Name: Córnea Preparación de Tejidos de Donantes para la Membrana de Descemet queratoplastia endotelial (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-09-17T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 46 s
Description: Aprende la preparación de tejido endotelial de DMEK mediante disección manual controlada de la membrana de Descemet. Este método seguro y reproducible mejora los resultados en la queratoplastia endotelial.

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1. Configuración de campo estéril <ol><li> Don atuendo adecuado incluyendo gorro y mascarilla. Use protección para los ojos cuando en la sala de procesamiento. </li><li> Prepare el área de procesamiento. Cuando se utiliza una sala de procesamiento, mantener la operación continua del ventilador para crear presión positiva en la habitación. </li><li> Reúna todos los suministros. Compruebe las fechas de caducidad, la integridad del envase, y el indicador de esterilización. </li><li> Lavarse las manos y ponerse los guantes no estériles. </li><li> Abra los kits estériles para establecer un campo estéril. Al utilizar una sala de procesamiento, colocar los kits en la mesa y asépticamente abrir las envolturas. No utilizar los exteriores de 1 ½ pulgadas de la envoltura como parte del campo estéril ya que este segmento se considera no estéril. </li><li> Utilizando una técnica aséptica, abierta y soltar elementos estériles en campo estéril a menos que ya forman parte del paquete de preparado de antemano. </li><li> Mueva microscopio de modo que está por encima del campo estéril, encienda la fuente de luz de microscopio, y ajustar los oculares según sea necesario. </li><li> Obtain tejido corneal para ser despojado (en los medios de conservación) y el lugar al lado de la zona de procesamiento estéril preparada. Afloje la tapa de la cámara de observación y se deja reposar en la parte superior de la visualización de fondo de la cámara sin hilos dedicados. Deseche los guantes no estériles. </li><li> Abra un par de guantes estériles y bata estéril con una toalla. </li><li> Realizar lavado quirúrgico. Ponga en bata estéril, guantes estériles entonces. </li><li> Cajas de instrumentos abiertas para que todos los suministros son accesibles. Abrir la humedad cortina impermeable para crear el área de trabajo. </li><li> Coloque la aguja a una jeringa de 5 cc. Utilizando una pinza hemostática, preparar la aguja de 30 G mediante la colocación de una curva 1 mm del bisel, y otra curva 1 mm desde la base (para formar una forma de &quot;S&quot;). </li><li> Montar la jeringa de vidrio para la tinción de azul de tripano al colocar el émbolo en la jeringa y el dedo apretando el émbolo. Conecte la cánula. </li><li> Conecte la cánula a la botella de solución salina balanceada (BSS). </li><li> Separar el ponche trépano desde el bloque de vacíoy dejar de lado. Centre el bloque de vacío dentro del campo de visión del microscopio. </li><li> Traiga el bloque vacío en foco ajustando la configuración del microscopio. </li></ol> 2. Procedimiento para la Preparación del Tejido Donante <ol><li> Levante la tapa de la cámara de visión usando cuadrado de lámina como barrera. Con la mano opuesta y con unas pinzas, agarre suavemente córnea esclerótica llanta para eliminar córnea. Vuelva a colocar la tapa de la cámara de observación. </li><li> Completamente deprimir la jeringa de succión, a continuación, coloque el lado epitelial de la córnea hacia abajo el bloque de vacío y asegúrese de que está centrado. (Figura 1) </li><li> Baje suavemente el anillo de asientos en el bloque vacío utilizando los postes de guía. Enganche de vacío liberando lentamente el pistón de la jeringa de aspiración. Retire el anillo de asiento y reservar. (Figura 2). </li><li> Realizar una trepanación parcial para anotar a través de la membrana de Descemet. </li><li> Ajuste microscopio zoom y el enfoque de manera que el tejido se visualiza bien. </li><li&gt; Incline el bloque vacío y utilizar una lanza hisopo estéril colocado en el limbo para eliminar el exceso de medio. (Figura 3) </li><li> Coloque suficiente mancha en el limbo para teñir el borde de la membrana de Descemet marcado. Permita que la mancha de permanecer en el endotelio de 60-90 seg. (Figura 4) </li><li> Elimine las manchas: <ol><li> Incline el bloque de vacío para verter la mancha de la córnea y en la almohadilla de gasa. </li><li> Utilice las lanzas quirúrgicas para eliminar el exceso de colorante de la zona del limbo de la córnea, con cuidado de no tocar el endotelio. (Figura 5) </li></ol></li><li> Utilice varias gotas de BSS para enjuagar la córnea de solución de tinción, y lanzas de hisopos estériles para eliminar el exceso de BSS. (Figura 6) </li><li> Coloque 1-2 gotas de BSS en el borde esclerótica para evitar que el tejido de secado. Repita según sea necesario a lo largo del procedimiento. </li><li> Lleve a cabo la disección parcial de la membrana de Descemet: <ol><li> Comenzando en el que el tubo de conectars para el bloque de vacío, utilizando fórceps abierto, coloque una punta en el borde de la marca de puntuación y la membrana de Descemet separada suavemente y el endotelio lejos de la estroma. (Figura 7). </li><li> Membrana de Descemet separada y el endotelio no más de 1 mm del borde marcado y continuar la disección alrededor de 360 ​​°. (Figura 8). </li><li> Nota ubicación de cualquier lágrimas micro mediante la colocación de un punto en el bloque de vacío con el marcador de la piel. NOTA: Si el trépano no penetra completamente a través de la membrana de Descemet, utilizar el borde biselado de la aguja de 30 g preparado para completar la puntuación a través de la membrana de Descemet cuando sea necesario, seguido por una segunda aplicación de tinción según sea necesario. Si la adherencia de la membrana de Descemet está impidiendo la disección parcial, eliminar el endotelio fuera del área trephinated según sea necesario. </li></ol></li><li> El uso de fórceps para quitar cualquier etiqueta endoteliales que se superponen la marca de puntuación. </li> &lt;li&gt; Tenga en cuenta la ubicación de los previamente marcados micro desgarros y girar el bloque vacío para que el más grande es a las 6 en punto. Esto se convertirá en la bisagra del colgajo. </li><li> Usando las pinzas, agarre la membrana de Descemet a las 12 horas. Separar suavemente la membrana de Descemet del estroma por pelado hacia la bisagra. Crear la bisagra al detener la separación de 2 mm desde la marca de puntuación. NOTA: los bordes periféricos de aleta comenzarán a desplazarse durante la separación. (Figura 9). </li><li> Coloque con cuidado la tapa en su lugar en el estroma. Utilice BSS y de frotis lanzas a unscroll el endotelio y devolverlo a su posición original. (Figura 10A-C) </li><li> Extraer el líquido residual de entre la membrana y el estroma de Descemet con lanzas de hisopos estériles por lo que el colgajo se mantiene en su posición. (Figura 11) </li><li> Utilice lanzas hisopos estériles para absorber el exceso de humedad de la esclerótica cerca de la bisagra. Utilice el marcador de la piel para dibujar unn punta de flecha en el borde esclerótica apuntando al centro de la bisagra, eliminar cualquier exceso de tinta usando una lanza hisopo estéril. (Figura 12) </li><li> Liberación de vacío presionando el émbolo de la jeringa conectada al bloque de vacío. Si bien se desengancha de vacío, el uso de fórceps para quitar córnea desde el bloque de vacío. </li><li> Levante la tapa de la cámara de visión usando cuadrado de lámina como barrera. Coloque la córnea en la cámara de visión, lado endotelial, y coloque la tapa de la cámara de observación. </li><li> Repita los pasos anteriores procedimientos con compañero de córnea, en su caso. Utilice una gasa para limpiar el bloque de vacío antes de procesar el segundo tejido. </li><li> Apriete la tapa (s) cámara de visualización y extirpar tejido de la zona de elaboración. </li><li> Divida el campo estéril, por deshacerse de artículos según Biopeligroso Plan de Gestión de Residuos. Quítese los guantes contaminados, y vestido. Lavarse las manos y ponerse los guantes no estériles. </li><li> Realizar post-corte evaluación lámpara de hendidura y microscopía especular de la córnea (s)y registrar los resultados. </li></ol>

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Hassan Tausif y Dr. Navasuja Chandrasekaran tienen nada que revelar. Dres. Mian, Shtein, y Woodward son directores médicos para el Banco de Ojos Michigan. Sr. Mavin, el Sr. Tito, y la señora Johnson son empleados de Midwest Bancos de Ojos.

La capa de células endoteliales de la córnea juega un papel crítico en el mantenimiento de la claridad de la córnea a través de la deshidratación. Enfermedades de las células endoteliales pueden resultar en discapacidad visual significativa. DMEK pretende reemplazar las células endoteliales enfermas con un injerto de donante que consiste en membrana y capa de células endoteliales de Descemet. La preparación del tejido de los donantes con un DM intacto y recuento de células endoteliales adecuada son fundamentales para la...

Queratoplastia endotelial (EK) ha reemplazado rápidamente queratoplastia penetrante (PKP) como el procedimiento de elección para el tratamiento de enfermedades endoteliales que representan más del 50% de todos los trasplantes realizados en los Estados Unidos en 2012 6. PKP está limitada por la rehabilitación visual prolongado con alto astigmatismo y la inestabilidad de refracción, la pérdida de la integridad de globo y las complicaciones relacionadas sutura. Procedimientos EK primera generación, incluyendo profunda lamelar queratoplastia endotelial (DLEK) involucrados disección manual estroma corneal con el trasplante de tejido de grosor parcial de los donantes. Estos procedimientos tuvieron éxito en el trasplante de tejido endotelial donante, manteniendo una superficie corneal intacto pero eran técnicamente desafiante y dio lugar a limitado la agudeza visual mejor corregida debido a una irregular corneal lamelar interfaz 1. El procedimiento EK actual de elección es de Descemet Stripping queratoplastia endotelial (DSEK) que ofrece clar cornealdad con una recuperación más rápida de la visión, minimiza el error de refracción postoperatoria y astigmatismo, y disminuye el riesgo de dehiscencia de la herida traumática mientras se mantiene la superficie corneal 7. Este procedimiento implica la eliminación de la membrana de Descemet y el endotelio enfermo y el reemplazo con donante de espesor parcial tejido corneal que comprende una nueva capa de células endoteliales. La córnea donante se diseca con un microqueratomo para preparar el tejido posterior de ser trasplantadas 8. Preparación del tejido del donante por los ojos-los bancos ha sido fundamental en el rápido crecimiento y, sin duda, el éxito de este procedimiento. El aumento de 16 veces cerca de procedimientos DSEK en los Estados Unidos entre 2005 y 2012 corresponde a casi la mitad del tejido que está preparando los ojos-los bancos 6. Aunque DSEK puede mejorar la agudeza visual de 20/40 o mejor, la mayoría de los pacientes no logran 20/20 visión debido a la neblina interfaz del estroma y el aumento de la luzdispersar desde la adición de donante de tejido estromal 7. La técnica quirúrgica EK ha progresado a la membrana de Descemet queratoplastia endotelial (DMEK) que implica el trasplante de membrana de Descemet único donante (DM) y el endotelio. Este procedimiento tiene una mayor proporción de pacientes que alcanzan 20/20 visión, la recuperación visual más rápida y un menor riesgo de rechazo endotelial 9. Sin embargo, la preparación de tejido del donante es más difícil debido a las dimensiones delgadas de injerto.

<table><tbody><tr><td>VisionBlue</td><td>D.O.R.C., Zuiland, Países Bajos</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Punzón de vacío Barron</td><td>Katena, Denville, Nueva Jersey</td><td>K20-2112</td><td></td></tr></tbody></table>

córnea preparación de tejidos de donantes para la membrana de descemet queratoplastia endotelial

Corneal Donor Tissue Preparation for Descemet's Membrane Endothelial Keratoplasty

Queratoplastia endotelial de membrana de Descemet (DMEK) es una forma de trasplante de córnea en el que sólo una única capa de células, el endotelio corneal, junto con su membrana basal (membrana de Descemet) se introduce en el estroma posterior del receptor 3. A diferencia de Descemet Stripping Automated queratoplastia endotelial (DSAEK), donde se introduce estroma adicional de los donantes, no se crea una interfaz natural de estroma a estroma. Como resultado, la anatomía natural de la córnea se conserva tanto como sea posible que permita mejorar el tiempo de recuperación y la agudeza visual 4. Queratoplastia endotelial (EK) es el procedimiento de elección para el tratamiento de la disfunción endotelial. Las ventajas de EK incluyen la rápida recuperación de la visión, la preservación de la integridad ocular y el cambio de refracción mínimo debido al uso de una pequeña incisión, periférica 1. DSAEK utiliza tejido de donante preparado con espesor parcial estroma y el endotelio. El rápido success y la utilización de este procedimiento se puede atribuir a la disponibilidad de ojo-Banco preparó tejido precortado. Los beneficios de la preparación ojo-banco de tejido donante incluyen la eliminación de la necesidad de equipo especializado en la sala de operaciones y la disponibilidad de copia de seguridad de tejido del donante en caso de perforación de tejido durante la preparación. Además, la preparación de alto volumen de tejido del donante por técnicos ojo-banco puede proporcionar una mejor calidad de tejido del donante. DSAEK puede haber limitado la agudeza visual mejor corregida debido a la creación de una interfaz de estroma entre el donante y la córnea destinatario. La eliminación de esta interfaz con el trasplante de membrana y endotelio único donante de Descemet en DMEK puede mejorar los resultados visuales y reducir las complicaciones después de EK 5. Similar a DSAEK, el éxito a largo plazo y la aceptación de DMEK depende de la facilidad de disponibilidad de precorte, ojo-banco prepara tejido del donante. Aquí presentamos un enfoque paso a paso para la preparación del tejido donante que puede reducir barriERS oculares bancos enfrentan en la prestación de los injertos DMEK.

Separación adecuada de DM y el endotelio de estroma es esencial en la preparación de tejido precortado para DMEK. Cincuenta córneas de donantes con una edad media de 65 ± 6 años (rango 55-75), muerte a tiempo de procesamiento de 5,9 ± 2,3 días (rango 1-10) y la densidad de células endoteliales (ECD) de 2.616 ± 321 células / mm 2 ( rango de 2,049-3,247) se utilizaron para evaluar la viabilidad y la reproducibilidad de la técnica de preparación quirúrgica por dos técnicos del banco de ojos. La tasa de éxito fue...

Queratoplastia endotelial es una técnica quirúrgica en continua evolución como resultado avances en el trasplante de injertos más delgadas con cada sucesión 1. Aquí presentamos una técnica para la disección del tejido manual de control para permitir la separación segura y repetible del endotelio y de las membranas de Descemet de botones corneoesclerales donantes para el trasplante 2.

Córnea Preparación de Tejidos de Donantes para la Membrana de Descemet queratoplastia endotelial

Descemet&#8217;s Membrane Endothelial Keratoplasty (DMEK) is a form of corneal transplantation in which only a single cell layer, the corneal endothelium, ...

El objetivo general de este procedimiento es preparar el tejido endotelial Demas para la inserción de DMEC. Esto se logra realizando primero una trepanación parcial y aplicando tinte para visualizarlo. A continuación, se realiza una disección parcial de 360 grados en la línea TATed entre el estroma S y la membrana demas.Luego, la membrana de Demas se despega manualmente del lecho estromal, dejando solo una pequeña bisagra adjunta. Finalmente, la membrana de Demas se devuelve al lecho estromal y se elimina cualquier líquido residual entre ellas. En última instancia, la plastia endotelial de membrana Demas que utiliza preparaciones de tejido precortado es una forma segura y repetible de disección manual controlada de tejido que se utiliza para tratar la enfermedad endotelial.La principal ventaja del banco de ojos que prepara el tejido donante de plastia endotelial de membrana diezmada es que reduce el riesgo de pérdida de tejido en la preparación y mejora la eficiencia en el quirófano para el cirujano. Generalmente, los cirujanos en cada una de estas técnicas pueden tener dificultades al principio porque pueden tener dificultades para evitar el desgarro de la membrana de Demas, especialmente durante la disección parcial y el stripping de Demas. La demostración visual de esta técnica es fundamental porque los pasos de separación son difíciles de describir. En particular, la delimitación exitosa entre deses y estroma Demostrando el procedimiento estará Lauren Johnson, gerente de procesamiento de tejidos del laboratorio Midwest Ibis, Michigan.Para comenzar a preparar el tejido endotelial de Demas, amanece con la vestimenta adecuada, incluida una gorra y una mascarilla, y use protección para los ojos en la sala de procesamiento. Prepare la sala de procesamiento encendiendo primero el ventilador para crear una presión positiva. Organice todos los suministros, asegurándose de verificar las fechas de vencimiento, la integridad de los paquetes y los indicadores de esterilización con las manos recién lavadas, y mientras usa guantes estériles, establezca un campo estéril abriendo asépticamente las envolturas.Evite usar la pulgada y media exterior de la envoltura como parte del campo estéril, ya que esta porción se considera no estéril, deje caer los artículos estériles en el campo estéril. A continuación, coloque el microscopio sobre el campo estéril. Encienda la fuente de luz y ajuste los oculares según sea necesario mientras obtiene el tejido corneal que se va a extraer.Colóquelo junto al área de procesamiento estéril preparada. Afloje la tapa de la cámara de visualización y colóquela en la parte superior de la cámara de visualización sin roscas enganchadas y deseche los guantes no estériles. A continuación, abra, un par de guantes estériles y una bata estéril con toalla.Realice una exfoliación quirúrgica antes de ponerse la bata estéril y luego los guantes estériles. Abra las cajas de instrumentos para que todos los suministros estén accesibles y abra una cortina permeable a la humedad para crear el área de trabajo. Ensamble la jeringa de vidrio para la mancha suelta de trian colocando el émbolo en la jeringa y apretando el émbolo con los dedos.Conecte una cánula a la jeringa de azul trian y una segunda cánula al frasco de solución salina balanceada. Separe el punzón de refinamiento TR del bloque de vacío y déjelo a un lado. A continuación, centre el bloque de vacío dentro del campo de visión del microscopio antes de ajustar la configuración del microscopio para enfocar el bloque de vacío.Usando un cuadrado de aluminio como barrera, levante la tapa de la cámara de visualización con la mano opuesta y con pinzas. Agarre la córnea por el borde de la esclerótica para extraer la córnea del medio de almacenamiento. Luego vuelva a colocar la tapa de la cámara de visualización, presione completamente una jeringa de succión.A continuación, coloque el lado epitelial de la córnea hacia abajo en el bloque de vacío y asegúrese de que esté centrado. Con los postes guía, baje suavemente el anillo de asiento en el bloque de vacío. Retire el anillo de asiento y déjelo a un lado con el tejido enfocado y bien visualizado bajo el microscopio.Realice una trepanación parcial para marcar a través de la membrana demas. Incline el bloque de vacío y use una lanza de hisopo estéril colocada en el limbo para eliminar el exceso de medio. A continuación, coloque suficiente tinte en el limbo para manchar el borde de la partitura.La membrana Demas permite que la tinción permanezca en el endotelio durante 60 a 90 segundos. A continuación, utilice las punzas quirúrgicas para eliminar el exceso de mancha de la zona limbal de la córnea. Teniendo cuidado de no tocar el endotelio con varias gotas de BSS.Enjuague la córnea de la solución de tinción y use hisopos estériles para eliminar el exceso de BSS. A continuación, coloque una o dos gotas de BSS en el borde de la esclerótica para evitar que el tejido se seque. Repita según sea necesario durante todo el procedimiento para realizar una disección parcial de la membrana desema con pinzas abiertas, coloque una punta en el borde de la marca y separe suavemente la membrana desema y el endotelio del estroma.Separe la membrana y el endotelio de Descemet, a no más de uno o dos milímetros del borde marcado, y continúe la disección 360 grados alrededor. Anote la ubicación de cualquier micro desgarro usando un marcador de piel para colocar un punto en el bloque de aspiradora. Use fórceps para quitar cualquier etiqueta endotelial que se superponga a la marca de puntuación.A continuación, localice los micro desgarros previamente marcados y gire el bloque de vacío para que el más grande quede a las seis en punto. Esto se convertirá en la bisagra de la solapa. A continuación, con las pinzas, agarre la membrana de la SMA a las 12 en punto.A continuación, sepárelo suavemente del estroma S despegándolo hacia la bisagra. Cree la bisagra deteniendo la separación a dos milímetros de la marca de puntuación. Vuelva a colocar suavemente la solapa en su lugar sobre el estroma S.Utilice BSS y lanzas de hisopo para deshacer el endotelio y devolverlo a su posición original. Retire el líquido residual entre la membrana demas y el estroma para que el colgajo permanezca en su posición. Absorbe el exceso de humedad de la esclerótica cerca de la bisagra.Use un marcador de piel para dibujar una punta de flecha en el borde de la esclerótica, apuntándola hacia el centro de la bisagra y elimine el exceso de tinta. Libere el vacío presionando el pistón de la jeringa conectada al bloque de vacío mientras el vacío está desacoplado. Use fórceps para quitar la córnea del bloque de vacío usando un cuadrado de aluminio como barrera.Levante la tapa de la cámara de visualización. Coloque la córnea en la cámara de visualización con el lado endotelial hacia arriba. Vuelva a colocar la tapa y apriétela.Finalmente, después de extraer el tejido del área de procesamiento y descomponer el campo estéril de acuerdo con el protocolo de texto, realice la evaluación con lámpara de hendidura posterior al corte y la microscopía especular de las córneas y registre los hallazgos. 50 córneas de donantes con una edad media de 65 años más o menos seis años Muerte hasta un tiempo de procesamiento de 5,9 más o menos 2,3 días, y se utilizó una densidad de células endoteliales o ECD de 2.616 más o menos 321 células por centímetro cuadrado para evaluar la viabilidad y reproducibilidad de la técnica de preparación quirúrgica. La tasa de éxito fue del 72% en los primeros 25 casos y aumentó al 80% en la segunda mitad, con una tasa de éxito global del 76%.La edad del donante, la muerte hasta el tiempo de procesamiento y la DIT no se correlacionaron con la preparación exitosa del tejido. El ECD posterior a la preparación de 2.676 más o menos 284 no fue significativamente diferente de la preparación previa. ECD. Los resultados infructuosos fueron el resultado de desgarros de DM y pérdida celular grave.Estos casos también se asociaron con dificultad para volver a montar el tejido y tinción incompleta del dm Edge iBank. La evaluación de los resultados de los pacientes de nueve procedimientos de DEC llevados a cabo por cinco cirujanos indicó que un caso tuvo una luxación al día y una semana sin necesidad de burbujeo, la agudeza visual en un día osciló entre 2.400 y la percepción de la luz y en una semana mejoró a 2.103. Una vez dominado, este procedimiento se puede realizar en tan solo 20 minutos, y con la práctica, el tiempo que el tejido permanece fuera del medio original puede ser tan corto como 10 minutos.Al intentar este procedimiento, es importante obtener tejido corneal de donantes mayores de 45 años. Eso minimiza el riesgo de desgarrar la membrana de la abeja. Siguiendo este procedimiento, se puede realizar un procesamiento adicional, como la aplicación de marcas de orientación, que identifican qué lado es el lado estromal de la membrana después de su desarrollo.Esta técnica ha allanado el camino para la rápida aceptación de la DMEC por parte de los cirujanos de córnea.

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Investigación

JoVE Journal

Medicine

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El artículo describe una técnica simplificada para extirpar la córnea y la retina para destripar los tejidos del globo ocular de donantes cadavéricos humanos. La técnica descrita aquí ayudará a tejidos especiales de buena calidad para ser utilizadas para el trasplante, con fines quirúrgicos o de investigación, sin dañar otros tejidos del globo ocular.

Una técnica simplificada para<em&gt; In situ</em&gt; La escisión de la Córnea y la evisceración del tejido de la retina del globo ocular humano

Trasplante de córnea endotelial es una técnica quirúrgica para el tratamiento de posteriores enfermedades de la córnea. La disección mecánica microqueratomo para preparar los resultados de tejidos delgados y los injertos más simétricas con la pérdida de células endoteliales y menos mejores resultados. Las disecciones se puede realizar en el banco de ojos antes de la cirugía de trasplante de córnea.

Preparación del tejido corneal donante para la queratoplastia endotelial

Se presenta una técnica para la fabricación de membranas microbolsas dentro electrohiladas en el que estudiar el comportamiento celular. Específicamente, se describe una combinación de microstereolithography y electrospinning para la producción de PLGA (poli (lactida-co-glicólido)) dispositivos de biomateriales corneales equipados con microfeatures.

Combinación de Microstereolithography y electrospinning para Fabricación de membranas Equipado con nichos para la regeneración de la córnea

ratones se han utilizado como modelo para estudiar muchas formas de trasplante, incluido el trasplante de córnea.  En este informe describimos un modelo murino para el trasplante de córnea tanto agudo como tardío.

Murino Trasplante corneal: un modelo para estudiar la forma más común de trasplante de órganos sólidos

Se propone un procedimiento totalmente láser en el trasplante endotelial. La técnica quirúrgica se basa en el uso de un láser de femtosegundo para preparar el tejido del donante. A continuación, se utiliza la técnica de soldadura láser para asegurar el endotelio del donante en la posición correcta.

Un &quot;All-láser&quot; Trasplante endotelial

Se presenta un ejemplo de terapia génica adenoviral en las córneas diabéticas humanas cultivadas con órganos para la normalización de la cicatrización tardía de heridas y la expresión marcadamente reducida de marcadores de células madre epiteliales en estas córneas. También se describe la optimización de este proceso en cultivos epiteliales limbales enriquecidos con células madre.

Terapia génica adenoviral para Diabetic Queratopatía: Efectos en la curación de heridas y Stem Cell expresión del marcador en córneas de órganos cultivados humanos y células epiteliales Limbal

Este protocolo describe un novela tridimensional en vitro modelo, donde las células del estroma corneales y las células neuronales diferenciadas se cultivan juntos para ayudar en el examen y la comprensión de las interacciones de los dos tipos celulares.

Ingeniería del tejido fino córneo: Un In Vitro modelo de las interacciones estroma-nervio de la córnea humana

Describimos el uso de microscopía de coherencia óptica de campo completo como un método para la evaluación de alta calidad del estroma del donante corneal. Este protocolo se puede utilizar para identificar características indicativas de salud o enfermedad, y tiene como objetivo mejorar la detección y selección de tejidos de donantes y, por lo tanto, los resultados de la queratoplastia.

Microscopía de coherencia óptica de campo completo para el análisis histológico de características estromales en injertos corneales

Aquí, presentamos un protocolo para separar las células endoteliales corneales (CEC) de la membrana de Descemet (DM) utilizando un láser neodimio:YAG (Nd:YAG) como modelo de enfermedad ex vivo para la queratopatía bullosa (BK).

Desarrollo de un Modelo Experimental No Invasivo, Asistido por Láser de Pérdida Celular Endotelial Corneal

Este protocolo describe los pasos críticos necesarios para establecer y cultivar cultivos celulares endoteliales corneales a partir de explantas de tejido humano o ovino. También se presenta un método para subculturizar células endoteliales corneales en biomateriales membranosas.

Crecimiento de capas celulares endoteliales corneales humanas y ovinas en membranas biomateriales

Stripping Only de Descemet es un procedimiento experimental en el que a los pacientes con guttas corneales centrales resultantes de la distrofia corneal endotelial de Fuchs se les extirpa la membrana de Descemet para que las células periféricas regeneren la capa endotelial. Presentamos una novedosa metodología simulando DSO en córneas humanas distróficas ex vivo con curación acelerada estimulada por eFGF1 (NM141).

Un modelo de cultivo de órganos corneales humanos de la extracción de Descemet solo con curación acelerada estimulada por el factor de crecimiento de fibroblastos diseñado 1

Aprende la preparación de tejido endotelial de DMEK mediante disección manual controlada de la membrana de Descemet. Este método seguro y reproducible mejora los resultados en la queratoplastia endotelial.

Córnea Preparación de Tejidos de Donantes para la Membrana de Descemet queratoplastia endotelial

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