Name: En electroporación in ovo en la retina de embriones de pollo (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-02-05T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 15 s
Description: Aprende la técnica de inyección retiniana dirigida y electroporación in ovo en embriones de pollo de día 4 para estudiar la expresión génica y el desarrollo de la retina. Este método permite visualizar tipos celulares a nivel individual.

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Nos gustaría dar las gracias al Sr. Enver Maaz para el uso de su cámara de alta definición (Cannon VIXIA HFS100). Este trabajo fue apoyado en parte por subvenciones de NIH (EY018738), Nueva Jersey Comisión de Investigación de la Médula Espinal (08-3074-SCR-E-0 y 10-3091-SCR-0-E), y Busch Premio de Investigación Biomédica.

Dado que algunas partes del protocolo se realizó tal como se ha descrito previamente en otros vídeos JOVE 2 y 3 papeles con modificación menor no vamos a discutir aquellos en detalle aquí. 1. Manejo de los huevos y preparación de la aguja <ol><li> Los huevos pueden ser almacenados en un enfriador de vino menos aproximadamente 13 ° C hasta por 1 semana. Si la temperatura es demasiado alta, los embriones comienzan a desarrollarse anormalmente, mientras que una temperatura más baja provoca una alta mortalidad. Una vez que esté listo para incubar sacar los huevos del refrigerador para vinos y establecer los huevos en posición vertical con el extremo más arriba. Mantenga los huevos en la temperatura ambiente durante al menos 2 horas antes de ponerlos en la incubadora de 37,5 ° C. </li><li> Se incuban los huevos para 96-100 horas, que es alrededor del día 4 de embriones para obtener embriones que se encuentran en el Hamburger y Hamilton 22 etapa de 4-5. </li><li> Preparar agujas micropipeta de tubos de vidrio tirados capilar y romper la punta de disección bajo un microalcance con unas pinzas para obtener una apertura de la punta alrededor de 0,1 m de diámetro y un cono de 20 mm. Agujas con puntas más grandes tienen dificultades para atravesar la membrana vitelina mientras que los más consejos tienen dificultades para la carga y la entrega de la solución de ADN. </li><li> Coloque la aguja en un 0,1 ml jeringa Hamilton estanca montado en un micromanipulador. Use un pequeño trozo de tubo de silicona Masterplex para fijar la aguja a la jeringa. Dado que las conexiones estén bien ajustadas sin necesidad de añadir aceite mineral para sellar esta unión. </li><li> Mezclar 2 l de solución de ADN plásmido reportero con una concentración que oscila 3-6 ug / l y 0,2 l de verde rápido (0,025%) en un trozo de Parafilm. Fast tinte verde le ayudará a visualizar la inyección. Poco a poco, la carga de la aguja con la mezcla. </li><li> Para liberar la membrana vitelina de la membrana interna del huevo gire suavemente alrededor de 180 ° y espere algunos minutos y lo gira a la posición original y lo puso para la electroporación. </li><li> Limpie el forzamientoeps y la cáscara de huevo con el 70% de etanol para evitar la infección del embrión. </li><li> Hacer un pequeño agujero en el huevo inmediatamente por encima de la celda de aire con un par de fórceps de tamaño AA. Tenga cuidado de no romper la cáscara del huevo. Retire los trozos pequeños de uno en uno para hacer una pequeña ventana. Retire con cuidado la membrana interna utilizando las pinzas sin tocar la membrana vitelina. </li></ol> 2. Inyección y electroporación <ol><li> Para evitar daños en el cerebro o el corazón, la posición de la contraindicado aguja lateral al paquete principal de los vasos sanguíneos que entran en el ojo y apuntando hacia el pico. </li><li> Pierce a través de la membrana vitelina, la esclera, la retina y el humor vítreo por un súbito empujón suave de la aguja. Si la aguja perfora a través del otro extremo del ojo debe estar bien a menos que daña cualquier vena sanguíneo importante. </li><li> Lentamente tire hacia atrás la aguja en el borde de la abertura y colocarlo casi tangente a la pared externa del globo ocular. </li><li> Insert de la aguja en el espacio sub retiniana entre la esclerótica y la retina. </li><li> Inyectar el ADN hasta que se pueda visualizar la solución de verde de llenado del lado del globo ocular y empujar hacia adentro la retina mediante la creación de un bulto. </li><li> Si su colocación de la aguja no es correcta, entonces podrás ver la solución de ADN propagación en el interior del humor vítreo de llenado por el centro del globo ocular. Además, si se daña la retina demasiado, entonces podrás ver la solución de ADN sale del globo ocular. </li><li> Lentamente retire la aguja y de inmediato colocar los electrodos en paralelo dentro del huevo después de la inmersión en PBS. Empuje hacia abajo los electrodos a sumergirse en el líquido amniótico de una manera para que el ojo inyectado se encuentra entre los electrodos. Evite tocar cualquier vaso sanguíneo principal o el corazón con los electrodos mientras que colocarlas. El electrodo negativo debe estar en el lado de la inyección para que el ADN puede ser transportado desde el espacio sub retinal en la retina hacia el electrodo positivo. Electroporado la retina con 5 pulsos de 15 V para 50 ms, con intervalos de 950 ms. </li><li> Retire con cuidado los electrodos y sellar la ventana del huevo con trozos de cinta adhesiva transparente. </li><li> Etiqueta y la fecha del huevo inyectada antes de volver a la incubadora. Normalmente, se tarda alrededor de 3 a 5 minutos para completar el proceso de electroporación conjunto. </li><li> La expresión de GFP puede ser visto como temprano como 8 horas después de la electroporación. Sin embargo, usted puede esperar hasta que el embrión alcanza el punto deseado antes de la cosecha. </li></ol> 3. Los resultados representativos En nuestro estudio, utilizamos diversas construcciones de plásmidos para estudiar la regulación de la expresión de genes que participan el desarrollo de células de la retina. En este vídeo pCAG-GFP (control de transfección) se utilizó para seguir una inyección exitosa y electroporación. Sin embargo, cualquier constructo plásmido con el gen reportero (GFP, RFP etc) se puede utilizar. A pesar de que la expresión de GFP puede ser visto como a las 8 horas después del elementoctroporation, que suelen comenzar la recolección del huevo en el día 6 (E6) y en adelante. Electroporated retinas fueron disecados del embrión y se analizaron bajo el microscopio de disección fluorescente antes de inclusión y corte. Típicamente, reportero de la expresión génica puede ser visto por lo menos en una cuarta parte de la retina después de una exitosa electroporación (Fig. 1). Los tejidos de la retina transfectadas fueron analizados a través de seccionamiento para una visualización clara de la morfología celular. La inmunohistoquímica con marcadores de células específicas del tipo (Brn3a, Pax6 etc) permite la caracterización de la expresión de GFP específico de las células (Fig. 2). <img src="/files/ftp_upload/3792/3792fig1.jpg" align="Figure 1" /> Figura 1. El éxito de la electroporación de expresión reportero GFP resultados positivos plásmido. Embriones de pollo retinas fueron inyectados y electroporated en el día embrionario 4 y cosechadas en el día embrionario 6. Al menos el 25% de la retina se transfectadas con éxito (Un punto de vista = Arriba, B= Vista desde abajo). Barra de escala = 1 mm. <img src="/files/ftp_upload/3792/3792fig2.jpg" align="Figure 2" /> Figura 2. Caracterización de las buenas prácticas agrarias expresando células de la retina mediante inmunohistoquímica. GFP expresando tejidos retina en la etapa de E7 se fija y se secciona. Estas secciones fueron teñidas con marcadores específicos de células diferentes. Brn3a se utilizó para determinar las células ganglionares (A) mientras Pax6 se utilizó para determinar amacrinas horizontal, y las células ganglionares (B). Barra de escala = 50 micras.

<ol><li>Doh, S. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+retinal+cell+development+in+chick+embryo+by+immunohistochemistry+and+in+ovo+electroporation+techniques%5BTitle%5D)+AND+%22BMC.+Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Analysis of retinal cell development in chick embryo by immunohistochemistry and in ovo electroporation techniques.</a> BMC. Dev. Biol. 10, (2010).</li>
<li>Blank, M. C., Chizhikov, V., Millen, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+Ovo+Electroporations+of+HH+Stage+10+Chicken+Embryos%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">In Ovo Electroporations of HH Stage 10 Chicken Embryos.</a> J. Vis. Exp. (9), e408-e408 (2007).</li>
<li>Nakamura, H., Funahashi, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Introduction+of+DNA+into+chick+embryos+by+in+ovo+electroporation%5BTitle%5D)+AND+%22Methods%22%5BJournal%5D)">Introduction of DNA into chick embryos by in ovo electroporation.</a> Methods. 24, 43-48 (2001).</li>
<li>Hamburger, V., Hamilton, H. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+series+of+normal+stages+in+the+development+of+the+chick+embryo.+1951%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Dyn.%22%5BJournal%5D)">A series of normal stages in the development of the chick embryo. 1951.</a> Dev. Dyn.. 195, 231-272 (1992).</li>
<li>Hamburger, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+stage+series+of+the+chick+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Dyn%22%5BJournal%5D)">The stage series of the chick embryo.</a> Dev. Dyn. 195, 273-275 (1992).</li>
</ol>

Todos los experimentos con animales fueron aprobados por el animal de Atención Institucional y el Comité de Servicios de la Universidad Rutgers.

Dirigida por inyección en la retina y la electroporación in ovo en la retina de embrión en la etapa E4 pueden dirigirse específicamente a las células retinianas progenitoras derivadas de la capacidad de visualizar todos los seis tipos principales de células de retina en el nivel de células individuales. En la electroporación in ovo en HH10 (~ E1.5) centradas en la vesícula óptica es capaz de transfectar células que se desarrollan para formar el ojo. Sin embargo, estas células tienen u...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nombre del reactivo </td><td> Empresa </td><td> Número de catálogo </td><td> Comentarios </td></tr><tr><td> Fertilizados libres de patógenos (SPF) White Leghorn huevos de gallina </td><td> Granjas de Sunrise (Catskill, Nueva York) </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Incubadora de huevo de gallina </td><td> MAC es la fabricación, Savannah, GA </td><td> Modelo-1550 </td><td> Se establece en 60% de humedad y 37.5 ° C. </td></tr><tr><td> Vidrio capilares tubos </td><td> World Precision Instrument Inc. </td><td> TW150F-4 </td><td></td></tr><tr><td> 0,1 ml jeringa </td><td> Hamilton Co. Reno, Nevada </td><td> Estanca entre 1710 </td><td> Alternativamente jeringa 1ml puede ser utilizado como así </td></tr><tr><td> Masterflex de silicona (peróxido) Tubería </td><td> Cole-Parmer </td><td> HV-96400-13 </td&gt; <td> Corte un pedazo pequeño (1 cm) para fijar la aguja de cristal a la jeringa </td></tr><tr><td> Pinzas </td><td> Dumont </td><td> AA </td><td></td></tr><tr><td> Micromanipulador </td><td> World Precision Instrument Inc. </td><td> M3301-M3 </td><td></td></tr><tr><td> El ADN del plásmido </td><td></td><td></td><td> pCAG-GFP fue tomado de la Dra. Connie Cepko </td></tr><tr><td> Fast Green FCF </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> F7252 </td><td> Diluir a 0,025% con PBS </td></tr><tr><td> Generador de impulsos </td><td> Aparato de Harvard, MA </td><td> BTX ECM 830 </td><td> Generador de onda cuadrada </td></tr><tr><td> Electrodos </td><td> Aparato de Harvard, MA </td><td> BTX Modelo 514 </td><td> Nuestros electrodos estaban separados 3-5 mm de distancia </td></tr><tr><td> Cámara digital blanco y negro </td><td> Zeiss, Alemania </td><td> Axiocam MRM </td><td></td></tr><tr><td> Microscopio de disección fluorescente </td><td> Leica Microsystems, Alemania </td><td> Leica MZ16FA </td><td></td></tr><tr><td> Microscopio de fluorescencia vertical </td><td> Zeiss, Alemania </td><td> Zeiss Axio Imager A1 </td><td></td></tr></tbody></table>

en electroporación in ovo en la retina de embriones de pollo

In Ovo Electroporation in Embryonic Chick Retina

La retina embrionaria de pollo es una excelente herramienta para estudiar el desarrollo de la retina en los vertebrados superiores. Debido al enorme tamaño y desarrollo externo, es comparativamente muy fácil de manipular la retina de embriones de pollo con ADN recombinante / tecnología de ARN. La electroporación de ADN / ARN construcciones dentro de la retina embrionaria tienen una gran ventaja para estudiar la regulación de genes en la retina células madre / progenitoras durante el desarrollo de la retina. Diferentes tipos de ensayos tales como la prueba del gen, la sobre-expresión del gen, el gen tumbar (shRNA), etc se puede realizar utilizando la técnica de electroporación. Este video muestra la inyección dirigida la retina y en la electroporación in ovo en la retina de embriones de pollo en el Hamburger y Hamilton etapa de 22-23, que es aproximadamente el día embrionario 4 (E4). Aquí nos muestran un rápido y conveniente en la técnica de electroporación in ovo por el cual un plásmido de ADN que expresa la proteína verde fluorescente (GFP) como marcador se entregarán directamente en elde embriones de pollo subretiniano espacio y seguido por pulsos eléctricos para facilitar la absorción de ADN por la retina células madre / progenitoras. El nuevo método de inyección de retina y la electroporación en E4 permite la visualización de todos los tipos de células retinales, incluyendo la neuronas tarde-nacido en 1, que ha sido difícil con el método convencional de inyección y la electroporación en E1.5 2.

El objetivo general de este video es mostrar cómo llevar a cabo la inyección específica de retina y<em&gt; In ovo</em&gt; Electroporación de ADN / ARN construcciones en la retina de embriones de pollo en el Hamburger y la etapa de Hamilton 22-23, que es aproximadamente el día embrionario 4 (E4). Esta técnica es muy útil para estudiar la expresión génica, la regulación de genes, y el cambio morfológico en el desarrollo de retina de pollo.

En electroporación in ovo en la retina de embriones de pollo

La retina embrionaria de pollo es una herramienta excelente para estudiar el desarrollo retiniano en vertebrados superiores. Debido a su gran tamaño y a su desarrollo externo, es...

Hola, soy Mohammed Islam. Soy estudiante de posgrado en el laboratorio de la Dra. Lee en el Departamento de Ingeniería Biomédica de la Universidad Rutger. Hoy les mostraré cómo realizar una inyección retiniana dirigida y la electroforesis in vivo.En el embrión de chi, se injertará la retina embrionaria de pollo en la etapa del día embrionario cuatro, que es aproximadamente 96 horas después de la inflamación. Esta técnica se considera un método novedoso para el estudio del desarrollo retiniano. Este método se dirige específicamente a las células progenitoras retinianas, lo que permite visualizar todos los tipos celulares retinianos a nivel de célula individual.También puede aplicarse en estudios de ganancia o pérdida de función, en los que un gen de interés puede ser objeto de estudio en el desarrollo normal o en enfermedades de la retina. X puede almacenarse en un refrigerador para vino a aproximadamente 13 grados C durante hasta una semana. Si la temperatura es demasiado alta, los embriones comenzarán a desarrollarse de manera anormal, mientras que una temperatura más baja provoca una alta mortalidad.Una vez que esté listo para la incubación, saque los huevos del enfriador de vino y colóquelos verticalmente con el extremo más grande hacia arriba. Mantenga los huevos a temperatura ambiente durante al menos dos horas antes de colocarlos en el incubador Gcel Yes a 37.5 °C. Incube los huevos durante aproximadamente 96 horas, lo que equivale al Día Embrionario cuatro.Para obtener embriones en la etapa 22 de Hamburger y Hamilton, prepare agujas de micropipeta PP a partir de tubos capilares de vidrio agrupados y rompa la punta bajo un microscopio estereoscópico con pinzas para obtener una abertura de aproximadamente 0,1 micrómetro de diámetro y una zona cónica de dos milímetros. Las agujas con puntas más grandes tienen dificultad para atravesar la membrana vitelina, mientras que las puntas más pequeñas tienen dificultad para cargar y administrar la solución de ADN. Fije la aguja a una jeringa gástrica Hamilton montada en un micromanipulador.Utilice un pequeño trozo de tubo de silicona plex maestra para conectar la aguja con la jeringa. Dado que las conexiones están aseguradas, no es necesario añadir aceite mineral. Para sellar esta unión, mezcle dos microlitros de solución de ADN del plásmido reportero con una concentración que oscile entre tres y seis microgramos por microlitro y 0,2 microlitros de verde rápido; el colorante verde rápido periférico ayudará a visualizar la inyección. Cargue lentamente la aguja con la mezcla para liberar la membrana vital de la membrana interna. Gire suavemente el huevo aproximadamente 180 grados y espere unos minutos.Luego, gírelo de vuelta a la posición original y colóquelo para la electroforesis. Limpie las pinzas y la cáscara del huevo con etanol al 70 % para evitar infecciones al embrión. Haga un pequeño orificio en el huevo inmediatamente encima de la cámara de aire con un par de pinzas.Tenga cuidado de no agrietar la cáscara del huevo. Retire piezas pequeñas una a la vez para hacer una abertura pequeña. Retire cuidadosamente la membrana interna usando la pinza sin tocar la membrana vital, para prevenir daños en el cerebro o en el corazón.Coloque la aguja contralateral al haz principal de vasos sanguíneos que entran en el ojo, como indica la flecha y apuntando hacia el pico. Perfore la membrana vital, la esclerótica, la retina y el humor vítreo. Con un empujón repentino de la aguja, si esta atraviesa el otro extremo del ojo, debería estar bien, siempre que no dañe ninguna vena sanguínea importante.Retire lentamente la aguja en el borde de la abertura y colóquela casi tangente a la pared externa del globo ocular. Introduzca la aguja en el espacio subretiniano entre la esclerótica y la retina. Inyecte el ADN hasta que pueda visualizar la solución verde, llenando un lado del globo ocular y empujando la retina hacia adentro al crear una protuberancia.Aquí hay otro buen ejemplo de una inyección exitosa con formación de una protuberancia, y se ilustra en este diagrama. Si la colocación de su aguja no fue correcta, entonces verá que la solución de ADN se está extendiendo dentro del humor vítreo, llenando el centro del globo ocular. Además, si daña demasiado la retina, verá que la solución de ADN está saliendo del globo ocular.Retire lentamente la aguja y coloque inmediatamente los electrodos en paralelo dentro del huevo. Después de remojarlos en PBS, presione los electrodos hacia abajo para sumergirlos en el líquido amniótico, de modo que el ojo inyectado quede situado entre los electrodos. Evite tocar cualquier vena sanguínea importante o el corazón con los electrodos durante su colocación.Los electrodos negativos deben colocarse en el sitio de inyección para que el ADN pueda ser transportado desde el espacio subretiniano hacia la retina en dirección al electrodo positivo. Electrocutar la retina con cinco pulsos de 15 voltios durante 50 milisegundos con intervalos de 950 milisegundos. Retire cuidadosamente los electrodos y selle la ventana del huevo con trozos de cinta adhesiva transparente, etiquete y feche el huevo inyectado antes de devolverlo al incubador.Normalmente, se tardan entre tres y cinco minutos en completar todo el proceso de electrooperación. La expresión de GFP puede observarse tan pronto como ocho horas después de la electrooperación. Sin embargo, puede esperarse hasta que el embrión alcance el estado deseado antes de recolectar el huevo.Espero que este video haya sido útil para realizar su propio experimento. Gracias por verlo.

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Investigación

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Biología

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