Name: La electroporación neonatal zona subventricular (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-02-11T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 6 s
Description: Aprende la electroporación neonatal en la zona subventricular para manipular células madre neuronales mediante inyección de ADN plasmídico y pulsos eléctricos. Este método permite estudiar neurogénesis de forma rápida y económica.

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Este trabajo fue apoyado por subvenciones del Departamento de Defensa (Premio Idea desarrollo, W81XWH-10-1-0041, AB), CT con células madre subvención (AB), y el Instituto Nacional de Salud NRSA 10668225 (DMF). El presente material está basado en trabajo apoyado en parte por el Estado de Connecticut bajo el Stem Cell Research Connecticut Programa de Subvenciones. Su contenido es de exclusiva responsabilidad de sus autores y no representan necesariamente la opinión oficial del Estado de Connecticut, el Departamento de Salud Pública del Estado de Connecticut o innovaciones CT, Inc. Los financiadores no participó en el diseño del estudio, recogida de datos y el análisis, la decisión de publicar, o la preparación del manuscrito.

Este procedimiento es conforme con los requisitos de Yale IACUC. Los científicos deberían asegurarse de que las directrices sean aprobadas IACUC y siguió de acuerdo a sus necesidades institucionales. 1. Sección 1. Preparación de ADN Pipettes, soluciones y Vidrio <ol><li> Generar alta pureza (OD 260/280&gt; 1,80) alta concentración (mg / l&gt; 2,5) libre de endotoxinas ADN. </li><li> Preparar 0,9% de solución salina y el filtro estéril a través de un filtro de 22 micras. </li><li> Colocar 10 cm fuego pulido tubos capilares de vidrio de borosilicato (OD: 1,5 mm, ID: 1,10 mm) en un modelo PP-830 Narishige PC-10 extractor de pipeta de vidrio con un alambre de Kanthal. Conjunto extractor para una tracción paso ponderado en 70.5 ° C. Rompa las puntas con unas pinzas circulares e inspeccionar bajo un microscopio de disección para los bordes dentados. Puntas cónicas y se coloca bajo una lámpara UV durante 15 min. Pipetas Pulled deben ser marcadas en 2 mm del borde de la punta. </li><li> Preparar 0,1% peso / volumen verde rápido solutipor mezcla filtrada estéril solución salina al 0,9% con el verde de secado rápido. </li></ol> 2. Sección 2. Preparación de los animales, pipeta de vidrio de carga y de inyección de plásmido <ol><li> Retire el día postnatal 0-1 crías en jaulas individuales, en lugar de un plato de Petri de vidrio previamente enfriado a 4 ° C, y luego colocar en hielo húmedo. </li><li> Después de aproximadamente 5 min, determinar el estado de anestesia mediante la utilización de la respuesta pellizco pie. Si no hay movimiento, las crías sometidas a la inyección intraventricular. </li><li> Es importante señalar que la combinación de verde rápido, ADN, y la solución salina puede dar como resultado la rápida evaporación, cristalización, y el bloqueo de pipetas de vidrio. Por lo tanto, generar una solución madre y parte alícuota de 1-2 l sobre Parafilm inmediatamente antes de las inyecciones. </li><li> Aspirar todo el volumen alícuota con la pipeta de vidrio tirado. </li><li> Sostenga la cabeza del cachorro entre el pulgar y el dedo índice de su mano menos dominante. </li><li> Encienda una lámparad sostenga la cabeza del cachorro a las afueras del haz de luz. Si es necesario, poner en solución salina cabeza para reducir la cantidad de luz reflejada por las crías. Los ventrículos ahora debe estar iluminado. </li><li> Con la mano dominante, inserte la aguja en el ventrículo lateral más cercano a usted (Figura 1A y 1B). El sitio de inyección debe ser de aproximadamente equidistante de esta sutura y el ojo y 2 mm lateral a la sutura sagital. Insertar sacó la pipeta hasta la marca de 2 mm para un cachorro P0, que debería asegurar la penetración en el ventrículo lateral. Coincidentemente, es posible que vea el relleno de líquido cefalorraquídeo en la pipeta de la liberación de la presión intracraneal. Para reducir la presión intracraneal, lo que ayuda a la inyección de plásmido, aflojar su control sobre la cabeza de la pup.Step 2,8. Inyectar aproximadamente 0,5 l de plásmido en el ventrículo lateral utilizando un inyector de aire a presión (Picospritzer, Parker). </li></ol> 3. Sección 3. La electroporación y la recuperación <ol><li> Set la tensión del generador de electroporación para 5 impulsos cuadrados, 50 mseg / pulso a 100 voltios, con intervalos de 950 mseg. La especificidad espacial de la electroporación del plásmido está dictada por la direccionalidad de transferencia de carga. Debe prestarse atención dada a la colocación dada la heterogeneidad de las poblaciones de células madre a lo largo de la SVZ 8. Las diferencias en las tasas de proliferación y el destino celular se han identificado lugares ventral-dorsal y caudal rostral-9,10. </li><li> Una vez que el plásmido se inyecta, introducir los electrodos de pinza en PBS. Este paso es maximizar la transferencia de carga y para evitar quemaduras causadas por la resistividad. </li><li> Coloque el electrodo positivo en la pared lateral dorsal del cachorro cerca de la oreja ipsilateral al sitio de la inyección de plásmido (Figura 1C y 1D). Coloque el electrodo negativo en el hemisferio contralateral lateral ventral al cachorro hocico. </li><li> Iniciar la transferencia actual presionando los foots pulsobruja pedal y barrer los electrodos de dorsal a lateral utilizando ~ 25 ° intervalos angulares. </li><li> Lugar a electroporación cachorros en una almohadilla de calentamiento durante 5 min. Gire suavemente crías cada 30 segundos con una estimulación suave. </li></ol>

<ol><li>Kriegstein, A., Alvarez-Buylla, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+glial+nature+of+embryonic+and+adult+neural+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">The glial nature of embryonic and adult neural stem cells.</a> Annual Review of Neuroscience. 32, 149-184 (2009).</li>
<li>Imayoshi, I., Sakamoto, M., Kageyama, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+methods+to+identify+and+manipulate+newly+born+neurons+in+the+adult+brain%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Genetic methods to identify and manipulate newly born neurons in the adult brain.</a> Frontiers in Neuroscience. 5, 64(2011).</li>
<li>LoTurco, J., Manent, J. B., Sidiqi, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+and+improved+tools+for+in+utero+electroporation+studies+of+developing+cerebral+cortex%5BTitle%5D)+AND+%22Cereb+Cortex%22%5BJournal%5D)">New and improved tools for in utero electroporation studies of developing cerebral cortex.</a> Cereb Cortex. 19, Suppl 1. i120-i125 (2009).</li>
<li>Tabata, H., Nakajima, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+in+utero+gene+transfer+system+to+the+developing+mouse+brain+using+electroporation%3A+visualization+of+neuronal+migration+in+the+developing+cortex%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Efficient in utero gene transfer system to the developing mouse brain using electroporation: visualization of neuronal migration in the developing cortex.</a> Neuroscience. 103, 865-872 (2001).</li>
<li>Boutin, C., Diestel, S., Desoeuvre, A., Tiveron, M. C., Cremer, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+in+vivo+electroporation+of+the+postnatal+rodent+forebrain%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+ONE%22%5BJournal%5D)">Efficient in vivo electroporation of the postnatal rodent forebrain.</a> PloS ONE. 3, e1883(2008).</li>
<li>Chesler, A. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+gene+expression+by+postnatal+electroporation+during+olfactory+interneuron+nurogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+ONE%22%5BJournal%5D)">Selective gene expression by postnatal electroporation during olfactory interneuron nurogenesis.</a> PloS ONE. 3, e1517(2008).</li>
<li>Platel, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NMDA+receptors+activated+by+subventricular+zone+astrocytic+glutamate+are+critical+for+neuroblast+survival+prior+to+entering+a+synaptic+network%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">NMDA receptors activated by subventricular zone astrocytic glutamate are critical for neuroblast survival prior to entering a synaptic network.</a> Neuron. 65, 859-872 (2010).</li>
<li>Alvarez-Buylla, A., Kohwi, M., Nguyen, T. M., Merkle, F. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+heterogeneity+of+adult+neural+stem+cells+and+the+emerging+complexity+of+their+niche%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harbor+Symposia+on+Quantitative+Biology%22%5BJournal%5D)">The heterogeneity of adult neural stem cells and the emerging complexity of their niche.</a> Cold Spring Harbor Symposia on Quantitative Biology. 73, 357-365 (2008).</li>
<li>Fernandez, M. E., Croce, S., Boutin, C., Cremer, H., Raineteau, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeted+electroporation+of+defined+lateral+ventricular+walls%3A+a+novel+and+rapid+method+to+study+fate+specification+during+postnatal+forebrain+neurogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Neural+Development%22%5BJournal%5D)">Targeted electroporation of defined lateral ventricular walls: a novel and rapid method to study fate specification during postnatal forebrain neurogenesis.</a> Neural Development. 6, 13(2011).</li>
<li>de Chevigny, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((miR-7a+regulation+of+Pax6+controls+spatial+origin+of+forebrain+dopaminergic+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">miR-7a regulation of Pax6 controls spatial origin of forebrain dopaminergic neurons.</a> Nature Neuroscience. 15, 1120-1126 (2012).</li>
<li>Lacar, B., Young, S. Z., Platel, J. C., Bordey, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+and+recording+subventricular+zone+progenitor+cells+in+live+tissue+of+postnatal+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Imaging and recording subventricular zone progenitor cells in live tissue of postnatal mice.</a> Frontiers in Neuroscience. 4, (2010).</li>
<li>Feliciano, D. M., Quon, J. L., Su, T., Taylor, M. M., Bordey, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Postnatal+neurogenesis+generates+heterotopias%2C+olfactory+micronodules+and+cortical+infiltration+following+single-cell+Tsc1+deletion%5BTitle%5D)+AND+%22Human+Molecular+Genetics%22%5BJournal%5D)">Postnatal neurogenesis generates heterotopias, olfactory micronodules and cortical infiltration following single-cell Tsc1 deletion.</a> Human Molecular Genetics. 21, 799-810 (2012).</li>
<li>Iguchi, T., Yagi, H., Wang, C. C., Sato, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+tightly+controlled+conditional+knockdown+system+using+the+Tol2+transposon-mediated+technique%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+ONE%22%5BJournal%5D)">A tightly controlled conditional knockdown system using the Tol2 transposon-mediated technique.</a> PloS ONE. 7, e33380(2012).</li>
</ol>

Los autores no tienen conflicto de intereses.

Aquí detalle la técnica de electroporación SVZ neonatal, una técnica para etiquetar rápidamente y con firmeza y manipular células SVZ madre y su progenie. Hay varias ventajas que la electroporación tiene en comparación con otras técnicas. En primer lugar, dado el etiquetado focal de células, uno es capaz de discernir celulares autónomos efectos autónomos y no por células. Segunda manipulación, genética utilizando sistemas inducibles permite comparar los efectos antes o después de la integración sináptica. Además, se pue...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nombre del reactivo </td><td> Empresa </td><td> Número de catálogo </td><td> Comentarios (opcional) </td></tr><tr><td> Pesado tubo de borosilicato pulido </td><td> Sutter Instrument </td><td> BF150-110-10 </td><td></td></tr><tr><td> Dual-Stage vidrio Micropipetas Puller </td><td> Narishige </td><td> PC-10H </td><td></td></tr><tr><td> Fast Green </td><td> Fischer Scientific </td><td> 0521192205 </td><td></td></tr><tr><td> ECM 830 Generador de impulsos de onda cuadrada </td><td> Harvard Apparatus </td><td> 45-0052 </td><td></td></tr><tr><td> Tweezertrodes </td><td> Harvard Apparatus </td><td> 45-0488 </td><td></td></tr><tr><td> Fibra óptica Fuente de luz </td><td> Fisher Scientific </td><td> 12-562-36 </td><td></td></tr><tr><td> Tungsteno Halógenolámpara </td><td> USHIO America, Inc </td><td> 1002247 </td><td></td></tr><tr><td> Picospritzer II </td><td> Parker Instrumentos </td><td> 052-0312-900 </td><td></td></tr></tbody></table>

la electroporación neonatal zona subventricular

Neonatal Subventricular Zone Electroporation

Las células madre neurales (NSC) de la línea de los ventrículos laterales postnatales y dan lugar a múltiples tipos de células que incluyen neuronas, astrocitos y células ependimarias 1. La comprensión de los mecanismos moleculares responsables de la NSC auto-renovación, el compromiso y la diferenciación es fundamental para el aprovechamiento de su potencial único para reparar el cerebro y entender mejor los trastornos del sistema nervioso central. Los métodos anteriores para la manipulación de los sistemas de mamíferos requiere el esfuerzo largo y costoso de la ingeniería genética a nivel animal entero 2. Por lo tanto, la gran mayoría de los estudios han examinado las funciones de las moléculas NSC in vitro o en los invertebrados. Aquí se demuestra la técnica simple y rápida para manipular NPCs neonatales que se conoce como zona neonatal subventricular (SVZ) electroporación. Técnicas similares se han desarrollado hace una década para estudiar NSCs embrionarias y han ayudado a los estudios sobre Cortical desarrollo 3,4. Más recientemente, este fue utilizado para estudiar el cerebro anterior roedor postnatal 5-7. Esta técnica da como resultado el etiquetado robusto de SVZ NSCs y su progenie. Por lo tanto, postnatal SVZ electroporación ofrece una alternativa costo y tiempo efectivo de mamíferos ingeniería genética NSC.

Neonatales subventricular resultados zona de electroporación en el etiquetado de casi toda la glía radial contigua a la zona dorsal, lateral dorsal subventricular, y lateral siguiendo el &quot;barrido&quot; de movimiento del electrodo de pinza (Figura 1E). Sin embargo, la electroporación se pueden adaptar a los requisitos del experimento respectivo pero no barriendo el electrodo y el uso de la colocación y orientación específicos tal como se detalla en el vídeo. Por ejemplo, desde la glía radial dorsalm...

Se demuestra una técnica mínimamente invasiva conocida como electroporación neonatal zona subventricular. La técnica consiste en la inyección de ADN de plásmido en los ventrículos laterales de cachorros neonatales y la aplicación de corriente eléctrica para suministrar y manipular genéticamente las células madre neuronales

La electroporación neonatal zona subventricular

Neural stem cells (NSCs) line the postnatal lateral ventricles and give rise to multiple cell types which include neurons, astrocytes, and ependymal ...

El objetivo de este procedimiento es etiquetar y manipular genéticamente los constituyentes moleculares de las células madre neurales de la zona subventricular. Esto se logra insertando primero una pipeta de vidrio cargada con ADN en el ventrículo lateral de un P cero P. El segundo paso es expulsar el ADN al líquido cefalorraquídeo del ventrículo lateral. La siguiente corriente se aplica al P. Esto permite la transferencia de ADN a las células madre neurales que recubren los ventrículos laterales.En última instancia, se utiliza una combinación de técnicas moleculares, que incluyen inmunohistoquímica, biología molecular, microscopía y electrofisiología, para visualizar los cambios en el destino, la proliferación, la migración y la maduración de las células madre neuronales de la zona subventricular. La electroporación de la zona subventricular neonatal puede ayudar a responder preguntas clave en el campo de la neurogénesis, como qué vías moleculares son responsables de regular la proliferación, diferenciación, migración y maduración de las células madre neuronales y su progenie. La principal ventaja de esta técnica sobre los métodos existentes, como los ratones transgénicos, es que permite el marcaje rápido y robusto de las células madre neuronales de la SVZ de una manera eficiente en el tiempo y rentable.En primer lugar, asegúrese de que el ADN a electropurar sea de alta pureza y concentración y esté libre de endotoxinas. Tire de tubos capilares de vidrio de sílice BO pulidos al fuego de 10 centímetros en pipetas. Aquí se utiliza un juego de extractores de pipetas PP eight 30 ghhi PC 10 para tirar de un tiro ponderado de un solo paso a 70,5 grados centígrados Después de tirar de la pipeta, utilice pinzas circulares para romper la punta.A continuación, inspeccione la pipeta con un microscopio de disección para asegurarse de que no hay bordes irregulares. Si es necesario, la punta se puede biselar con una piedra de afilar. A continuación, coloque las pipetas vertidas bajo una lámpara UV durante 15 minutos.Una vez transcurridos los 15 minutos, marque la pipeta a dos milímetros del borde de la punta con un rotulador de punta fina. Por último, prepare una solución verde rápida de 0,1 peso por volumen mezclando solución salina estéril filtrada al 0,9% estéril con anestesia verde seca y rápida. Un cachorro de cero a un día de edad, una placa de Petri de vidrio preenfriada a cuatro grados centígrados y colocada sobre hielo occidental Después de aproximadamente cinco minutos, determine el estado de anestesia utilizando la respuesta de pellizco del pie.Si no hay movimiento, comience la inyección intraventricular. Combine la solución verde rápida con la solución de ADN y alícuota de uno a dos microlitros en la biopelícula. Es importante que esto se haga justo antes de la inyección, ya que la combinación de una solución verde rápida con ADN puede dar lugar a una rápida evaporación y cristalización con el posterior bloqueo de las pipetas de vidrio, aspirar todo el volumen de alícuotas con una jeringa de microfilm y cargar la pipeta de vidrio en un inyector de aire a presión.Ahora, agarre y sostenga suavemente la cabeza del cachorro entre el pulgar y el índice de la última mano dominante. Luego encienda la lámpara y sostenga la cabeza del cachorro justo fuera del haz de luz. Si los ventrículos no son claramente visibles, humedezca la cabeza con solución salina estéril para ayudar a reducir la cantidad de luz reflejada por el cuero cabelludo.A continuación, con la mano dominante, inserte la aguja en el ventrículo lateral del lado cercano. El sitio de inyección debe estar aproximadamente equidistante de la sutura OID y del ojo, y dos milímetros lateral a la sutura sagital. Inserte la pipeta extraída en la marca de dos milímetros para obtener un estallido P cero, que debería asegurar la penetración en el ventrículo lateral.El relleno posterior de líquido cefalorraquídeo en la pipeta puede ocurrir debido a la liberación de presión intracraneal. Si esto sucede, afloje el agarre de la cabeza del POP para reducir la presión y ayudar en la inyección del plásmido. Una vez que la pipeta esté insertada de manera óptima, inyecte aproximadamente 0,5 microlitros de plásmido en el ventrículo lateral.Configure el voltaje del generador de operación eléctrica para cinco pulsos cuadrados, 50 milisegundos por pulso y 100 voltios con intervalos de 50 milisegundos. La especificidad espacial de la operación electro de plasma viene dada por la dirección de la transferencia de carga, por lo que se debe tener en cuenta el espacio de la ubicación de los electrodos dada la diversidad de las celdas de la SVZ. Las personas han reportado cambios en términos de destino celular y proliferación en las ubicaciones ventral dorsal a CAU.Después de la inyección de la inmersión del plásmido, las pinzas se electrodan en PBS para maximizar la transferencia de carga y ayudar a prevenir quemaduras causadas por la resistividad. A continuación, coloque el electrodo positivo en la pared lateral dorsal del cráneo cerca de la oreja y sumerja el lateral en la inyección de citoplasma. A continuación, coloque el electrodo negativo en el hemisferio contralateral ventral lateral al hocico pop.Esta figura muestra la orientación correcta de los electrodos negativo y positivo con respecto a los ejes x, y, Z en el cachorro inyectado. Inicie la transferencia de corriente presionando el pedal del interruptor de pie de pulso y barra los electrodos de dorsal a lateral usando intervalos de ángulo de alrededor de 25 grados. Una vez que se complete la electroporación, coloque todos los cachorros electroporados en una almohadilla térmica durante cinco minutos.Gire suavemente a los cachorros cada 30 segundos con una estimulación leve. Esta imagen muestra el ventrículo lateral de un ratón neonatal 24 horas después de la electroporación de un vector codificante de EGFP. Las celdas electro clasificadas emiten fluorescencia verde.Aquí vemos el ventrículo lateral marcado con LV 28 días después de la electroporación de la recombinasa Cree y los plásmidos que codifican GFP en ratones que llevan un código de parada en la fase anterior de la recombinación del tomate TD que induce la expresión del tomate TD visto en rojo, la dilución sucesiva del plásmido que da como resultado pocas células SVZ positivas para EGFP restantes o el tomate TD expresado genómicamente se expresa permanentemente. La dilución del plásmido, el ADN que se muestra en verde es evidente dado que más células en la capa de células granulosas del bulbo olfatorio marcadas como OB, expresan el marcador genómico TD tomate que se muestra en rojo. Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo etiquetar y manipular las células madre de la SVZ.

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Investigación

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Neurociencia

En la inyección intraventricular Utero y electroporación de embriones de rata E16

En la inyección intraventricular Utero y electroporación de embriones de ratón E15

En el útero de la electroporación permite la entrega rápida de genes en un espacio-temporal y controlado de manera en el desarrollo del sistema nervioso central (SNC). Aquí se describe una muy adaptable en el protocolo de electroporación in utero que puede ser utilizado para entregar las construcciones de expresión en múltiples dominios del SNC embrionario, incluyendo el telencéfalo, diencéfalo y la retina.

Entrega génica eficaz en los territorios del SNC múltiples utilizando In Utero La electroporación

Este protocolo describe un procedimiento de explante mejorada que...

Ex utero electroporación y explantes enteros hemisferio: un método simple Experimental de Estudios del Desarrollo Cortical Temprana

La migración de los neuroblastos es un acontecimiento fundamental en la neurogénesis postnatal. Se describe un protocolo para el etiquetado de la eficiencia de los neuroblastos por electroporación in vivo postnatal y la posterior visualización de su migración utilizando time-lapse de rodajas de cerebro agudas. Incluimos una descripción para el análisis cuantitativo de la dinámica de neuroblastos de seguimiento de vídeo.

In vivo Postnatal electroporación y time-lapse de Neuroblast Migración en rodajas de cerebro de ratón aguda

La superficie pial es una zona de progenitor único en el sistema nervioso central que está recibiendo cada vez más atención. En esto, detallamos un método para la manipulación genética rápida de esta zona progenitor utilizando un método de electroporación modificado. Este procedimiento se puede utilizar para investigaciones celulares y moleculares de los linajes de células y vías de señalización implicadas en la diferenciación celular y para dilucidar el destino y las propiedades de las...

Neonatal electroporación superficie pial

Este procedimiento muestra cómo dirigirse a las interneuronas en el prosencéfalo del ratón en desarrollo mediante electroporación en el útero. Esta técnica fue particularmente eficiente para lograr la expresión génica selectiva en subtipos de interneuronas destinadas a las capas superficiales de la corteza.

-Subtipo selectivo electroporación de interneuronas corticales

Este manuscrito ofrece protocolos que utilizan en el útero de electroporación (IUE) para describir la conectividad estructural de las neuronas en el nivel de una sola célula y la excitabilidad de las neuronas marcadas con fluorescencia. Histología se utiliza para caracterizar dendríticas y proyecciones axonales. células enteras de grabación en rodajas agudas se utiliza para investigar la excitabilidad.

La electroporación en el útero métodos para estudiar la excitabilidad de las subpoblaciones neuronales y Conectividad Una sola célula

La electroporación doble en el útero permite apuntar a las poblaciones celulares que están separadas espacial y temporalmente. Esta técnica es útil para visualizar las interacciones entre las poblaciones celulares que utilizan proteínas fluorescentes en condiciones normales, pero también después de experimentos funcionales para perturbar los genes de interés.

Doble en electroporación de utero para apuntar a poblaciones celulares separadas temporal y espacialmente

Aquí se presenta un protocolo para realizar la manipulación genética en el cerebro de hurón embrionario utilizando en la electroporación del útero. Este método permite la focalización de células progenitoras neuronales en el neocórtex in vivo.

In Vivo Targeting of Neural Progenitor Cells in Ferret Neocortex by In Utero Electroporation

La electroporación de organoides cerebrales de primates proporciona un enfoque preciso y eficiente para introducir modificaciones genéticas transitorias en diferentes tipos de progenitores y neuronas en un sistema modelo cercano al desarrollo (pato)fisiológico del neocórtex de primates. Esto permite el estudio de los procesos evolutivos y del desarrollo neurológico y también se puede aplicar para el modelado de enfermedades.

Microinyección dirigida y electroporación de organoides cerebrales de primates para la modificación genética

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