsal.Una vez aislada, utilice la aguja de una microjeringa para seccionar transversalmente cada médula espinal en cubos que incluyan al menos dos ganglios de la raíz dorsal (GRD) adheridos. Estos fragmentos tendrán aproximadamente un milímetro cúbico y ya están listos para ser cultivados conjuntamente con una cultura estándar de células musculares humanas. Este protocolo requiere que las células musculares humanas se cultiven a partir de biopsias de tejido.Consulte el protocolo escrito para obtener detalles sobre este procedimiento. Comience por eliminar el medio de fusión del cultivo de células musculares, dejando una fina capa de medio sobre la monocapa. A continuación, coloque cuidadosamente el x explan sobre la célula muscular.Se pueden colocar cinco explantes X espaciados uniformemente en cada placa de 35 milímetros. Añada lentamente el medio de fusión sobre cada explante X gota a gota. No añada el medio de fusión demasiado rápido ni en exceso de volumen.De lo contrario, los explantes x flotarán y no lograrán inervar las células musculares. Luego, coloque con mucho cuidado las placas de nuevo en el incubador. Continúe agregando medio lentamente.Cuando se manipulan con cuidado, los explantes x dejarán de flotar en el medio y se adherirán a las células en aproximadamente una hora. Una vez adheridos, aumente el volumen del medio de fusión a dos mililitros por placa de 35 milímetros. Si después de esperar toda la noche los explantes X aún flotan en el medio, es posible que la capa de células musculares no fuera lo suficientemente confluyente o que se hubiera agregado el medio.Dos, aproximadamente. Estas explicaciones X nunca se adherirán dos veces por semana. Cambie todos los medios de fusión gota a gota muy lentamente para evitar la desprendimiento celular.Los X explan son bastante frágiles durante la primera semana y pueden desprenderse fácilmente. Esta es una técnica muy útil porque después de la innovación, simplemente midiendo o recolectando el medio de cultivo, se puede medir el ome de los co-cultivos. Y si se seleccionan cuidadosamente las herramientas moleculares, se puede diferenciar lo que proviene del músculo de lo que proviene del nervio.Dos días después, los neuritos de inervación emergen de cada explante y establecen contactos con las células musculares representadas por estructuras similares a botones. Cuando los neuritos no emergen, la inervación probablemente fallará debido a la falta de adhesión de los ganglios de la raíz dorsal (DRG). Entre cuatro y seis días después de la inervación, algunas fibras individuales comenzaron a contraerse.Las contracciones persistieron durante muchos meses, manteniéndose simplemente mediante el cambio del medio de cultivo dos veces por semana. Después de aproximadamente dos semanas, como era de esperar, los explantes de médula espinal degeneraron por sí mismos, pero las inervaciones se conservaron. Una fina capa de componentes nerviosos permaneció en la superficie de la capa de células musculares, y esta red nerviosa fue suficiente para mantener la funcionalidad de la unidad motora.Una de las grandes ventajas de esta técnica es la posibilidad de tomar muestras de pacientes y medir o comparar el fenotipo de los cultivos co-cultivados entre la muestra de control y la del paciente. Y siguiendo este procedimiento, se pueden utilizar técnicas clásicas muy comunes como PCR en tiempo real, inmunohistoquímica tipo Western blot, e incluso estudiar el fenotipo muscular o nervioso de los cultivos en disco.

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Investigación

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Neurociencia

El micro-disección técnica de explantes es un método robusto y fiable para el aislamiento de proliferación células del músculo esquelético de los músculos menores, adultas o embrionarias como fuente de células madre de músculo esquelético. Excepcionalmente, estas células han sido derivadas por clonación para producir músculo esquelético líneas de células madre utilizadas en el trasplante de vivo.

Adultas y embrionarias del músculo esquelético Cultura Microexplant y aislamiento de células madre de músculo esquelético

Una forma alternativa de aislar a las neuronas motoras de embriones de ratón de la médula espinal se describe. El método tiene en cuenta el hecho de que las lectinas pueden unirse a los nervios de baja afinidad p75NTR receptor del factor de crecimiento. Esta lectina preplating basado permite una purificación similar a la que con un anticuerpo específico contra el p75NTR.

Lectina basado en Aislamiento y cultivo de motoneuronas embrionarias de ratón

Demostramos cómo diseccionar y la cultura de pollo ganglio statoacoustic E4 y E6 explantes de la médula espinal. Los explantes se cultivaron en condiciones libres de suero en geles de colágeno en 3D durante 24 horas. La capacidad de respuesta neuritas se prueba con el factor de crecimiento medio suplementado y con recubrimiento de proteínas cuentas.

La disección del ganglio y Cultura polluelo Statoacoustic y explantes médula espinal en geles de colágeno para ensayos neurite

Tejido muscular Engineered tiene un gran potencial en medicina regenerativa, como modelo de la enfermedad y también como una fuente alternativa para la carne. Aquí se describe la ingeniería de una construcción de músculo, en este caso a partir de células progenitoras de mioblastos de ratón y la estimulación por impulsos eléctricos.

Los tejidos de ingeniería músculo esquelético de células mioblastos murinos progenitoras y aplicación de estimulación eléctrica

Cultivos de cortes de facilitar la manipulación del gen por el desarrollo del embrión y las perturbaciones farmacológicos. Sin embargo, las condiciones de cultivo deben garantizar que el desarrollo normal puede proceder en el entorno reducido de la rebanada. Se ilustra un protocolo que facilita el desarrollo normal de la médula espinal para continuar durante al menos 24 h.

Embriones de pollo de la Médula Espinal Slice Cultura Protocolo

Aquí se presenta un protocolo que se basa en rebanadas de la médula espinal cultivadas en matrices de electrodos múltiples para estudiar la regeneración funcional de conexiones propioespinal in vitro.

La investigación de la regeneración funcional en organotípicos médula espinal Co-culturas cultivadas en Arrays Multi-electrodos

El transporte axonal es un mecanismo crucial para la salud de las neuronas motoras. En este protocolo proporcionamos un método detallado para el seguimiento del transporte axonal de compartimentos ácidos y mitocondrias en axons de neuronas motoras utilizando cámaras microfluídicas.

Transporte axónico de organelos en cultivos de neuronas motoras utilizando el sistema de cámaras microfluídicas

En este protocolo se describe un método de cultivo y análisis funcional in vitro para células madre musculares, que conserva la mayoría de sus interacciones con su nicho endógeno.

Ensayo único de cultivo de Myofiber para la evaluación de la funcionalidad de las células madre musculares adultas ex vivo

Este manuscrito describe un protocolo detallado para producir matrices de microtejidos 3D del músculo esquelético humano y ensayos de función in situ mínimamente invasivos aguas abajo, incluidos análisis de fuerza contráctil y manejo de calcio.

Evaluación de las métricas funcionales de la salud del músculo esquelético en microtejidos del músculo esquelético humano

Describimos un método para generar unidades motoras humanas en dispositivos microfluídicos disponibles comercialmente mediante el cocultivo de neuronas motoras derivadas de células madre pluripotentes inducidas por humanos con miotubos derivados de mesoangioblastos primarios humanos, lo que resulta en la formación de uniones neuromusculares funcionalmente activas.

Generación de Unidades Motoras Humanas con Uniones Neuromusculares Funcionales en Dispositivos Microfluídicos

Aprende a reproducir una unidad motora funcional in vitro mediante co-cultivo de células musculares humanas primarias con explantes de médula espinal de embriones de rata. Este método permite estudiar la inervación muscular y evaluar fenotipos celulares.

Una unidad motora funcional en la placa de cultivo: Co-cultivo de explantes de la médula espinal y las células musculares

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