Name: Microfluídica endotelizado para estudiar las interacciones microvasculares en Enfermedades Hematológicas (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-06-22T12:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 8 s
Description: Aprende a crear dispositivos microfluídicos con monocapas de células endoteliales para estudiar interacciones celulares en enfermedades hematológicas. Este método permite controlar condiciones biológicas y biofísicas con precisión.

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Damos las gracias a T. Hunt, M. Rosenbluth, y el Laboratorio de Lam por sus consejos y discusiones útiles. Queremos agradecer el apoyo de G. Spinner y el Instituto de Electrónica y Nanotecnología en el Instituto de Tecnología de Georgia. El apoyo financiero para este trabajo fue proporcionado por una subvención del NIH K08-HL093360, premio UCSF REAC, un Centro de Desarrollo de Nanomedicina NIH Premio PN2EY018244, y la financiación del Centro para la Biología de las células endoteliales de la Salud de los Niños de Atlanta.

1. La fabricación de la Microdevice endotelial <ol><li> Crear una fotomáscara mediante la presentación de un equipo de diseño asistido (CAD) de dibujo del dispositivo de microfluidos a un vendedor de la máscara exterior. La máscara utilizada estaba compuesta de una capa de cromo sobre vidrio de sosa y cal. En este caso la anchura del canal de microfluidos fue de 30 micras. </li><li> Limpiar una oblea de silicio al descubierto con piraña (10:1 relación de ácido sulfúrico y peróxido de hidrógeno) durante 15 minutos y sumergir en ácido fluorhídrico durante 30 segundos. Enjuague con agua desionizada (DI) de agua durante aproximadamente 10 segundos. </li><li> Usando una revestidora de giro, giro Microchem SU-8 2025 fotorresistente sobre la oblea a una altura de 30 micras. Por SU-8 2025, una velocidad de centrifugado de 3000 rpm se recomienda. Las otras viscosidades de SU-8 están disponibles, que alcanzará esta altura. Las instrucciones completas para el uso de SU-8 están disponibles en <a href="http://www.microchem.com" target="_blank">www.microchem.com</a> </li><li> Colocar la oblea con SU-8 sobre una placa caliente a 95 ° C durante5 minutos para eliminar el exceso de solvente. Nota: Un horno se seque la oblea diferente a una zona de cocción y no es recomendable. </li><li> Coloque una máscara con la forma característica deseada sobre la oblea, y exponer a la luz UV (160 mJ / cm 2 medido a 365 nm) en un alineador de máscara (Karl Suss, MA-6). Esta cruz une el fotoresist. </li><li> Colocar la oblea de nuevo en una placa caliente a 95 ° C durante 5 minutos adicionales para acelerar aún más la polimerización de SU-8. </li><li> Sumergir la oblea en SU-8 Desarrollador, compuesto principalmente de PGMEA (propileno glicol metil éter acetato) durante 4 minutos para eliminar la no reticulado SU-8. </li><li> Enjuague la oblea de nuevo desarrollo con 100% de alcohol isopropílico (IPA) durante 10 s. La oblea se puede secar con nitrógeno a presión o al permitir que el disolvente se evapore de la oblea en una campana de humos limpia durante varios minutos. </li><li> Cinta de los bordes de la oblea en seco con estampado SU-8 en una placa de Petri para preventilar el movimiento. </li><li> Aplicar 1 ml de Sigmacote a la oblea usando una pipeta, cubrir con la parte superior de la placa de Petri, y la oblea remolino para asegurar el revestimiento completo de la oblea, quitar la tapa, y permitir que la oblea que se seque durante varios minutos hasta que todo el disolvente se ha evaporado. </li></ol> 2. PDMS (polidimetilsiloxano) Preparación <ol><li> Mezcla PDMS polímero y el agente de curado en una proporción 10:1 (w / w) y eliminar las burbujas de aire utilizando un desecador de vacío. La longitud de tiempo necesario para desgasificar el PDMS varía en la fuerza del sistema de vacío disponible, pero normalmente oscila entre varios minutos a una hora. Para un plato de petri seis pulgadas sin previamente vertió PDMS, un volumen total de 60 ml de polímero se recomienda. </li><li> Verter la mezcla sobre la oblea, aproximadamente 5 mm de espesor. También se vierte en un plato de fondo plano para crear una lámina delgada de PDMS, aproximadamente 1 mm de espesor. Curación a 60 ° C en un horno durante la noche. </li><li> Con un cuchillo o un bisturí, cortar alrededor de la cured dispositivo de PDMS y sacarlo de la oblea. Además, cortar una hoja delgada de PDMS ligeramente mayor que el dispositivo. </li><li> Crear orificios de entrada y salida en el dispositivo de PDMS utilizando un perforador 1,0 mm. Esto puede lograrse utilizando un tornillo de banco pasador, dispositivo de Harris Uni-Core, o similar. </li><li> Limpie las superficies del dispositivo y la lámina con cinta adhesiva. </li><li> El uso de un limpiador de plasma, exponer las superficies del dispositivo PDMS y PDMS hoja de plasma de oxígeno durante 30 s. El plasma de oxígeno crea especies reactivas en la superficie expuesta del PDMS que enlace cuando se pone en contacto físico. </li><li> Conectar más pequeño tubo a una pequeña longitud (varios centímetros) de tubo grande, que a su vez está conectado a una jeringa con una aguja roma de punto, lleno de 50 mg / ml de fibronectina de plasma humano en PBS. El tubo y la aguja están dimensionados de tal manera que un ajuste de fricción se crea entre la tubería. Insertar más pequeño tubo en la entrada de PDMS y una microdispositivoplique presión a la jeringa para llenar los canales completamente con la solución de fibronectina y para crear una pequeña gota 100 l en el puerto de salida, para asegurar que los canales de permanecer húmedo. Incubar el dispositivo a 37 ° C durante 40-60 minutos. </li><li> Conecte una jeringa llena con PBS fresco a la aguja de punta roma. Aplicar presión a la jeringa para enjuagar el dispositivo con PBS. </li></ol> 3. Sembrando el dispositivo de microfluidos con las células endoteliales <ol><li> Preparar 1.000.000 células / ml de células humanas endoteliales de vena umbilical (HUVEC) en medios de crecimiento endoteliales con 8% de dextrano. Una gama de 500.000 a 2.000.000 células por mL ha sido utilizado con éxito. La adición de dextrano al medio de carga de células aumenta la viscosidad del fluido, lo que disminuye la velocidad de las células endoteliales al entrar en el sistema de microfluidos fibronectina recubierto. Esto, a su vez, aumenta la probabilidad de que las células se adhiere y la cultura con éxito dentro de la microdispositivo. </li><li> Conecte la nueva jeringa y el tubo como en el paso 2.7. pero con un tubo más largo (aproximadamente 1 metro de longitud). </li><li> Para optimizar el rendimiento de este sistema, es crítico en este punto para evitar cualquier fuga o burbujas en el sistema de perfusión entero; cualquier fuga de la solución o la presencia de burbujas en los medios va a cambiar el flujo y evitar la siembra con éxito de células endoteliales. Por lo tanto, ajustada de la tubería es esencial para eliminar las fugas entre las conexiones. Las burbujas en la jeringa y / o el tubo debe ser eliminada antes de células se introducen en el microdispositivo y el sistema de perfusión completa debe ser cebado con la solución de células antes de conectar el tubo a la microfluidos para evitar la introducción de burbujas de aire. </li><li> Utilizando una bomba de jeringa, infundir suspensión de células en el dispositivo de PDMS en velocidad de flujo volumétrico de 1,23 l / min durante 2 horas a 37 ° C y 5% de CO 2. Los resultados óptimos se logran cuando la bomba de jeringa estaba en el<html> misma altura que el dispositivo de PDMS. Para la entrada, el tubo más largo, que puede ser enrollada dentro de la incubadora, asegura que las células y los medios están adecuadamente calentado antes de entrar en contacto con el dispositivo. En nuestro sistema, la velocidad de flujo volumétrico de 1,23 l / min se aproxima a una velocidad medio de la corriente de ~ 1 mm / s en los más pequeños microcanales, correspondientes a una tensión de cizallamiento de ~ 1 dinas / cm 2 en aquellos canales que utilizan la sangre entera. </li><li> Usando la bomba misma jeringa y el tubo largo, perfunden medio de crecimiento fresco durante 2-8 días a razón de 1,23 l / min. Un dispositivo exitoso tendrá una monocapa de células endoteliales que crecen en el interior del dispositivo dentro de 24-48 horas. Experimentos previos han demostrado que monocapas confluentes adecuadamente expresar VE-cadherina en las uniones célula-célula a través del dispositivo 14. </li><li> Inyectar sangre o suspensión de células en el sistema para la experimentación. </li></ol> 4. Los resultados representativos _content &quot;&gt; El uso de este protocolo, las técnicas estándar de microfabricación litográficas se utilizan para crear el molde necesario para producir los canales de microfluidos que fisiológicamente imitan la sizescale de la microvasculatura (Figura 1A). Utilizando una técnica de perfusión optimizado, las células endoteliales a continuación, las semillas y la cultura confluentemente toda la superficie interna del sistema de microfluidos el plazo de 24-48 horas de la siembra de células (fig. 1B). A medida que el sistema de microfluidos es transparente, el microdispositivo se puede colocar todo en un campo claro / platina del microscopio de fluorescencia para la imagen y la recopilación de datos. Nuestro sistema puede ser aplicado al estudio de enfermedades hematológicas que impliquen alteración de las propiedades biofísicas, como la enfermedad de células falciformes, en la que el aumento de la rigidez de los glóbulos rojos falciformes y la adhesión de leucocitos y células endoteliales aberrante contribuyen a la obstrucción microvascular. Un medicamento clínicamente aprobada, la hidroxiurea, alivia los síntomas, pero su direct efecto sobre el flujo microvascular es desconocido. Nuestro ensayo tiene en cuenta tanto la rigidez y la adhesión celular, y demuestra que la hidroxiurea aminora significativamente el flujo en la enfermedad de células falciformes (Figura 2). Enfermedad de células falciformes es sólo un ejemplo de una aplicación para la microvasculatura-en-un-chip, ya que este sistema es ideal para estudiar cualquier proceso hematológico en el que las células sanguíneas interactuar con cada uno y otras células endoteliales en la microvasculatura. Otras aplicaciones clínicamente relevantes incluyen los trastornos inflamatorios, lesiones sepsis / pulmón, microangiopatías trombóticas, la malaria y la metástasis del cáncer, mientras que las aplicaciones más básicas incluyen la biología de leucocitos y la biología de células madre hematopoyéticas, entre muchos otros. <img src="/files/ftp_upload/3958/3958fig1.jpg" alt="Figura 1"/> Figura 1. A) el primer dispositivo de microfluidos PDMS antes de endotelización. Aquí, el microdispositivo se inyecta ingenioh colorante de alimentos para ilustrar el diseño sizescale y en general del sistema. B) la microscopía de campo claro se muestra el sistema de microfluidos es completamente endotelizado plazo de 48 horas de la siembra de células utilizando el protocolo descrito aquí. <img src="/files/ftp_upload/3958/3958fig2.jpg" alt="Figura 2"/> Figura 2. A) La microvasculatura-en-un-chip con microcanales se aproxima al tamaño de post-capilares vénulas (30 micras), el sitio de la mayoría de los eventos de células falciformes obstructivas microvasculares. La sangre entera de pacientes con anemia drepanocítica que recibieron hidroxiurea y de pacientes que no recibieron hidroxiurea se hace fluir a través de dos diferentes microvasculatura-en-un-chip de los dispositivos. B) Toda la sangre de pacientes con anemia de células falciformes que recibieron los flujos de hidroxiurea con relativa facilidad dentro de los microcanales endotelizado. C) En las condiciones hemodinámicas mismos, toda la sangre de pacientes con anemia drepanocítica que no recibieron hidroxiurea, sin embargo, muestra un flujo mucho más lento con microchannel obstrucción. El canal inferior está completamente obstruido sin flujo y las velocidades de flujo en los microcanales endotelizado otros son significativamente menores que en la condición hidroxiurea. La barra de escala en las tres imágenes es de 30 micras.

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</ol>

No hay conflictos de interés declarado.

Nuestro sistema microdispositivo endotelizado es el más adecuado cuando se utiliza en conjunción con los experimentos in vivo, y su enfoque reduccionista puede ayudar a aclarar los mecanismos biofísicos de los procesos hematológicos que se observan en los seres humanos y modelos animales. Además, nuestro sistema no está exento de limitaciones. Por ejemplo, nuestros canales de microfluidos son cuadrados en sección transversal. Aunque técnicamente microcanales circulares se pueden fabricar 10,11,</s...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nombre del reactivo </td><td> Empresa </td><td> Número de catálogo </td><td> Comentarios </td></tr><tr><td> aguja de punta roma </td><td> OK International </td><td> 920050-TE </td><td> Precisión TE aguja de calibre 20 x 1/2 &quot;, de color rosa </td></tr><tr><td> dextrano </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> 31392 </td><td></td></tr><tr><td> La fibronectina </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> F0895 </td><td></td></tr><tr><td> Perforador (tornillo de banco pines) </td><td> Las innovaciones técnicas </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Las células endoteliales del cordón umbilical (HUVEC) </td><td> Lonza </td><td> CC-2519 </td><td></td></tr><tr><td> Plasma cleaner </td><td> Plasma </td><td> PDC-326 </td><td></td></tr><tr><td>Polidimetilsiloxano (PDMS) </td><td> Fisher Scientific </td><td> NC9285739 </td><td> Sylgard 184 Elastómero de silicona KIT </td></tr><tr><td> Sigmacote </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> SL2 </td><td></td></tr><tr><td> SU-8 2025 </td><td> Microchem </td><td> Y111069 </td><td></td></tr><tr><td> SU-8 para desarrolladores </td><td> Microchem </td><td> Y020100 </td><td></td></tr><tr><td> Jeringa bomba </td><td> Aparato de Harvard </td><td> 70-3008 </td><td> PHD-ULTRA </td></tr><tr><td> tubo (más grande) </td><td> Cole-Parmer Instrument Company </td><td> 06418-02 </td><td> Tygonreg microbore tubo, 0.020 &quot;x 0.060&quot; OD </td></tr><tr><td> tubería (más pequeño) </td><td> Cole-Parmer Instrument Company </td><td> 06417-11 </td><td> PTFE tubo microperforado, 0,012 &quot;x 0,030&quot; de diámetro exterior </td></tr></tbody></table>

microfluídica endotelizado para estudiar las interacciones microvasculares en enfermedades hematológicas

Endothelialized Microfluidics for Studying Microvascular Interactions in Hematologic Diseases

Los avances en técnicas de microfabricación han permitido la producción de sistemas de microfluidos de bajo costo y reproducible para la realización de experimentos biológicos y bioquímicos en el 1,2 micro y nanoscales. Además, también se han microfluídica se utilizan específicamente para analizar cuantitativamente los procesos hematológicos y microvascular, debido a su capacidad de controlar fácilmente el entorno dinámico fluídico y condiciones biológicas 3-6. Como tal, los investigadores han utilizado más recientemente sistemas de microfluidos para estudiar la deformabilidad de las células sanguíneas, la agregación de células de sangre, el flujo sanguíneo microvascular, y la sangre endoteliales interacciones célula-célula 6-13. Sin embargo, estos sistemas de microfluidos o bien no incluyen células endoteliales cultivadas o eran más grandes que la correspondiente a la sizescale microvasculares procesos patológicos. Una plataforma de microfluidos con cultivos de células endoteliales, que recapitula la precisión celular, físico, y hemodynel medio ambiente amic de la microcirculación que se necesita para avanzar en nuestra comprensión de la fisiopatología subyacente biofísica de enfermedades hematológicas que involucran la microvasculatura. Aquí se presenta un método para crear una &quot;endotelizado&quot; modelo in vitro de la microvasculatura, utilizando un proceso sencillo, solo la máscara de microfabricación en conjunción con las técnicas de cultivo de células endoteliales, para estudiar las interacciones patológicas microvasculares biofísicos que se producen en la enfermedad hematológica. Este &quot;microvasculatura-en-un-chip&quot; proporciona al investigador un sólido ensayo que se controla estrictamente biológica, así como las condiciones biofísicas y se maneja mediante una bomba de jeringa estándar y claro / microscopía de fluorescencia. Parámetros tales como las condiciones hemodinámicas microcirculación, el tipo de células endoteliales, el tipo de células sanguíneas (s) y la concentración (s), droga / concentración inhibitoria etc, todos pueden ser fácilmente controlado. Como tal, nuestro microsistema ofreceun método para investigar cuantitativamente los procesos de enfermedad en la que se altera el flujo microvascular, debido a alteraciones en la adhesión celular, la agregación y la deformabilidad, la capacidad disponible con los ensayos existentes.

Un método para la cultura de una monocapa de células endoteliales en toda la superficie interior en 3D de un dispositivo de microfluidos con microvascular del tamaño de los canales (&lt;30 micras) se describe. Este<em&gt; In vitro</em&gt; Modelo de microvasculatura permite el estudio de las interacciones biofísicas entre las células sanguíneas, células endoteliales, y factores solubles en enfermedades hematológicas.

Microfluídica endotelizado para estudiar las interacciones microvasculares en Enfermedades Hematológicas

Los avances en las técnicas de microfabricación han permitido la producción de sistemas microfluídicos económicos y reproducibles para llevar a cabo procesos biológicos y...

El objetivo general de este procedimiento es crear un dispositivo microfluídico recubierto con células endoteliales. Esto se logra primero fabricando el molde microfluídico. El segundo paso consiste en crear el canal de PDMS.A continuación, las células endoteliales se siembran en el dispositivo. El paso final consiste en cultivar las células dentro del dispositivo. En última instancia, se utilizan dispositivos microfluídicos recubiertos con células endoteliales para mostrar interacciones entre células in vitro.La principal ventaja de esta técnica frente a los métodos existentes es que proporciona al investigador un control estricto sobre las condiciones biológicas y biofísicas y es compatible con la microscopía de fluorescencia. Aunque este método puede ofrecer información sobre las interacciones biofísicas entre células en enfermedades hematológicas, también puede aplicarse a fenómenos como la biología de los leucocitos, la metástasis del cáncer y la biología de las células madre hematopoyéticas. En general, las personas nuevas en este método tendrán dificultades porque las condiciones deben controlarse rigurosamente para lograr un asentamiento celular exitoso.Como preparación para la fabricación, se crea una máscara fotográfica enviando una imagen de diseño asistido por computadora del dispositivo microfluídico a un proveedor externo de máscaras. Una vez recibida, la máscara está compuesta por una capa de cromo sobre vidrio de cal sodada. Aquí, el ancho del canal microfluídico es de 30 micrones.Para comenzar la fabricación del dispositivo microfluídico, limpie una oblea de silicio virgen con piraña durante 15 minutos y luego enjuáguela con agua desionizada durante 10 segundos. A continuación, sumerja la oblea de silicio en ácido fluorhídrico durante 30 segundos y enjuáguela con agua desionizada durante aproximadamente 10 segundos. Después, utilizando una centrífuga, aplique por centrifugación el sustrato fotosensible SU-8 2025 sobre la oblea hasta alcanzar una altura de 30 micrones, empleando una velocidad de centrifugado de 3000 rotaciones por minuto.Coloque la oblea recubierta con SU 8 20 25 sobre una placa calefactora ajustada a 95 grados Celsius durante cinco minutos para eliminar el exceso de disolvente. No se recomienda utilizar un horno para este paso. A continuación, coloque la máscara fotográfica sobre la oblea y expóngala a luz UV en un alineador de máscaras para entrecruzar y reticular el fotoresistente SU 8 20 25.Después de la reticulación, coloque nuevamente la oblea sobre la placa calefactora a 95 grados Celsius durante cinco minutos adicionales, para acelerar aún más la polimerización del fotoresistente SU 8 20 25. Luego sumerja la oblea en el revelador SU eight, compuesto principalmente de P-G-M-E-A, durante cuatro minutos.Esto eliminará el SU 8 20 25 fotoresistente no entrecruzado. Enjuague la oblea recién desarrollada con alcohol isopropílico al 100 % durante 10 segundos, luego séquela con nitrógeno presurizado o permitiendo que el disolvente evapore de la oblea en una campana extractora limpia durante varios minutos. A continuación, fije con cinta la oblea seca en el centro de la placa de Petri, teniendo cuidado de colocar la cinta en los bordes de la oblea.Finalmente, pipete 500 microlitros de recubrimiento sigma sobre la oblea. Cubra la placa de Petri con la tapa y luego agite suavemente la placa para asegurar un recubrimiento completo de la oblea. Retire la tapa y deje secar la oblea durante varios minutos hasta que todo el disolvente haya evaporado.Después de mezclar el polímero de PDMS y el agente de curado en una relación de 10 a 1 en peso por peso, elimine las burbujas de aire utilizando un desecador al vacío durante varios minutos hasta una hora, dependiendo de la intensidad del sistema de vacío disponible. Una vez eliminadas todas las burbujas de aire, vierta la mezcla en el recipiente de modo que la oblea y la superficie del recipiente queden cubiertas. Para obtener una lámina de PDMS de aproximadamente cinco milímetros de espesor.También cree un fragmento delgado e incoloro de PDMS de un milímetro de espesor. Luego, cure la mezcla en un horno a 60 grados Celsius durante toda la noche. Al día siguiente, use un cuchillo o un escalpelo para cortar alrededor de la oblea y retirar varios dispositivos microfluídicos de PDMS.Luego, corte la lámina para aislar los dispositivos individuales. Corte la lámina de PDMS ligeramente más grande que el dispositivo microfluídico. Ahora utilice una broca de pinza Harris Unicorn o un dispositivo similar para crear los orificios de entrada y salida en el dispositivo microfluídico.A continuación, limpie las superficies del dispositivo microfluídico y la lámina utilizando cinta adhesiva. Luego, use un limpiador de plasma para exponer las superficies del dispositivo microfluídico y de la lámina de PDMS al plasma de oxígeno durante 30 segundos. El plasma de oxígeno genera especies reactivas en la superficie expuesta del PDMS, las cuales se unen al ponerse en contacto físico.A continuación, llene una jeringa de un mililitro equipada con una aguja romo de calibre 20 con 50 microgramos por mililitro. Fibronectina de plasma humano en PBS, luego coloque un tramo de tubo sobre la aguja. Introduzca un trozo de tubo más delgado dentro del primer tramo de tubo para crear un ajuste por fricción entre las dos piezas de tubo.Luego, conecte el otro extremo del trozo más delgado de tubo a la entrada del dispositivo microfluídico. Aplique presión a la jeringa para llenar completamente los canales con la solución de fibronectina y para formar una pequeña gota de 100 microlitros en el puerto de salida, asegurando así que los canales permanezcan húmedos. A continuación, incube el dispositivo microfluídico en una incubadora humedecida a 37 grados Celsius durante 40 a 60 minutos.Tras la incubación, conecte una jeringa nueva llena con PBS a la aguja de punta roma. Aplique presión para lavar el dispositivo microfluídico con PBS. Prepare de 500.000 a 2 millones de células por mililitro de células endoteliales de vena umbilical humana, o hve, en medio de crecimiento endotelial con 8% de dextrano.La adición de dextrano aumenta la probabilidad de que las células se adhieran y cultiven con éxito dentro del dispositivo microfluídico. Llene una jeringa limpia con una aguja de punta roma y tubos más anchos con la suspensión celular y conecte un tramo más largo de tubo de aproximadamente un metro de longitud. Es fundamental asegurarse de que el tubo encaje bien para eliminar cualquier fuga entre las conexiones.Precargue el tubo con la solución celular, asegurándose de que no haya burbujas presentes ni en la jeringa ni en ninguna parte del tubo para optimizar el rendimiento del sistema. En este punto, es fundamental evitar que entren fugas ni burbujas al sistema. Cualquier fuga de la solución o presencia de burbujas en el medio impedirá el correcto asentamiento de las células endoteliales.Una vez eliminadas todas las burbujas y que toda la longitud del tubo esté cebada con la suspensión celular, coloque la jeringa en la bomba y conecte el otro extremo a la entrada microfluídica. La bomba de jeringa se coloca a la misma altura que el dispositivo microfluídico. La longitud larga del tubo se enrolla cuidadosamente dentro del incubador para asegurar que las células y el medio se calienten adecuadamente antes de entrar en contacto con el dispositivo.Luego, la suspensión celular se infunde en el dispositivo microfluídico a un caudal volumétrico de 1,23 microlitros por minuto durante dos horas a 37 grados Celsius y 5 % de dióxido de carbono en nuestro sistema. El caudal volumétrico de 1,23 microlitros por minuto corresponde a una velocidad en la corriente media de un milímetro por segundo en los canales más pequeños. Esto aproxima un esfuerzo cortante en la pared de un dina por centímetro cuadrado en esos canales utilizando sangre total.Una vez completada la infusión de la suspensión celular, utilice la misma bomba de jeringa y el mismo tubo largo con una jeringa más grande para infundir medio de crecimiento fresco durante dos a ocho días a una velocidad de 1,23 microlitros por minuto. Cuando la monocapa celular alcance el nivel deseado de confluencia, inyecte sangre o suspensión celular en el sistema para realizar el experimento. Aquí se muestra el dispositivo microfluídico antes de la endotelización.El dispositivo microfluídico ha sido infundido con colorante alimentario para ilustrar el tamaño, la escala y el diseño general del dispositivo que imita la fisiología del sistema vascular. La microscopía de campo claro revela la endotelialización de un dispositivo microfluídico. Esta imagen fue obtenida menos de 48 horas después de la siembra utilizando el protocolo descrito; la técnica de perfusión optimizada permite que las células endoteliales cultiven de manera confluente toda la superficie interna del sistema microfluídico.Entre 24 y 48 horas después de la siembra celular. Como se muestra en esta imagen confocal, el tumor microvascular en un chip con microcanales se asemeja al tamaño de 30 micrones de las vénulas poscapilares, sitio de la mayoría de los eventos obstructivos microvasculares en la anemia de células falciformes. En este experimento, sangre completa de pacientes sanos se infunde en una microvasculatura en un dispositivo de chip bajo condiciones desoxigenadas.Esta película muestra que el flujo de sangre completa en nuestro sistema microfluídico endotelial es regular, suave y continuo, sin áreas de obstrucción en los microcanales. Aquí, sangre completa de pacientes con enfermedad de células falciformes se infunde en una microvasculatura sobre un dispositivo en chip. En condiciones desoxigenadas, se observan cambios significativos en el flujo sanguíneo, con oclusiones completas presentes en varios canales.Al realizar este procedimiento, es importante recordar no introducir burbujas de aire al cambiar los tubos. El dispositivo terminado es compatible con microscopía de fluorescencia y puede adaptarse a ensayos de fluorescencia tradicionales. Esta técnica allana el camino para que los hemat&ólogos experimentales realicen experimentos utilizando c&eacute;lulas individuales en un entorno biof&ísico y hemodin&aacute;mico controlado.Sin burbujas.

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Research

Investigación

JoVE Journal

Bioengineering

Bioingeniería

Aquí se describe una metodología para ofrecer la médula humana derivados de la sangre endoteliales que forman colonias de células (ECFCs) y médula ósea procedentes de células madre mesenquimales (MSC), integrado en un gel de colágeno / fibronectina, por vía subcutánea en ratones inmunodeficientes. Esta combinación de células / gel genera una red humana vascular que conecta con la vasculatura del ratón.

Bioingeniería Humanos redes microvasculares en ratones inmunodeficientes

Cámaras de flujo de microfluidos grabadas por fotolitografía y fabricada a partir de PDMS se aplican para investigar los resultados funcionales asociados con la disfunción CE y la inflamación. En un experimento representativo, la capacidad de esfuerzo cortante diferencial para modular la adhesión celular monocítica a citoquina activado monocapas CE se demuestra.

On-Chip fenotipificación inflamatoria endotelial

Una plataforma de micro-canales-on-a-chip fue desarrollado por la combinación de la técnica de fotolitografía reflowable fotosensible, litografía blanda, y microfluidos. La plataforma de microcanales endotelizado imita la geometría tridimensional (3D) de microvasos in vivo, se ejecuta bajo flujo de perfusión continua controlada, permite la formación de imágenes de alta calidad y en tiempo real y se puede aplicar para la investigación microvascular.

Procedimiento para el Desarrollo de la Multi-profundidad Circular transversal endotelizado microcanales-on-a-chip

La transfusión y hemostasia de plaquetas se modeló utilizando cámaras de reconstitución de sangre y flujo microfluídico para investigar la función de las plaquetas de los bancos de sangre. Los datos demuestran las consecuencias de la lesión por almacenamiento de plaquetas sobre la hemostasia, in vitro.

Flujo de microfluidos Cámaras utilizando sangre reconstituida a Modelo Hemostasia y Transfusión de Plaquetas<em&gt; In Vitro</em

Las células endoteliales primarias de la vena umbilical humana (HUVECs) se cultivaron hasta la confluencia dentro de un dispositivo de red microfluídica. Se ilustró la unión de las células endoteliales y las distribuciones de F-actina, y se cuantificaron en tiempo real los cambios en la concentración de calcio intracelular y la producción de óxido nítrico en respuesta al trifosfato de adenosina (ATP) a nivel de células individuales.

Desarrollo y caracterización de<em&gt; In Vitro</em&gt; Red de microvasos y mediciones cuantitativas de endotelial [Ca<sup&gt; 2+</sup&gt;]<sub&gt; i</sub&gt; Y la producción de óxido nítrico

Este manuscrito presenta un método de moldeo por inyección para diseñar microvasos que recapitular las propiedades fisiológicas de endotelio. El proceso basado en microfluidos crea redes vasculares 3D patente con condiciones tailorable, tales como gradientes bioquímicos de flujo, composición celular, la geometría, y. Se describe el proceso de fabricación y los ejemplos de posibles aplicaciones.

Micropatterning y Montaje de Microvasos 3D

Presentamos un modelo de enfermedad vascular in vitro para investigar interacciones sanguíneas enteras con endotelio derivado del paciente. Este sistema permite el estudio de las propiedades trombogénicas de las células endoteliales primarias en diversas circunstancias. El método es especialmente adecuado para evaluar la trombogenicidad in situ y la terapia de anticoagulación durante diferentes fases de la coagulación.

In Vitro Microfluidic Disease Model to Study Whole Blood-Endothelial Interactions and Blood Clot Dynamics in Real-Time

Aquí, proporcionamos un chip microfluídico y un sistema microfluídico de circulación automáticamente controlado y altamente eficiente que recapitula el microambiente inicial de neovascularización, permitiendo que las células endoteliales (ECs) sean estimuladas por un alto estrés esquilar luminal, nivel fisiológico de flujo transendotelial y diversa distribución del factor de crecimiento endotelial vascular (VEGF) simultáneamente.

Modelo microfluídico para imitar el evento inicial de neovascularización

En este protocolo, se emplea un ensayo biomimético de microfluidos, que puede reproducir un entorno microvascular fisiológicamente relevante y reproducir toda la cascada de adhesión/migración de leucocitos, para estudiar las interacciones leucocitarios-células endoteliales en la enfermedad inflamatoria.

Un sistema microfisiológico para estudiar la interacción leucocitario-endotelial durante la inflamación

Se puede evaluar la función plaquetaria bajo flujo y se puede modelar la reanimación hemostática simulada utilizando un dispositivo microfluídico, que tiene aplicaciones en medicina traumatológica y transfusional.

Microfluídica en la evaluación de la función plaquetaria

Aquí presentamos un protocolo para fabricar y operar un sistema microfluídico que expone a las células endoteliales a hiperglucemia oscilatoria sincronizada y a estrés de cizalladura pulsátil. Este enfoque proporciona un modelo in vitro fisiológicamente relevante para estudiar la disfunción endotelial diabética. Este protocolo permite la medición cuantitativa del estrés oxidativo y las respuestas de las células endoteliales.

Un sistema microfluídico para modelar la disfunción endotelial bajo esfuerzo fisiológico combinado de cizalladura pulsátil e hiperglucemia oscilatoria

Aprende a crear dispositivos microfluídicos con monocapas de células endoteliales para estudiar interacciones celulares en enfermedades hematológicas. Este método permite controlar condiciones biológicas y biofísicas con precisión.

Microfluídica endotelizado para estudiar las interacciones microvasculares en Enfermedades Hematológicas

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