Name: Parabiosis en ratones: un protocolo detallado (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-10-06T21:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 56 s
Description: Aprende el procedimiento de parabiosis en ratones para crear un sistema circulatorio compartido sin inmunosupresión. Esta técnica quirúrgica permite estudiar la quimerismo sanguíneo mediante citometría de flujo.

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Los autores desean agradecer a Adriane Mosley y Libuse Jerabek (Stanford) para obtener ayuda con la técnica quirúrgica.

Todos los estudios con animales se realizaron de acuerdo con las directrices de cuidado de los animales y el uso comité de la UCLA y los Institutos Nacionales de Salud de Guía para el Cuidado y Uso de Animales de Laboratorio. La duración del procedimiento que se describe a continuación es de aproximadamente 45 a 60 minutos de principio a fin. 1. Preparación de campo quirúrgico <ol><li> Realice el procedimiento en una sala de cirugía animal limpio. </li><li> Equipamiento: isoflurano vaporizador, Gaymer Bomba T con almohadilla térmica. </li><li> Herramientas estériles: dos pinzas curvas, tijeras finas, porta agujas. </li><li> Guantes estériles se deben utilizar durante todo el procedimiento. </li></ol> 2. Preparación de los animales <ol><li> Coloque dos ratones machos o hembras, de mismo fondo genético, de peso y de tamaño similar en la misma jaula y controlar durante al menos dos semanas para asegurar la cohabitación armoniosa. Los ratones hembra que se prefieren debido a su comportamiento menos agresivo. </li><li> Anestesiar animales porusando un vaporizador de isoflurano. Coloque los ratones en una cámara de inducción Posi-Seal conectados al vaporizador de isoflurano (4-5% v / v). Una vez que la anestesia se induce, transferir el animal a la zona de afeitado de la piel y mantener la anestesia durante todo el procedimiento a través de un cono de nariz conectado a isoflurano (1,5-2% v / v). Aplique una pomada oftálmica con un Q-tip para evitar que los ojos secos. </li><li> Colocar el animal en posición supina. A fondo afeitar el lado izquierdo del ratón a la izquierda y el lado derecho del ratón colocado a la derecha a partir de aproximadamente 1 cm por encima del codo hasta 1 cm por debajo de la rodilla. </li><li> Asépticamente preparar las áreas afeitadas limpiando a fondo (2-3x) con toallitas Betadine empapado seguido de toallitas con alcohol. Coloque el ratón sobre una almohadilla climatizada cubierta por una gasa estéril. </li><li> Para la analgesia, carprofeno y administrar buprenorfina por vía intraperitoneal o por vía subcutánea a una dosis de 10 mg / kg y 0,1 mg / kg, respectivamente. </li><li> Coloca los animales de su lado, de espaldas, con undjacent áreas afeitadas hacia arriba. Para evitar cualquier tipo de contaminación de la zona quirúrgica, cubra los ratones con un paño estéril exponiendo sólo el área de operación. Crear una pequeña abertura drapeado permanecer estéril cuando se realiza la cirugía. Hicimos la ventana cortina grande como para tener una mejor visión durante la grabación en vídeo. </li></ol> 3. Parabiosis <ol><li> Uso de una tijera afilada, realizar incisiones en la piel longitudinales a los lados afeitado de cada partida animal en 0,5 cm por encima del codo hasta el final a 0,5 cm por debajo de la articulación de la rodilla (Figura 1). Tras la incisión, separe suavemente la piel de la fascia subcutánea mediante la celebración de la piel con un par de pinzas curvas y separar la fascia con un segundo par de crear 0,5 cm de piel libre. Lleve a cabo esta separación a lo largo de toda la incisión. </li><li> Comience la unión uniendo el olécranon izquierda de un animal a la olécranon derecho de la otra. Ambos olecranons y articulaciones de la rodilla son claramente distinguibles siguiente ªincisión en la piel e. Para facilitar la unión, doble el codo del primer ratón y pasar la aguja de la no absorbible 3-0 sutura bajo el olécranon. Del mismo modo, doblar el codo de la segunda ratón y pasar la misma sutura debajo de ella. Coloque las juntas firmemente por un nudo quirúrgico doble. </li><li> Conectar las articulaciones de la rodilla siguiendo el mismo procedimiento. </li><li> Después de la fijación de las articulaciones, conecte la piel de los dos animales con un absorbible 5-0 Vicryl sutura continua a partir ventralmente desde el codo hacia la rodilla. Para evitar la rotura de la piel y la separación realizar un cierre estanco de sutura de la piel en el área alrededor de los codos y las rodillas. Una vez que la fijación a la piel ventral ha sido completado, realizar un nudo quirúrgico doble. Coloque el ratón en la posición prona y continuar con el dorsal de sutura que termina con un nudo quirúrgico doble. Verificar la continuidad de la sutura y confirmar la falta de aberturas. </li><li> Administrar 0,5 ml de NaCl al 0,9% por vía subcutánea a cada ratón para evitar deshidratación. </li></ol> 4. La recuperación postoperatoria <ol><li> Mantener a los animales en el cojín calentado hasta su recuperación. </li><li> Después de la recuperación, proporcionar analgésicos carprofeno y buprenorfina. Repita por vía intraperitoneal o por vía subcutánea cada 24 y 12 h, respectivamente, durante 48 horas a las mismas dosis descritas anteriormente (paso 2.5). Observar a los animales en busca de signos de dolor y angustia como temblores, letargia, la masticación de la cola, se arqueó hacia atrás, la falta de preparación, etc al día durante dos semanas. </li><li> Profiláctica, el tratamiento de ratones con sulfametoxazol / trimetoprima suspensión oral en su botella de agua de 2 mg sulfa / ml 0.4 mg / ml recortar por 10 días para prevenir infecciones bacterianas. </li><li> Casa cada par parabiotic en una jaula limpia con material de cama monolítica (por ejemplo, una toalla de papel o una almohadilla absorbente estéril) para prevenir la aspiración del material de cama. Volver a los animales a una jaula de cama rellenos cuando son capaces de mantener decúbito esternal con la cabeza erguida. Para reducir al mínimo la cepade llegar a los alimentos mientras se ajusta a la existencia parabiotic, colocar las bolitas de comida humedecida en el suelo de la jaula. Proporcionar material de nidificación. En 1-2 semanas los ratones parabiotic tienen la capacidad para caminar normalmente delanteras y traseras-extremidades pares quirúrgicamente. </li><li> Quimerismo sangre ocurre 10-14 días después de la cirugía. </li></ol> 5. Confirmación y procedimiento inverso <ol><li> Después de dos semanas extraer la sangre de las venas de la cola de cada ratón para el análisis de citometría de flujo-para confirmar el quimerismo de la sangre (Figura 3). </li><li> Procesado de la sangre para el análisis de citometría de flujo: diluir 2-3 gotas de sangre en 500 l de EDTA 10 mM. Añadir 500 l de 2% de dextrano (diluido en PBS), mezclar bien y se incuba a 37 ° C durante 30 min. Transferir el sobrenadante en un nuevo tubo, centrifugar a 1200 rpm durante 5 min y resuspender las células sedimentadas en PBS (u otro tampón) para el análisis de citometría de flujo. </li><li> Dependiendo del diseño experimental, el par parabiotic se puede separar unat puntos de tiempo posteriores. En nuestra experiencia, hemos mantenido pares parabiosed para hasta 9 meses sin ningún tipo de complicaciones. </li><li> Realice el procedimiento de reversa en una superficie quirúrgico estéril. Anestesie ratones colocándolos en una cámara de inducción conectada a un vaporizador de isoflurano (4-5%) y mantener la anestesia con isoflurano 1,5-2%, como se describe anteriormente (paso 2.2). </li><li> Retire el cabello del área que rodea la sutura inicial y preparar asépticamente las áreas afeitadas como se describe anteriormente (pasos 2.3, 2.4). </li><li> Para la analgesia, carprofeno y administrar buprenorfina por vía intraperitoneal o por vía subcutánea a una dosis de 10 mg / kg y 0,1 mg / kg, respectivamente. </li><li> Cubra el área quirúrgica con un paño estéril como se describió anteriormente (paso 2.6). </li><li> Usando unas tijeras afiladas, separar los ratones a través de una incisión longitudinal a lo largo de la sutura lateral y separar suavemente la fascia recién formado entre los dos ratones con un par de pinzas curvas. Para separar las articulaciones, cortar los nudos de la suturaconectarlos. Se quita la piel a lo largo de la incisión para lograr bordes lisos y vuelva a colocar la piel con una continua absorbible 5-0 recubierto de sutura Vicryl. </li><li> Para prevenir la deshidratación, administrar 0,5 ml de NaCl al 0,9% por vía subcutánea a cada ratón. Mantener a los animales en el cojín calentado hasta su recuperación. </li><li> Después de la recuperación, repita la administración de analgésicos, carprofeno (10 mg / kg) cada 24 horas y la buprenorfina (0,1 mg / kg) cada 12 horas durante 48 horas. </li><li> Para prevenir las infecciones bacterianas tratar ratones con sulfametoxazol / trimetoprima suspensión oral (2 mg sulfa / ml 0.4 mg de modelo / ml) en su botella de agua durante 10 días. </li></ol>

<ol><li>Bert, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exp%C3%A9riences+et+consid%C3%A9rations+sur+la+greffe+animale%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+de+l%27Anatomie+et+de+la+Physiologie%22%5BJournal%5D)">Expériences et considérations sur la greffe animale.</a> Journal de l'Anatomie et de la Physiologie. 1, 69-87 Forthcoming.</li>
<li>Bunster, E., Meyer, R. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improved+methods+of+parabiosis%5BTitle%5D)+AND+%22Anat.+Rec%22%5BJournal%5D)">Improved methods of parabiosis.</a> Anat. Rec. 57, 339-380 (1933).</li>
<li>Waskow, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+parabiotic+mice+for+the+study+of+DC+and+DC+precursor+circulation%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Generation of parabiotic mice for the study of DC and DC precursor circulation.</a> Methods Mol. Biol. 595, 413-428 (2010).</li>
<li>Finerty, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Parabiosis+in+physiological+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol.+Rev%22%5BJournal%5D)">Parabiosis in physiological studies.</a> Physiol. Rev. 32, 277-302 (1952).</li>
<li>Aicher, A., Heeschen, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nonbone+marrow-derived+endothelial+progenitor+cells%3A+what+is+their+exact+location%5BTitle%5D)+AND+%22Circ.+Res%22%5BJournal%5D)">Nonbone marrow-derived endothelial progenitor cells: what is their exact location.</a> Circ. Res. 101, e102(2007).</li>
<li>Abe, S., Boyer, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cells+derived+from+the+circulation+contribute+to+the+repair+of+lung+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Respir.+Crit.+Care+Med%22%5BJournal%5D)">Cells derived from the circulation contribute to the repair of lung injury.</a> Am. J. Respir. Crit. Care Med. 170, 1158-1163 (2004).</li>
<li>Donskoy, E., Goldschneider, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thymocytopoiesis+is+maintained+by+blood-borne+precursors+throughout+postnatal+life.+A+study+in+parabiotic+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Thymocytopoiesis is maintained by blood-borne precursors throughout postnatal life. A study in parabiotic mice.</a> J. Immunol. 148, 1604-1612 (1992).</li>
<li>Powell, A. E., Anderson, E. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fusion+between+Intestinal+epithelial+cells+and+macrophages+in+a+cancer+context+results+in+nuclear+reprogramming%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Fusion between Intestinal epithelial cells and macrophages in a cancer context results in nuclear reprogramming.</a> Cancer Res. 71, 1497-1505 (2011).</li>
<li>Duyverman, A. M., Kohno, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+transient+parabiosis+skin+transplantation+model+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Protoc%22%5BJournal%5D)">A transient parabiosis skin transplantation model in mice.</a> Nat. Protoc. 7, 763-770 (2012).</li>
<li>Ajami, B., Bennett, J. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Local+self-renewal+can+sustain+CNS+microglia+maintenance+and+function+throughout+adult+life%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Local self-renewal can sustain CNS microglia maintenance and function throughout adult life.</a> Nat. Neurosci. 10, 1538-1543 (2007).</li>
<li>Weissman, I. L., Jerabek, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tolerance+and+the+H-Y+antigen%3A+Requirement+for+male+T+cells%2C+but+not+B+cells%2C+to+induce+tolerance+in+neonatal+female+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Tolerance and the H-Y antigen: Requirement for male T cells, but not B cells, to induce tolerance in neonatal female mice.</a> Transplantation. 37, 3-6 (1984).</li>
</ol>

Los autores no tienen intereses financieros en competencia.

El método parabiosis discutido aquí presenta dificultades técnicas mínimas y los resultados de las tasas de mortalidad bajas. La unión de las articulaciones de rodilla y de codo es una mejora significativa de la Bunster y la técnica Meyer. Sin embargo, el procedimiento sigue siendo invasiva así el mantenimiento de las condiciones estériles durante toda la cirugía es imperativo. Para prevenir una infección del sitio quirúrgico, es importante que los animales parabiosed reciben una combinación de antibióticos y ser contro...

Parabiosis, uniéndose a la cirugía de dos organismos, fue descrita por primera vez en 1864 por Paul Bert como una manera de desarrollar un modelo para estudiar los sistemas circulatorios compartidos y consistió en la unión de la piel y paredes musculares de dos ratas 1. Parabiosis promueve la formación de la microvasculatura en el sitio de la inflamación 3 y ha tenido varias aplicaciones en estudios fisiológicos, tales como la comunicación hormonal entre la glándula pituitaria y de las gónadas, así como la función del riñón en la hipertensión 4. Se ha empleado más para investigar la contratación y la integración de las células progenitoras de la neovascularización 5, la migración de las células madre hematopoyéticas 6, y el tráfico de linfocitos 7, así como el papel y la cinética de células inflamatorias circulantes y tallos en la metástasis tumoral 8,9, y enfermedad neurodegenerativa 10. Una ventaja importante de las mentiras parabiosisen que los animales asociado comparten antígenos circulantes comunes, lo que permite la migración celular y la neovascularización sin desencadenar una reacción inmunológica. Es importante destacar que, Weissman et al. Han demostrado que parabiosis entre los ratones macho y hembra no conduce a la formación de anticuerpos anti HY anticuerpos 11. En el protocolo original descrito por Paul Bert los dos animales se unen entre sí a través de la conexión de la piel y paredes musculares 1. Este método, sin embargo, causó una gran tensión a los animales y se tradujo en una alta mortalidad debido a la infección de la herida. Desde entonces la técnica parabiosis ha sido revisado por varios grupos con ser el más predominante el protocolo propuesto por Bunster y Meyer en 1933 2. Su método incluye la unión de las articulaciones de escápula, las cavidades del cuerpo, y la piel, lo que permite un mejor apoyo y menos dolor para los animales. Al mismo tiempo, el nuevo método dio como resultado en la atención y sig post-operatorio mínimodisminuyó significativamente las tasas de mortalidad. El protocolo descrito en el presente documento es una modificación de la técnica de Bunster y Meyer que es menos invasiva y permite más firme unión. A saber, los ratones se conectan a través de las articulaciones del codo y de la rodilla, así como la piel. Esto evita que unirse a la extensión de la piel y por lo tanto causa menos dolor y las complicaciones. Aquí se describe la unión de un tipo salvaje (WT) de ratón adulto a un GFP constitutiva expresando ratón. Mostramos que dos semanas después de la cirugía que pueden alcanzar 50% de quimerismo en la sangre que demuestra la eficacia de este procedimiento quirúrgico para crear un sistema circulatorio compartido.

<table><tbody><tr><td>Isoflurano-Phoenix</td><td>Clipper</td><td>NDC 57319-559-06</td><td></td></tr><tr>Cámara<td>de inducción Posi-Seal</td><td>Productos de imágenes moleculares</td><td>AS-01-0530-SM</td><td></td></tr><tr><td>Sistema de anestesia portátil</td> Productos de <td>imágenes moleculares</td><td>AS-01-0007</td><td></td></tr><tr><td>Bomba Gaymer T</td><td>Gaymar Industries, Inc</td><td>TP650</td><td></td></tr><tr><td>Manta térmica (almohadilla térmica)</td><td>Kent Scientific Corp</td><td>TP-22G</td><td></td></tr><tr><td>Pinza curva</td><td>Roboz</td><td>RS-5101</td><td></td></tr><tr><td>Tijeras</td><td>Fine Science Tools (FST)</td><td>FST 14063-09</td><td></td></tr><tr><td>Portaagujas</td><td>FST FST</td><td>12501-13</td><td></td></tr><tr><td>Afeitadora eléctrica</td><td>Oster</td><td>Golden A5</td><td></td></tr></tbody></table>

parabiosis en ratones: un protocolo detallado

Parabiosis in Mice: A Detailed Protocol

Parabiosis es una unión quirúrgica de dos organismos que permiten el intercambio de la circulación sanguínea. Colocación de la piel de dos animales promueve la formación de la microvasculatura en el sitio de la inflamación. Socios parabiotic comparten sus antígenos circulantes y por lo tanto están libres de la reacción inmunitaria adversa. Descrita por primera vez por Paul Bert en 1864 1, la cirugía parabiosis fue refinado por Bunster y Meyer en 1933 para mejorar la supervivencia de los animales 2. En el protocolo actual, dos ratones se unen quirúrgicamente tras una modificación de la técnica de Bunster y Meyer. Los animales están conectados a través de la articulación del codo y de la rodilla, seguido de la unión de la piel permitiendo un apoyo firme que impide que la tensión en la piel suturada. En este documento, se describe en detalle el parabiotic unión de un GFP ubicua expresando ratón a una de tipo salvaje (WT) de ratón. Dos semanas después del procedimiento, el par se separa y células positivas para GFP se puede detectar por análisis de citometría de flujo en la sangre circulanteion del ratón PESO. El quimerismo de la sangre permite examinar la contribución de las células circulantes de un animal en el otro.

El resultado anticipado de parabiosis de dos organismos es la contribución igual de sistema circulatorio de cada animal a una circulación de la sangre común (Figura 2). Se puede verificar fácilmente el equilibrado exitoso de la sangre de la parabiosed WT y ratones GFP positivos por análisis de citometría de flujo. Aquí, la sangre venosa se obtuvo de las colas de ambos parabionts a las 2 semanas después de la cirugía y se fraccionó para las células de sangre periférica (para excluir eritrocitos). La frac...

Parabiotic unión de dos organismos conduce al desarrollo de un sistema circulatorio compartido. En este protocolo, se describen los pasos quirúrgicos para formar una conexión parabiotic entre un ratón de tipo salvaje y un ratón que expresa GFP constitutiva.

Parabiosis en ratones: un protocolo detallado

Parabiosis is a surgical union of two organisms allowing sharing of the blood circulation. Attaching the skin of two animals promotes formation of ...

El objetivo general de este procedimiento es realizar la unión parabiótica de dos ratones para estudiar un sistema circulatorio compartido. Esto se logra primero realizando una incisión en los lados adyacentes de los animales. Después de separar la fascia, los dos ratones se conectan firmemente en las articulaciones del codo y la rodilla.El paso final consiste en conectar la piel de los dos animales mediante una sutura continua. En última instancia, el análisis citométrico de flujo puede mostrar quimerismo sanguíneo entre 10 y 14 días después del procedimiento. La principal ventaja de esta técnica frente a los métodos existentes, como el trasplante de médula ósea o la inyección de células, es que no requiere inmunosupresión y además permite mantener la circulación CX durante un período prolongado de tiempo.El procedimiento será demostrado por punctu jaw. El cirujano animal de mi laboratorio, con al menos dos semanas de anticipación, prepare varias jaulas con parejas de ratones del mismo sexo, preferiblemente hembras, con la misma genética y tamaño y peso similares. Una vez que se haya seleccionado una pareja armoniosa, realice la parabiosis en una sala de cirugía animal limpia.Asegúrese de que todas las herramientas y guantes en contacto con superficies sean estériles. Anestesie los ratones en una cámara de inducción sellada PAI conectada a un vaporizador de isoflurano. Una vez inducida la anestesia, manténgala durante todo el procedimiento.Utilizando un cono nasal, administre una concentración más baja de isoflurano, ahora afeite el vello abdominal en lados opuestos y aplique una pomada oftálmica. A continuación, de forma aséptica, prepare las áreas afeitadas limpiándolas completamente con toallitas impregnadas de betadina, seguidas de toallitas con alcohol.A continuación, transfiera los ratones a una almohadilla calefaccionada cubierta con una almohadilla estéril. Para la analgesia, utilice carprofeno y buprenorfina. Coloque los ratones de lado, espalda contra espalda, con las áreas afeitadas hacia arriba.Luego cubra los ratones con un campo estéril, dejando expuesta únicamente el área operatoria. Con unas tijeras afiladas, realice incisiones cutáneas longitudinales a los lados de cada animal, comenzando medio centímetro por debajo de la articulación de la rodilla y terminando medio centímetro por encima del codo. Tras el corte, separe suavemente la piel de la fascia subcutánea sosteniendo la piel con un par de pinzas curvas y separando la fascia con un segundo par.Para crear medio centímetro de piel libre, los CLC y las articulaciones de la rodilla son claramente distinguibles. Después de la incisión en la piel, comience a unir los CLC izquierdo y derecho. Primero, doble el codo del primer ratón y pase la aguja del sutura 3.0 por debajo de Theon.En segundo lugar, flexione el codo del segundo ratón y pase la misma sutura por debajo. Fije las articulaciones firmemente con un nudo quirúrgico doble. A continuación, conecte las articulaciones de las rodillas siguiendo el mismo procedimiento.Después de la fijación de las articulaciones, una la piel de los dos animales con una sutura continua absorbible de Vicryl 5-0. Comience ventralmente desde el codo para prevenir la ruptura y separación de la piel.Realice cierres con suturas ajustadas de la piel en las áreas alrededor de los codos y las rodillas. Conectar la piel de los ratones es un paso crítico de este procedimiento. Es importante asegurar que los ratones queden firmemente unidos para evitar roturas y separaciones después de la cirugía.Por lo tanto, cada cuatro a cinco meses, confirmamos que la piel está firmemente unida. Una vez completada la fijación de la piel ventral, coloque los ratones en posición prona y continúe el punto de sutura dorsalmente, finalizando con un nudo quirúrgico doble. Verifique la continuidad del sutura y confirme que no presenta aberturas.Finalice la cirugía administrando medio mililitro de cloruro de sodio al 0,9 % por vía subcutánea a cada animal para prevenir la deshidratación. Mantenga a los animales sobre la almohadilla calefaccionada hasta que se recuperen. Aloje a cada par parabiótico en una jaula limpia con gránulos de alimento humedecidos para minimizar el esfuerzo de alcanzar el alimento mientras se adaptan a la existencia parabiótica.Coloque los comprimidos de alimento sobre el suelo de la jaula. Además, asegúrese de proporcionar material para anidar durante las primeras 48 horas posteriores a la cirugía. Administre carprofeno cada 24 horas y buprenorfina cada 12 horas diariamente durante dos semanas.Observe a los animales en busca de signos de dolor y malestar, como temblores, letargo, mordedura de cola, espalda encorvada, falta de aseo y demás. Para prevenir infecciones bacterianas durante los primeros 10 días posteriores a la cirugía, trate a los ratones con una suspensión oral de sulfametoxazol y trimetoprima en su botella de agua. La cism sanguínea ocurrirá entre 10 y 14 días después de la cirugía.Después de dos semanas, extraiga sangre de sus venas de la cola para confirmar que esto ha ocurrido. Utilice citometría de flujo para analizar la sangre. Diluya de dos a tres gotas en 500 microlitros de EDTA 10 milimolar.Luego mezcle completamente la dilución con 500 microlitros de dextrina al 2% en PBS. Incube la mezcla sanguínea a 37 grados Celsius durante 30 minutos y luego centrifúguela para recoger el sobrenadante. Para la práctica.Los pares de probióticos pueden mantenerse juntos durante nueve meses y separarse sin complicaciones. Realice el procedimiento inverso sobre una superficie quirúrgica estéril. Utilice el mismo protocolo de anestesia descrito previamente y retire el vello de la zona que rodea la sutura inicial.Después de preparar asépticamente la piel afeitada, administre los analgésicos y cubra el área quirúrgica con un campo quirúrgico utilizando tijeras afiladas. Separe los ratones mediante una incisión longitudinal a lo largo de la sutura lateral para separar las articulaciones, corte los nudos de la sutura que las conectan en cada ratón. Recorte la piel a lo largo de la incisión para suavizar los bordes.Luego, vuelva a colocar la piel con una sutura continua absorbible de Vicryl recubierta 5-0 para prevenir la deshidratación, administre medio mililitro de cloruro de sodio al 0,9 % por vía subcutánea y mantenga a los animales sobre una camilla térmica hasta que se recuperen de la anestesia. Utilice los mismos tratamientos analgésicos y antibacterianos posoperatorios descritos previamente; el resultado esperado de una parabiosis entre dos organismos es la contribución equitativa del sistema circulatorio de cada animal a una circulación sanguínea común. El equilibrio de la sangre procedente de ratones parabióticos de tipo salvaje y ratones positivos para GFP se investigó mediante análisis citométrico de flujo, en concordancia con estudios previos.La sangre del ratón de tipo salvaje reveló la presencia de quimerismo, indicada por aproximadamente la mitad de las células sanguíneas positivas para GFP y la mitad de tipo salvaje. Una vez dominada, esta técnica puede realizarse en 45 a 60 minutos si se lleva a cabo correctamente.

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