Name: Un modelo del cochinillo de Neonatología encefalopatía hipóxico-isquémica (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-05-16T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 30 s
Description: Aprende a establecer un modelo de lechones con encefalopatía hipóxico-isquémica perinatal para investigar lesiones cerebrales neonatales. Este método utiliza EEG integrado por amplitud para titular hipoxia controlada y evaluar resultados mediante resonancia magnética y neuropatología.

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Los autores desean agradecer a John Kristensen y Søren Braad Andersen del Departamento de Comunicación del Hospital Universitario de Aarhus, Dinamarca, por su excepcional ayuda con la filmación y edición. La técnica de animales Diana Gyldenløve y la veterinaria Birgitte Kousgaard, del Instituto de Medicina Clínica del Hospital Universitario de Aarhus, Dinamarca, por ayudar con el cuidado de los animales. Este estudio contó con el apoyo de la Fundación Lundbeck, la Fundación Laerdal para Medicina Aguda, la Fundación de Investigación de la Región de Dinamarca Central, la Fundación Augustinus, la Fundación Aase y Ejnar Danielsens, el Instituto de Medicina Clínica del Hospital Universitario de Aarhus, la Fundación Brødrene Hartmanns, la Fundación Karen Elise Jensens, Fonden til Lægevidenskabens Fremme y Marie Dorthea og Holger From, Haderslevs Fond.

El presente protocolo fue aprobado por el danés Experimentos con Animales Inspección. Todos los animales de prueba fueron anestesiados lo largo de los procedimientos. La reproducción de este protocolo debe llevarse a cabo de acuerdo con la ética nacionales y directrices de bienestar animal, y aprobado por los comités de ética locales. 1. Los animales <ol><li> Lechones Landrace danés &lt;24 horas de edad con un peso aproximado de 1.500 - 2.000 g. </li></ol> 2. Anestesia y mantenimiento Fluidos <ol><li> Preparar el equipo necesario para la anestesia (Figura 1): Una máscara para la administración de sevoflurano, algodones con alcohol, catéter intravenoso periférico, goma elástica, jeringas con solución salina, propofol (5 mg / kg), fentanil (10 mg / kg), y bencilpenicilina procaína (15.000 IU / kg). </li><li> Inducir la anestesia mediante la entrega de un 1-2% de sevoflurano a través de una máscara de respiración. <ol><li> Evaluar la profundidad de la anestesia mediante la evaluación de palpebral y la retirada reflexes. Cuando la certeza de que el lechón está profundamente anestesiado, percutánea insertar un catéter intravenoso periférico en la vena de la oreja. </li><li> Para confirmar la permeabilidad del catéter intravenoso periférico, lavar el catéter con 1-2 ml de estéril al 0,9% de solución salina. Administrar inyecciones en bolo de propofol (5 mg / kg) y fentanilo (10 g / kg). Con posterioridad a la administración de la inyección en bolo enjuagar el catéter intravenoso por segunda vez usando 1-2 ml de estéril al 0,9% de solución salina. </li><li> Coloque jeringas con propofol (10 mg / ml) y fentanilo (10 g / ml) en dos bombas de infusión de jeringa separadas. Conectar los tubos de IV de las dos bombas de jeringa a una llave de paso de tres vías unirse infusiones en una sola línea que está conectado al catéter intravenoso. Iniciar la infusión IV continua de propofol (4-12 mg / kg / hr) y fentanilo (10 g / kg / hr). Una vez infusiones continuas se están ejecutando, no le dé más inyecciones en bolo de propofol y fentanilo. </li><li> Suspenda la administración de la anest gas sevofluranohesia. </li><li> Inyectar bencilpenicilina procaína (15.000 UI / kg) por vía subcutánea o intramuscular según las directrices locales para la profilaxis antibiótica. Repita todos los días. El vídeo muestra la administración sc, que en los lechones se ha demostrado que el resultado en una mayor concentración en plasma y la vida media más larga en comparación con la administración IM. </li><li> Aplique un ungüento lubricante ocular para prevenir la sequedad de los ojos. Tire del párpado inferior hacia abajo suavemente para formar una abertura de bolsa. Coloque una pequeña cantidad de pomada en el interior del bolsillo. Cerrar los ojos a distribuir pomada. Compruebe si hay sequedad por hora y volver a aplicar cuando sea necesario. </li><li> Iniciar una infusión a velocidad continua de dextrosa al 5% / 0,45% de NaCl iv a 10 ml / kg / hr. Reducir la tasa de 5 ml / kg / h durante y después de la hipoxia. Ajuste la velocidad de infusión para mantener los niveles de glucosa en sangre entre 2-10 mmol / L. </li></ol></li></ol><img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/52454/52454fig1.jpg" /> Figure 1. Equipo para la anestesia y la intubación. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52454/52454fig1large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a> 3. La intubación y ventilación <ol><li> Preparar el equipo necesario para la intubación (Figura 1): bromuro de rocuronio (1 mg / kg) para la relajación muscular, una eslinga (atar ambos extremos de la misma cuerda de nylon 4 mm entre sí para formar un círculo como se representa en la figura 1) para abrir la boca, una punta de algodón hisopo y laringoscopio veterinaria con hoja recta, aerosol xilocaína (100 mg / ml), varios tubos endotraqueales con manguito de tamaño (tamaños de 3,0 mm, 2,5 mm, 2,0 mm), 500 ml bolsa autoinflable (válvula de la bolsa enmascarar) para la ventilación, 2 ml jeringa para inflado del manguito y estetoscopio. </li><li> Intubate siguiendo los pasos a continuación: <ol><li> Lugar de lechones en la posición supina apoyar el cuello de cada lado para asegurar una recta pas laríngeossabio para la intubación. </li><li> Estimar la longitud del tubo endotraqueal midiendo desde la punta del hocico hasta la horquilla esternal (por lo general alrededor de 13 cm). </li><li> Lugar eslinga alrededor de la mandíbula superior (boca abajo) y mantenga la mandíbula inferior y la lengua hacia arriba para mantener la boca abierta. </li><li> Administrar bromuro de rocuronio (1 mg / kg) iv para inducir la relajación muscular. </li><li> Utilice laringoscopio para levantar la lengua hacia arriba. </li><li> Utilice el hisopo de algodón con punta para liberar epiglotis largo del lechón, que puede estar en retroversión, ya sea en el esófago o atrapado detrás del paladar blando. </li><li> Avanzar laringoscopio para mantener la epiglotis levantado en contra de la base de la lengua que permite la vista de los cartílagos aritenoides y las cuerdas vocales. </li><li> Aplicar por pulverización xilocaína (100 mg / ml) por vía tópica en la laringe para evitar los espasmos laríngeos. </li><li> Avanzar tubo endotraqueal a través de las cuerdas vocales. Use un movimiento de rotación para facilitar el paso de los estrechos cartílagos traqueales. Alojamiento tubo Avancerding a la distancia previamente medida y conectarse a una bolsa autoinflable (bolsa máscara válvula) para la ventilación manual. Para ayudar a reducir la fricción durante la intubación rociar el tercio distal del tubo endotraqueal con spray xilocaína. </li><li> Para confirmar la colocación del tubo endotraqueal correcta: observar para cualquier indicación de dificultad para respirar, ausculate el pecho para escuchar la entrada de aire bilateral en ambos pulmones, confirmar visualmente la presencia de condensación en el aspecto proximal del tubo endotraqueal, y verificar la presencia de final de carbono de las mareas dióxido de con un detector de dióxido de carbono colorimétrica o por espiratorio CO 2 lectura en el ventilador mecánico si está disponible. Final normal de dióxido de carbono de las mareas es de alrededor de 5%. Un valor superior a 2% junto con una forma de onda de apariencia normal confirmará que el tubo endotraqueal es en la tráquea. </li><li> Inflar el manguito del tubo endotraqueal para evitar la aspiración. La presión de inflado del manguito debe ser inferior a 25 cm H 2 O para evitar el daño isquémico<html> al tejido circundante. Sosteniendo el tubo endotraqueal en su lugar, enrollar un trozo de cinta alrededor del tubo, cerrar la mandíbula y continuar grabando alrededor del hocico para asegurar el tubo en su lugar. Tire suavemente del tubo para asegurar que se mantenga en su lugar. </li><li> Conecte el tubo endotraqueal a ventilador mecánico. </li></ol></li><li> Ajustar la configuración de ventilador: ventilación controlada por volumen, volumen corriente (TV): 10 ml / kg [o la presión inspiratoria pico (PIP) de 15 cm con ventilación controlada a presión]. La presión positiva al final de la espiración (PEEP): 5 cm. Relación I: E 1: 2. Frecuencia respiratoria: 35 (ajustar la velocidad para mantener final de la espiración de CO 2 entre 4.5 a 5.5 kPa). </li></ol> 4. Seguimiento y Cuerpo de muestreo de fluidos <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/52454/52454fig2.jpg" /> Figura 2. Equipo para monitoreo.ank &quot;&gt; Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura. <ol><li> Preparar el material necesario para el seguimiento (Figura 2): cinta adhesiva, lubricante estéril, sonda para medir la temperatura rectal continuo, electrocardiograma (ECG) electrodos, electrodos oxímetro de pulso, afeitar, y EEG. <ol><li> Coloque la sonda de saturación en una pata trasera, lubricar la sonda de temperatura rectal e inserte 6 cm en el recto, coloque el calentador radiante sobrecarga y / o un colchón de aire inflable climatizada para mantener la temperatura rectal a nivel fisiológico de 38,5 a 39 ° C, y el lugar de ECG electrodos. </li><li> Coloca los lechones en la posición prona para afeitar áreas de 1 cm x 1 cm para la colocación de electrodos EEG aguja subcutáneos; una delante de cada oreja, y el electrodo de referencia en la línea media, justo detrás de los ojos. Limpie el sitio de electrodo con un algodón con alcohol, luego inserte el electrodo de aguja por vía subcutánea. Electrodos Asegure con cinta adhesiva y el retorno de los lechones a la po supinasición. </li><li> Encienda el monitor aEEG. NOTA: La amplitud integrado EEG consiste de una traza denso, con márgenes superior e inferior. Márgenes inferior y superior en este modelo son típicamente 15 a 50 mV, a menudo más altos que los observados en los lactantes. Durante la hipoxia es importante señalar, que el artefacto de ECG puede elevar falsamente la traza aEEG. Medicamentos (bolo de propofol o fentanilo) también pueden suprimir transitoriamente la traza aEEG y deben evitarse si es posible durante el experimento. La administración de fármacos y eventos clínicos se debe marcar para facilitar la interpretación de la traza aEEG. </li></ol></li><li> Preparar el equipo necesario para la colocación de catéteres umbilicales para el monitoreo de la presión arterial central y tomar muestras de sangre (Figura 3): guantes estériles, drapeado estéril, bisturí, algodones con alcohol, toallitas estériles, catéter de la vena umbilical (5 Fr), catéter en la arteria umbilical (3,5 Fr ), sutura conjunto con pinzas, fórceps curvos micro, tijeras, porta agujas y suturas (por ejemplo, el tamaño 3-0), parche adhesivo transparente, 5 ml jeringas para toma de muestras de sangre. </li></ol><img alt="Figura 3" src="/files/ftp_upload/52454/52454fig3.jpg" /> Figura 3. Equipo para líneas umbilicales y toma de muestras de sangre. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52454/52454fig3large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a> <ol start="3"><li> Esterilizar y cubre el área alrededor del ombligo. Utilice un bisturí para cortar el cordón umbilical tan cerca de la piel como sea posible. Si esto no expone los vasos umbilicales en el lechón anestesiado, cortar la piel umbilical 2 mm por debajo del cordón umbilical para exponer los vasos. Identificar las dos pequeñas arterias umbilicales y el más grande de la vena umbilical (Figura 4). </li><li> Utilice unas pinzas curvas micro para dilatar la arteria (Figura 4) e insertar el catéter arterial umbilical(3,5 Fr). Estimación longitud de inserción en cm a 3 x peso (kg) + 10 (fórmula empírica basada en la colocación correcta en la aorta descendente por encima de las arterias renales en la autopsia). </li><li> Coloque un segundo catéter de 5 Fr 5 cm en la vena umbilical (Figura 4). Compruebe la colocación del catéter intravascular por el retorno de la sangre. Catéteres seguros mediante la colocación de una sutura en bolsa de tabaco alrededor del ombligo, pasan la sutura termina alrededor de cada uno de los catéteres umbilicales y haga un nudo. Cubra catéteres con apósito adhesivo transparente. </li><li> Recoger muestras de sangre en puntos de tiempo pre-especificado: 1) inmediatamente antes de la hipoxia, 2) 30 min en insulto hipóxico 3) al final de la 45 min hipóxico insulto 4) 2 horas después de insulto hipóxico. Dependiendo del propósito del experimento otros puntos de tiempo para las muestras de sangre se puede elegir. </li><li> Utilice el análisis de gases en sangre arterial a partir de muestras de sangre tomadas durante la hipoxia para verificar los cambios de gases sanguíneos causados ​​por la hipoxia-isquemia (Tabla 1). Tenga en cuenta que los lechones tienen hemoglobina baja unt nacimiento (alrededor de 8 g / dl) y puede llegar a ser anémica de toma de muestras de sangre frecuentes. Retirar menos de 2 ml de sangre / kg de peso corporal por sorteo, a menos de 5 ml de sangre / kg de peso corporal dentro de 24 h y se adhieren a las directrices locales para el muestreo de sangre. Los signos de la anemia incluyen la disminución del hematocrito y taquicardia. </li><li> Conecte línea arterial a un monitor de vigilancia continua de la presión arterial intra-arterial (PAM). Utilice vía venosa para la administración de líquidos y fármacos. </li></ol><img alt="Figura 4" src="/files/ftp_upload/52454/52454fig4.jpg" /> Figura 4. Los buques umbilicales. Vena umbilical (derecha) y una de las dos arterias umbilicales (izquierda). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52454/52454fig4large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a> 5. La hipoxia <ol><li> Espere 60 minutos después de terminar el monitoreo. Inducir la hipoxia por el cambio a un 4% de O 2 </sub&gt; / 96% N2 mezcla de gases. Monitorear los parámetros vitales y aEEG estrechamente y continuar la hipoxia durante 45 minutos. </li><li> Una vez que la traza aEEG es plana (margen superior &lt;7 mV), ajuste la oxigenación mediante la alteración de la fracción de oxígeno inspirado (FiO 2) y la presión media de la vía aérea con el más alto nivel de FiO2 mantener una traza plana aEEG de acuerdo con el diagrama de flujo mostrado en la figura 5. Trate de PAM por debajo del 70% de la línea de base durante al menos 10 minutos y si es necesario FiO 2 inferior para asegurar hipotensión e isquemia. El nivel de hipotensión descrito previamente se ha demostrado por otros 19,13,30 para producir lesión cerebral hipóxico-isquémica relevante. </li><li> En caso de hipotensión grave (PAM &lt;25 mm Hg) a tratar por etapas como sigue: aumentar brevemente FiO 2 por 1-5%, bolo de solución salina (10 ml / kg), la infusión de dopamina (5-20 mg / kg / min), y la infusión de noradrenalina (20 ng-1 g / kg / min). </li><li> En caso de convulsiones que duran&gt; 10 min (clónicas, tónicas or crisis mioclónicas, típicamente focal o como se indica por cambios repentinos en aEEG amplitud) tratan por etapas con (permitiendo 30 min antes de proceder a la siguiente inyección): lenta en bolo iv de fenobarbital 20 mg / kg, iv repetir fenobarbital 20 mg / kg, y midazolam iv 0,5 mg / kg. <ol><li> Si las convulsiones se desarrollan y son insensibles a la eutanasia terapia con medicamentos está indicado. </li></ol></li></ol><img alt="Figura 5" src="/files/ftp_upload/52454/52454fig5.jpg" /> Figura 5. La hipoxia-isquemia diagrama de flujo. Diagrama de flujo que muestra los ajustes en la oxigenación (F i O 2 y P aw) de acuerdo a la respuesta aEEG. La presión de la vía aérea (P aw) La media se ajusta cambiando PIP / TV (menor PIP da menor aw P) y la frecuencia respiratoria (RR menor da menor aw P). Objetivo aEEG = margen superior de la traza &lt;5 mV y menor margen de traza&gt; 3 mV (promedio 4 mV). Objetivofrecuencia cardíaca (FC) =&gt; 80. Objetivo presión arterial media (PAM) = PAM&gt; 25. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52454/52454fig5large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a> Supervivencia 6. 72 horas <ol><li> Monitorear el lechón de cerca después del insulto hipóxico, y reducir gradualmente las tasas de infusión de propofol y fentanilo. Retirar la intubación en el punto en el que el animal está respirando voluntariamente. </li><li> Durante el período de supervivencia, mantener lechones en un centro de animales con el reloj de 24 horas por personal especializado en cuidados intensivos y el seguimiento. Administrar las infusiones de glucosa iv 20 ml / kg por hora 2-3. En 26 a 48 horas después de la hipoxia-isquemia parcial con biberón de alimentación puede ser iniciada. La aspiración a la tráquea y los pulmones puede ocurrir por la alimentación con biberón si el reflejo nauseoso no está presente. </li><li> Si es relevante para el experimento, evaluar el estado neurológico usando el sistema de puntuación desarrollado por Thoresen et al., Se describe endetalle en la publicación original 17. </li></ol> Evaluación 7. Resultado <ol><li> Después de 72 horas, anestesiar y ventilar de nuevo como se describe en la sección 2 y 3. Realice Imagen de resonancia magnética con técnicas de imagen pertinentes descritos por Munkeby et al 31 y 2 otros. </li><li> Al final del experimento la eutanasia a los lechones con una dosis letal de pentobarbital (5 g / kg iv). </li><li> Preparar el cerebro para su examen de acuerdo con el objetivo del experimento. <ol><li> Para la histología cerebral en tejido fijado con formalina:.. Utilizar la perfusión cardiaca con 4% de paraformaldehído en PBS, seguido por disección y post-fijación en paraformaldehído como se describe por Robertson et al 2, Chakkarapani et al 1 o Liu et al 18 o quitar el cerebro y sumergirse en 4% de paraformaldehído como se describe por Andresen et al. 32 </li><li> Para el análisis que requiere el tejido-snap congelado (por ejemplo, ARNensayos de actividad de análisis o de la enzima 33):. Retire el cerebro, diseccionar las regiones cerebrales de interés y complemento de congelación bloques de tejido de un máximo de 1 cm x 1 cm de nitrógeno líquido como se describe por Munkeby et al 33 </li></ol></li></ol>

<ol><li>Chakkarapani, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Xenon+enhances+hypothermic+neuroprotection+in+asphyxiated+newborn+pigs%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of%22%5BJournal%5D)">Xenon enhances hypothermic neuroprotection in asphyxiated newborn pigs.</a> Annals of. 68, 330-341 (2010).</li>
<li>Robertson, N. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Melatonin+augments+hypothermic+neuroprotection+in+a+perinatal+asphyxia+model%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+%3A+a+journal+of+neurology%22%5BJournal%5D)">Melatonin augments hypothermic neuroprotection in a perinatal asphyxia model.</a> Brain : a journal of neurology. 136, 90-105 (2013).</li>
<li>Lawn, J. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Every+Newborn%3A+progress%2C+priorities%2C+and+potential+beyond+survival%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">Every Newborn: progress, priorities, and potential beyond survival.</a> Lancet. 384, 189-205 (2014).</li>
<li>Lee, A. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intrapartum-related+neonatal+encephalopathy+incidence+and+impairment+at+regional+and+global+levels+for+2010+with+trends+from+1990%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatric+research%22%5BJournal%5D)">Intrapartum-related neonatal encephalopathy incidence and impairment at regional and global levels for 2010 with trends from 1990.</a> Pediatric research. 74, Suppl 1. 50-72 (2013).</li>
<li>Kurinczuk, J. J., White-Koning, M., Badawi, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epidemiology+of+neonatal+encephalopathy+and+hypoxic-ischaemic+encephalopathy%5BTitle%5D)+AND+%22Early+human+development%22%5BJournal%5D)">Epidemiology of neonatal encephalopathy and hypoxic-ischaemic encephalopathy.</a> Early human development. 86, 329-338 (2010).</li>
<li>Shankaran, S., Woldt, E., Koepke, T., Bedard, M. P., Nandyal, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acute+neonatal+morbidity+and+long-term+central+nervous+system+sequelae+of+perinatal+asphyxia+in+term+infants%5BTitle%5D)+AND+%22Early+human+development%22%5BJournal%5D)">Acute neonatal morbidity and long-term central nervous system sequelae of perinatal asphyxia in term infants.</a> Early human development. 25, 135-148 (1991).</li>
<li>Robertson, C. M., Finer, N. N., Grace, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((School+performance+of+survivors+of+neonatal+encephalopathy+associated+with+birth+asphyxia+at+term%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+pediatrics%22%5BJournal%5D)">School performance of survivors of neonatal encephalopathy associated with birth asphyxia at term.</a> The Journal of pediatrics. 114, 753-760 (1989).</li>
<li>Bennet, L., Booth, L., Gunn, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Potential+biomarkers+for+hypoxic-ischemic+encephalopathy%5BTitle%5D)+AND+%22Seminars+in+feta.%2C+%26+neonatal+medicine%22%5BJournal%5D)">Potential biomarkers for hypoxic-ischemic encephalopathy.</a> Seminars in feta., & neonatal medicine. 15, 253-260 (2010).</li>
<li>Yager, J. Y., Ashwal, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+of+perinatal+hypoxic-ischemic+brain+damage%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatric+neurology%22%5BJournal%5D)">Animal models of perinatal hypoxic-ischemic brain damage.</a> Pediatric neurology. 40, 156-167 (2009).</li>
<li>Buckley, N. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Maturation+of+circulatory+system+in+three+mammalian+models+of+human+development%5BTitle%5D)+AND+%22Comparative+biochemistry+and+physiology.+A%2C+Comparative%22%5BJournal%5D)">Maturation of circulatory system in three mammalian models of human development.</a> Comparative biochemistry and physiology. A, Comparative. 83, 1-7 (1986).</li>
<li>Dobbing, J., Sands, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparative+aspects+of+the+brain+growth+spurt%5BTitle%5D)+AND+%22Early+human+development%22%5BJournal%5D)">Comparative aspects of the brain growth spurt.</a> Early human development. 3, 79-83 (1979).</li>
<li>Dobbing, J., Sands, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+growth+and+development+of+human+brain%5BTitle%5D)+AND+%22Archives+of+disease+in+childhood%22%5BJournal%5D)">Quantitative growth and development of human brain.</a> Archives of disease in childhood. 48, 757-767 (1973).</li>
<li>Foster, K. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+improved+survival+model+of+hypoxia%2Fischaemia+in+the+piglet+suitable+for+neuroprotection+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+research%22%5BJournal%5D)">An improved survival model of hypoxia/ischaemia in the piglet suitable for neuroprotection studies.</a> Brain research. 919, 122-131 (2001).</li>
<li>LeBlanc, M. H., Li, X. Q., Huang, M., Patel, D. M., Smith, E. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((AMPA+antagonist+LY293558+does+not+affect+the+severity+of+hypoxic-ischemic+injury+in+newborn+pigs%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%3B+a+journal+of+cerebral+circulation%22%5BJournal%5D)">AMPA antagonist LY293558 does not affect the severity of hypoxic-ischemic injury in newborn pigs.</a> Stroke; a journal of cerebral circulation. 26, 1908-1914 (1995).</li>
<li>Andresen, J. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nicotine+affects+the+expression+of+brain-derived+neurotrophic+factor+mRNA+and+protein+in+the+hippocampus+of+hypoxic+newborn+piglets%5BTitle%5D)+AND+%22J+Perinat+Med%22%5BJournal%5D)">Nicotine affects the expression of brain-derived neurotrophic factor mRNA and protein in the hippocampus of hypoxic newborn piglets.</a> J Perinat Med. 37, 553-560 (2009).</li>
<li>Cheung, P. Y., Gill, R. S., Bigam, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+swine+model+of+neonatal+asphyxia%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+visualized+experiments+%3A+JoVE%22%5BJournal%5D)">A swine model of neonatal asphyxia.</a> Journal of visualized experiments : JoVE. , (2011).</li>
<li>Thoresen, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+piglet+survival+model+of+posthypoxic+encephalopathy%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatric+research%22%5BJournal%5D)">A piglet survival model of posthypoxic encephalopathy.</a> Pediatric research. 40, 738-748 (1996).</li>
<li>Liu, X., Tooley, J., Loberg, E. M., Suleiman, M. S., Thoresen, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immediate+hypothermia+reduces+cardiac+troponin+I+after+hypoxic-ischemic+encephalopathy+in+newborn+pigs%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatric+research%22%5BJournal%5D)">Immediate hypothermia reduces cardiac troponin I after hypoxic-ischemic encephalopathy in newborn pigs.</a> Pediatric research. 70, 352-356 (2011).</li>
<li>Bjorkman, S. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hypoxic%2FIschemic+models+in+newborn+piglet%3A+comparison+of+constant+FiO2+versus+variable+FiO2+delivery%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+research%22%5BJournal%5D)">Hypoxic/Ischemic models in newborn piglet: comparison of constant FiO2 versus variable FiO2 delivery.</a> Brain research. 1100, 110-117 (2006).</li>
<li>Robertson, N. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Which+neuroprotective+agents+are+ready+for+bench+to+bedside+translation+in+the+newborn+infant%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+pediatrics%22%5BJournal%5D)">Which neuroprotective agents are ready for bench to bedside translation in the newborn infant.</a> The Journal of pediatrics. 160, 544-552 (2012).</li>
<li>Jacobs, S. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cooling+for+newborns+with+hypoxic+ischaemic+encephalopathy%5BTitle%5D)+AND+%22Cochrane+Database+Syst+Rev%22%5BJournal%5D)">Cooling for newborns with hypoxic ischaemic encephalopathy.</a> Cochrane Database Syst Rev. 1, CD003311(2013).</li>
<li>Andresen, J. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Resuscitation+with+21+or+100%25+oxygen+in+hypoxic+nicotine-pretreated+newborn+piglets%3A+possible+neuroprotective+effects+of+nicotine%5BTitle%5D)+AND+%22Neonatology%22%5BJournal%5D)">Resuscitation with 21 or 100% oxygen in hypoxic nicotine-pretreated newborn piglets: possible neuroprotective effects of nicotine.</a> Neonatology. 93, 36-44 (2008).</li>
<li>Karlsson, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Delayed+hypothermia+as+selective+head+cooling+or+whole+body+cooling+does+not+protect+brain+or+body+in+newborn+pig+subjected+to+hypoxia-ischemia%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatric+research%22%5BJournal%5D)">Delayed hypothermia as selective head cooling or whole body cooling does not protect brain or body in newborn pig subjected to hypoxia-ischemia.</a> Pediatric research. 64, 74-78 (2008).</li>
<li>Kovacs, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Asphyxia-induced+release+of+alpha-melanocyte-stimulating+hormone+in+newborn+pigs%5BTitle%5D)+AND+%22Peptides%22%5BJournal%5D)">Asphyxia-induced release of alpha-melanocyte-stimulating hormone in newborn pigs.</a> Peptides. 22, 1049-1053 (2001).</li>
<li>Varvarousi, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Asphyxial+cardiac+arrest%2C+resuscitation+and+neurological+outcome+in+a+Landrace%2FLarge-White+swine+model%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+animals%22%5BJournal%5D)">Asphyxial cardiac arrest, resuscitation and neurological outcome in a Landrace/Large-White swine model.</a> Laboratory animals. 45, 184-190 (2011).</li>
<li>Tammela, O., Pastuszko, A., Lajevardi, N. S., Delivoria-Papadopoulos, M., Wilson, D. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Activity+of+tyrosine+hydroxylase+in+the+striatum+of+newborn+piglets+in+response+to+hypocapnic+hypoxia%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+neurochemistry%22%5BJournal%5D)">Activity of tyrosine hydroxylase in the striatum of newborn piglets in response to hypocapnic hypoxia.</a> Journal of neurochemistry. 60, 1399-1406 (1993).</li>
<li>Cote, A., Barter, J., Meehan, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Age-dependent+metabolic+effects+of+repeated+hypoxemia+in+piglets%5BTitle%5D)+AND+%22Canadian+journal+of+physiology+and+pharmacology%22%5BJournal%5D)">Age-dependent metabolic effects of repeated hypoxemia in piglets.</a> Canadian journal of physiology and pharmacology. 78, 321-328 (2000).</li>
<li>Tichauer, K. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessing+the+severity+of+perinatal+hypoxia-ischemia+in+piglets+using+near-infrared+spectroscopy+to+measure+the+cerebral+metabolic+rate+of+oxygen%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatric+research%22%5BJournal%5D)">Assessing the severity of perinatal hypoxia-ischemia in piglets using near-infrared spectroscopy to measure the cerebral metabolic rate of oxygen.</a> Pediatric research. 65, 301-306 (2009).</li>
<li>Jasani, M. S., Salzman, S. K., Tice, L. L., Ginn, A., Nadkarni, V. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anesthetic+regimen+effects+on+a+pediatric+porcine+model+of+asphyxial+arrest%5BTitle%5D)+AND+%22Resuscitation%22%5BJournal%5D)">Anesthetic regimen effects on a pediatric porcine model of asphyxial arrest.</a> Resuscitation. 35, 69-75 (1997).</li>
<li>Chakkarapani, E., Thoresen, M., Liu, X., Walloe, L., Dingley, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Xenon+offers+stable+haemodynamics+independent+of+induced+hypothermia+after+hypoxia-ischaemia+in+newborn+pigs%5BTitle%5D)+AND+%22Intensive+care+medicine%22%5BJournal%5D)">Xenon offers stable haemodynamics independent of induced hypothermia after hypoxia-ischaemia in newborn pigs.</a> Intensive care medicine. 38, 316-323 (2012).</li>
<li>Munkeby, B. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+piglet+model+for+detection+of+hypoxic-ischemic+brain+injury+with+magnetic+resonance+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+radiologica%22%5BJournal%5D)">A piglet model for detection of hypoxic-ischemic brain injury with magnetic resonance imaging.</a> Acta radiologica. 49, 1049-1057 (2008).</li>
<li>Andresen, J. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Newborn+piglets+exposed+to+hypoxia+after+nicotine+or+saline+pretreatment%3A+long-term+effects+on+brain+and+heart%5BTitle%5D)+AND+%22J+Matern+Fetal+Neonatal+Med%22%5BJournal%5D)">Newborn piglets exposed to hypoxia after nicotine or saline pretreatment: long-term effects on brain and heart.</a> J Matern Fetal Neonatal Med. 22, 161-168 (2009).</li>
<li>Munkeby, B. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Resuscitation+with+100%25+O2+increases+cerebral+injury+in+hypoxemic+piglets%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatric+research%22%5BJournal%5D)">Resuscitation with 100% O2 increases cerebral injury in hypoxemic piglets.</a> Pediatric research. 56, 783-790 (2004).</li>
</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

Debido a su complejidad, el modelo descrito sólo puede implementarse en instalaciones acreditadas y con experiencia en la investigación con animales. La aprobación por los comités de ética locales debe obtenerse antes de la iniciación de los experimentos, y el bienestar óptimo de los animales debe garantizarse en todo momento. A medida que el modelo se basa en la supervivencia de los animales de ensayo, es importante que un ambiente estéril se mantiene durante procedimientos invasivos para prevenir las infecciones. ...

La asfixia perinatal es una condición aguda y con frecuencia impredecible asociado con encefalopatía hipóxico-isquémica (EHI). El objetivo general de este protocolo es demostrar un modelo de supervivencia de los lechones de perinatal encefalopatía hipóxico-isquémica. Este modelo se puede utilizar para investigar el efecto de varios grados de hipoxia-isquemia en el cerebro neonatal y de los tratamientos experimentales sobre la neuropatología, la resonancia magnética y la espectroscopia (MRI y MRS) y biomarcadores en fluidos corporales tales como sangre, líquido cefalorraquídeo y orina . El modelo también ha demostrado ser útil para investigar el sistema cardiovascular, sistema respiratorio, renal y hepática, todos los cuales se ven afectados en la hipoxia-isquemia global. La asfixia perinatal es el resultado de peligro el suministro de oxígeno durante el parto o en el puerperio inmediato. Eventos de hipoxia intraparto representan 0.660.000 muertes en el mundo cada año, alrededor de una cuarta parte del mundo 2.9 millSe estima que han desarrollado encefalopatía neonatal después de la asfixia al nacer 4 iones muertes neonatales en 2012 3. En 2010 1,15 millones de bebés. HIE definido como encefalopatía en niños nacidos después de 34 semanas de gestación se produce en 1-3 / 1.000 nacidos vivos 5 en el mundo industrializado y de hasta 8,5 / 1000 nacidos vivos en los países en desarrollo 4. El riesgo de muerte es 10 a 60%, y el riesgo de discapacidad neurológica en los sobrevivientes de 30-100% 6,7. 50,2 millones de años de vida ajustados por discapacidad (AVAD) se atribuyen a los eventos de hipoxia intraparto 4. Actualmente el único tratamiento que no sea de apoyo para HIE es la hipotermia post-hipóxica. Por lo tanto, los avances en los procedimientos de diagnóstico y estrategias de tratamiento son esenciales para mejorar la gestión de HIE 8. Las mejoras en el pronóstico después de la asfixia y la gestión de la lesión cerebral neonatal perinatal se basan en ampliar el conocimiento de los mecanismos subyacentes de la enfermedad de und posibles tratamientos. Los modelos animales de HIE son particularmente útiles como diferentes eventos clínicos pueden conducir a HIE y la incidencia en cualquier centro de maternidad sola es baja 5. Una configuración experimental en el que la influencia de la variación biológica puede ser minimizado, es esencial al probar nuevas herramientas de pronóstico y diagnóstico y estrategias de tratamiento. Un modelo animal debe aproximarse a la situación clínica tanto como sea posible, lo que contribuye a la comprensión de los mecanismos patológicos subyacentes a la lesión inducida y el proceso dinámico que participan en la evolución de la enfermedad y ES 9. Los modelos animales de HIE neonatal han incluido un número de especies, incluyendo roedores, cordero, y cerdo. En comparación, el lechón recién nacido tiene mayor parecido con un recién nacido humano con respecto al tamaño, el sistema cardiovascular 10 y la madurez del cerebro en el momento de la entrega 11,12. Monitoreo, instrumentación y evaluación de resultados en el modelo de los lechones es similar a that utilizado en la atención clínica de los recién nacidos con EHI. Por consiguiente, existe un alto grado de atención del recién nacido traducción a partir de este modelo. Lechones modelos de hipoxia perinatal y HIE son utilizados por muchos grupos y varían en un número de áreas 13. De acuerdo con el propósito del experimento, se debe prestar especial atención a la elección de los medicamentos, el método de inducción de hipoxia-isquemia, método de control de la duración y la gravedad insulto, reanimación y cuidados post-insulto, y la evaluación de resultados. Para evitar el sesgo de un diseño de ensayo aleatorio siempre se debe utilizar en los estudios de intervención. El método aplicado cuando se provoque lesiones hipóxico-isquémica es importante. Hipoxia global que lleva a HIE a menudo resulta en fallo multiorgánico que implica cerebro, el corazón, los pulmones, los riñones y el hígado. Dependiendo de los resultados evaluados, los modelos de HIE deben basarse en la hipoxia isquemia global y lugar de confiar en la isquemia focal, por ejemplo., Por ligación de cochearterias OTID 14. Un artículo reciente aplica una combinación de hipoxia (FiO 2 12%) y la compresión de la arteria carótida, mientras que el mantenimiento de la presión sanguínea arterial media&gt; 40 mm Hg 2. Otro grupo indujo hipoxia global al 8% de O 2 hasta que el exceso de base negativa&gt; 20 mmol / L o la presión arterial media arterial (PAM) &lt;15 mm Hg, y sacrificó a los animales a las 4 h 15. La hipoxia también ha sido valorada por el gasto cardíaco (a 30-40% de la línea de base), MABP (a 30-35 mm Hg) y el pH arterial (6,95-7,05) 16. Modelos de hipoxia-isquemia global valorada por la supresión aEEG similar a la presentada en este informe, han demostrado que la encefalopatía es clínicamente, electrofisiológicamente y neuropatológicamente comparable a la condición de que se encuentra en el recién nacido a término asfixiados 17,18. El grado de HIE inducida es esencial. Un modelo animal útil de HIE también debe permitir la prueba de nuevos diaprocedimientos y opciones de tratamiento gnóstico. Para permitir esto, los modelos deben inducir HIE moderada, donde hay un potencial tratamiento como lesión cerebral severa con poco o ningún potencial tratamiento sería menos relevante en la evaluación de nuevos tratamientos. La tolerancia a la hipoxia varía considerablemente entre los animales de prueba. Estudios anteriores han demostrado que una lesión cerebral más consistente se puede lograr y que más animales sobrevivir 17,19 individualizando la hipoxia inducida según la respuesta cerebral de cada lechón evaluadas por amplitud integrado electroencefalografía (aEEG) en lugar de utilizar un conjunto FiO valor 2 en todo el evento hipóxico. La duración de la supresión aEEG se correlaciona con el grado de lesión cerebral, con pocos cambios histopatológicos a &lt;20 min aEEG supresión y convulsiones severas crecientes en&gt; 45 min aEEG supresión. Una reciente revisión de tratamientos neuroprotectores para HIE identificó la necesidad de modelos de supervivencia que permite meas de resultado conductualesUres en modelos animales 20. Hay numerosas ventajas del modelo de lechones HIE presentado. Se basa en una especie donde los resultados son altamente probable que se traducen a la fisiología humana. Los modelos globales hipoxia-isquemia fallo multiorgánico y la titulación de la hipoxia-isquemia por aEEG induce un grado consistente de lesión cerebral con la supervivencia resultados clínicos relevantes, tales que los biomarcadores, MRI y el comportamiento pueden ser evaluados en puntos de tiempo relevantes. Modelos cochinillo de asfixia perinatal y HIE no sólo han contribuido de manera significativa a la visión actual en HIE fisiopatología, pero también han precedido con éxito los ensayos clínicos, en última instancia, lo que resulta en nuevos tratamientos en humanos. Estudios en modelos Piglet jugaron un papel clave en el establecimiento de la hipotermia como tratamiento para la HIE 21, y se utilizan en la investigación de resucitación neonatal 22. Varios grupos han utilizado modelos de lechones al realizar la investigación dentro de la asfixia y la HIE, und estudios incluyen la hipotermia 23, alfa-melanocitos hormona estimulante 24, paro cardíaco 25, la tirosina hidroxilasa actividad 26, la exposición hipóxica repetida 27, la actividad del receptor NMDA 14, y espectroscopia de infrarrojo cercano 28. El modelo de HIE lechones se presenta en este informe es técnicamente difícil de trabajar, como pequeños ajustes durante el curso del procedimiento pueden resultar en una lesión cerebral demasiado suave o demasiado severa 29,2. Encontramos que la literatura existente carecía de suficiente detalle para reproducir modelos publicados anteriormente. Por lo tanto, aquí demostramos cada paso de los procedimientos técnicos necesarios para el establecimiento de un modelo de supervivencia de 72 horas de los lechones en este informe, lo que permite a los investigadores a establecer este modelo avanzado para el estudio de HIE.

<table><tbody><tr><td>Manta pediátrica de tacto</td><td>cálido Covidien</td><td>5030840</td><td></td></tr><tr><td>Adhesivo Apertrue Drapa</td><td>Barrera</td><td>915447</td><td></td></tr><tr><td>Utilitaria Cortina (estéril) 75x80 cm</td><td>Barrera</td><td>800530</td><td></td></tr><tr><td>Neoflon</td><td>BD - Luer</td><td>391350</td><td></td></tr><tr><td>Laringoscopio</td><td>Miller</td><td>85-0045</td><td></td></tr><tr><td>Tubo endotraqueal 2,5 mm&nbsp;</td><td>Covidien</td><td>111-25</td><td></td></tr><tr><td>Tubo endotraqueal de 3,0 mm con manguito</td><td>Unomedical</td><td>MM61110030</td><td></td></tr><tr><td>Tubo endotraqueal de 3,5 mm con manguito</td><td>Unomedical</td><td>MM61110035</td><td></td></tr><tr><td>Máquina de anestesia</td><td>GE Healthcare</td><td>1009-9002-000</td><td></td></tr><tr><td>EEG - electrodos/electrodo de aguja subdérmica desechable</td><td>Céfalo</td><td>ACCE120550</td><td></td></tr><tr><td>ECG - electrodos</td><td>medtronic</td><td>3010107-003</td><td></td></tr><tr><td>Electrodos de ECG para RM</td><td>philips</td><td>ACCE120550</td><td></td></tr><tr><td>Muestreador de sangre arterial - aspirador</td><td>Radiómetro médico ApS</td><td>956552</td><td></td></tr><tr><td>Poliuretano Catéter de vena umbilical (5 Fr/Ch)</td><td>Covidien</td><td>8888160341</td><td></td></tr><tr><td>Poliuretano Catéter para venas umbilicales (3,5 Fr/ch)</td><td>Covidien</td><td>8888160333</td><td></td></tr><tr><td>Juego de suturas (tamaño 3-0)</td><td>Covidien</td><td>8886 623341</td><td></td></tr><tr><td>BD Aguja espinal 0.7x38mm</td><td>Agujas BD</td><td>405254</td><td></td></tr><tr><td>Gas con 96% de nitrógeno / 4% de oxígeno</td><td>Air Liquide</td><td>hecho por encargo</td><td></td></tr><tr><td>Sistema NeuroMonitor (CFM)</td><td>Natus Medical Incorporated</td><td>OBM70002</td><td></td></tr></tbody></table>

un modelo del cochinillo de neonatología encefalopatía hipóxico-isquémica

A Piglet Model of Neonatal Hypoxic-Ischemic Encephalopathy

Asfixia en el nacimiento, lo que causa la encefalopatía hipóxico-isquémica (EHI), representa 0.660.000 muertes en el mundo cada año, alrededor de un cuarto de 2,9 millones de muertes neonatales en el mundo. Los modelos animales de HIE han contribuido a la comprensión de la fisiopatología en HIE, y han puesto de relieve el proceso dinámico que se producen en la lesión cerebral debido a la asfixia perinatal. Por lo tanto, los estudios en animales han sugerido una ventana de tiempo para las estrategias de tratamiento post-injuria. La hipotermia ha sido probado como un tratamiento para HIE en modelos pdiglet y posteriormente demostrado ser eficaz en ensayos clínicos. Variaciones del modelo se han aplicado en el estudio de los métodos neuroprotectores complementarios y estudios de lechones de xenón y la melatonina han llevado a fase clínica I y II de los ensayos 1,2. El modelo de HIE lechones se utiliza más para los estudios resuscitation- y hemodinámicos neonatales, así como en las investigaciones de la hipoxia cerebral a nivel celular. Sin embargo, es un desafío técnicomodelo y las variaciones en el protocolo pueden conllevar lesiones cerebrales demasiado suave o demasiado severa. En este artículo, nos demuestran los procedimientos técnicos necesarios para el establecimiento de un modelo estable de lechones EHI neonatal. En primer lugar, el lechón recién nacido (&lt;24 horas de edad, la mediana de peso 1500 g) es anestesiado, intubado, y monitoreado en una configuración similar a la encontrada en una unidad de cuidados intensivos neonatales. Global hipoxia-isquemia es inducida mediante la reducción de la fracción inspiratoria de oxígeno para lograr la hipoxia global, isquemia a través de la hipotensión y un EEG de amplitud traza plana integrado (aEEG) indicativo de la hipoxia cerebral. La supervivencia se promueve mediante el ajuste de la oxigenación de acuerdo con la respuesta aEEG y la presión arterial. La lesión cerebral se cuantifica por histopatología y la resonancia magnética después de 72 horas.

Los efectos de la hipoxia-isquemia en el cerebro que ocurren durante el insulto inducida se documentan mediante el registro de la huella aEEG. Un representante aEEG traza se muestra en la Figura 6. <img alt="Figura 6" src="/files/ftp_upload/52454/52454fig6.jpg" /> Figura 6. Representante aEEG rastro. Baja amplitud debido a la hipoxia-isquemia. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52454/52454fig6large.jpg" ...

La encefalopatía hipóxico-isquémica después de la asfixia perinatal se puede estudiar utilizando modelos animales. Demostramos los procedimientos necesarios para establecer un modelo de lechón de encefalopatía hipóxico-isquémica neonatal.

Un modelo del cochinillo de Neonatología encefalopatía hipóxico-isquémica

Birth asphyxia, which causes hypoxic-ischemic encephalopathy (HIE), accounts for 0.66 million deaths worldwide each year, about a quarter of the ...

El objetivo general del siguiente experimento es demostrar un modelo de lechón de encefalopatía hipóxico-isquémica perinatal. Este modelo puede utilizarse entonces para la investigación de lesiones cerebrales neonatales. Primero, los lechones son sedados, ventilados y monitorizados en un montaje comparable al de una unidad de cuidados intensivos neonatales.La técnica descrita en el presente manuscrito utiliza un EEG con amplitud integrada para ajustar la hipoxia. De acuerdo con la resistencia de cada estudio individual, se induce hipoxia en el animal de manera controlada, manteniendo el EEG con amplitud integrada suprimido, al tiempo que se asegura la supervivencia. En este modelo de supervivencia de cuatro días, los animales son sacrificados a las 72 horas posteriores a la hipoxia.Finalmente, según el objetivo del experimento, se pueden evaluar resultados cerebrales y otros mediante imágenes por resonancia magnética, neuropatología y análisis de fluidos corporales y órganos. En este estudio, mostramos paso a paso los procedimientos técnicos necesarios para establecer un modelo de lechón de encefalopatía hipóxico-isquémica neonatal. El resultado del desarrollo nervioso es una preocupación fundamental en todas las áreas de cuidados intensivos neonatales.Los buenos modelos animales son esenciales para mejorar el manejo de la lesión cerebral neonatal. El modelo que está a punto de ver es una buena aproximación al curso clínico de la hipoxia isquémica. Por esta razón, los resultados se trasladan bien al entorno clínico; en el modelo presentado aquí, controlamos la gravedad y el momento del insulto hipóxico, minimizando así la variación biológica.Dado que la interpretación de los estudios clínicos resulta complicada, utilizamos lechones de raza danesa criados en tierra, con una edad posnatal de entre 18 y 24 horas. Estos animales pesan en promedio entre 1000 y 2000 gramos, y su fisiología es comparable en muchos aspectos a la del recién nacido humano. Este modelo puede emplearse para investigar los efectos del tratamiento mediante imágenes por resonancia magnética, neuropatología y biomarcadores en fluidos corporales como el líquido cefalorraquídeo, la orina y la sangre.Es un modelo técnicamente desafiante con el que trabajar. A continuación, demostramos cada paso necesario para completar el modelo. El equipo necesario para iniciar la anestesia es una máscara para la administración de sevoflurano, jeringas con catéter venoso periférico, solución salina, propofol, fentanilo, relajante muscular y penicilina.Una férula para abrir la boca, un hisopo con punta de algodón y un laringoscopio veterinario con hoja recta, tubos endotraqueales con manguito tipo Sloane, SIIS 3 0 2 0.5 y dos jeringas de bolsa autoinflable oh para la inflación del manguito y un estetoscopio. Se administra óxido de flúor mediante una máscara y se monitorea la profundidad de la anestesia. Según el protocolo, se coloca un catéter venoso periférico en una vena auricular y se lava con salina.En este momento, el animal está sedado, pero respira espontáneamente. Se inicia la anestesia intravenosa administrando fentanilo 30 microgramos por kilo, seguido de propofol, cinco miligramos por kilo y broon un miligramo por kilo inmediatamente antes de la intubación. Para la intubación, el lechón se coloca en posición supina.La longitud del tubo endotraqueal se mide desde la punta del hocico hasta por encima del borde esternal. Generalmente alrededor de 13 centímetros, se utiliza un hisopo de algodón para tirar hacia adelante de la epiglotis larga, de modo que pueda levantarse. Se utiliza el laringoscopio para obtener una vista completa de las cartílagos adenoides en las cuerdas vocales.Se aplica localmente un aerosol nasal en la laringe para prevenir espasmos. El tubo endotraqueal se avanza lentamente a través de las cuerdas vocales; cuando se ha progresado según la distancia previamente medida, el tubo endotraqueal se conecta a una bolsa autoinflable para la ventilación manual, correcto. Se confirma la colocación del tubo endotraqueal observando un movimiento torácico simétrico, la auscultación con estetoscopio, la confirmación visual de neblina dentro del tubo y la curva de CO2 al final de la espiración, que aparece en color blanco en el monitor.Finalmente, se infla el manguito para asegurar una vía aérea segura. Ahora se conecta el tubo endotraqueal a un ventilador para la ventilación mecánica. Finalmente, la infusión de propofol, cinco miligramos por kilo por hora, y fentanilo.Se inicia con 10 microgramos por kilo por hora. El ventilador se configura en modo controlado por volumen, suministrando volúmenes corrientes de 10 mililitros por kilo de equipo para monitoreo. El lechón lleva electrodos de ECG, un oxímetro de pulso, una sonda de temperatura rectal y equipo.Para la monitorización de la presión arterial central, se coloca el oxímetro de pulso y luego se inserta una sonda de temperatura rectal. Se afeita el tórax antes de colocar los electrodos. La pantalla muestra el ECG, la frecuencia cardíaca, la presión arterial central y la saturación de oxígeno.El equipo necesario para la colocación de catéteres umbilicales incluye campo estéril, bisturí, microinstrumental, catéteres umbilicales de tamaño 3,5 French y jeringas de cinco French para toma de muestras de sangre y lavado, así como un juego de sutura para la visualización de los vasos umbilicales. El cordón se corta al nivel de la piel. En la imagen, la vena umbilical se observa a la derecha, y una de las dos arterias umbilicales se observa a la izquierda.Primero, se inserta el catéter arterial hasta una profundidad igual al peso del lechón en kilogramos multiplicado por tres más 10 centímetros. La posición correcta se verifica retirando sangre. Posteriormente, se inserta el catéter venoso hasta una profundidad de cinco centímetros.Los catéteres se fijan mediante sutura. Utilizando una sutura de tres puntadas, se afeita la cabeza para la colocación de los electrodos. Para la monitorización del EEG con amplitud integrada, los electrodos parietales deben colocarse con al menos dos a cuatro centímetros de separación entre ellos, el electrodo de referencia en la línea media y el electrodo de tierra en cualquier lugar de la cabeza.La prueba de impedancia revela cuatro electrodos correctamente colocados con una buena relación señal-ruido. La parte inferior de la pantalla muestra la EEG en tiempo real, mientras que la parte superior muestra la EEG integrada por amplitud con compresión temporal; ahora se permite que el lechón descanse durante 60 minutos antes de inducir la hipoxia. La hipoxia se inicia cambiando a un ventilador que suministra una mezcla de nitrógeno y 4% de oxígeno.Se tarda un promedio de dos minutos en lograr un trazado plano en el EEG integrado por amplitud, lo que corresponde a una hipoxia significativa. Leucemia en el cerebro durante 45 minutos. La fracción de oxígeno inspirado se regula.Para mantener una amplitud de EEG plana por debajo de siete microvoltios durante la hipoxia, el lechón inicialmente se compensa aumentando la frecuencia cardíaca. A medida que la hipoxia continúa, el lechón comienza a descompensarse y la presión media material disminuye. En este punto, es fundamental ajustar la fracción de oxígeno inspirado para garantizar la supervivencia.Después de 45 minutos, la fracción de oxígeno inspirado se aumenta al 21 %, lo que resulta en un incremento de la actividad cerebral. Tras la hipoxia, se extuba la cría y se le permite despertar durante los siguientes cuatro días. La cría es cuidada por un técnico de animales experimentado, quien la alimenta y realiza una evaluación neurológica diaria.A las siete horas y dos horas, el cerdo está sedado y ventilado. Una vez más, la imagenología por resonancia genética y la espectroscopía son herramientas poderosas para examinar el cerebro. La imagenología por resonancia magnética se complementa con el examen neuropatológico.El cerebro se diseca cuidadosamente en cada área y se examina por un neuropatólogo experimentado. Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo establecer un modelo de lechón de encefalopatía hipóxico-isquémica neonatal. Con este modelo, se pueden investigar preguntas relevantes relacionadas con el diagnóstico y tratamiento de la lesión cerebral neonatal.Optimizando finalmente el manejo de lactantes afectados.

a-piglet-model-of-neonatal-hypoxic-ischemic-encephalopathy

Research

Investigación

JoVE Journal

Medicine

Medicina

El modelo de rata postnatal para la lesión cerebral hipóxico-isquémica es un modelo bien establecido de los derechos humanos neonatal encefalopatía hipóxica isquémica (EHI). En este artículo se describe el modelo de HIE en crías de ratas post-natal.

El modelo de encefalopatía isquémica hipóxica de la isquemia perinatal

Modelos de animales grandes tienen buenos valores de traslación en el examen de fisiología y farmacología de la asfixia neonatal. Utilizando los lechones recién nacidos, desarrollamos un protocolo experimental para simular asfixia neonatal que tiene ventajas de estudiar la hemodinámica sistémica y regional, el transporte de oxígeno a las vías bioquímicas y patológicas y correlaciones.

Un modelo porcino de la asfixia neonatal

El video muestra el procedimiento para crear un modelo de ratón para estudiar la lesión cerebral hipóxico-isquémica neonatal. Describe los pasos para inducir quirúrgicamente la isquemia y someter al animal a hipoxia para exacerbar el daño cerebral. Por último, se muestra cómo evaluar las lesiones cerebrales resultantes, asegurando que el modelo de ratón esté preparado para futuras investigaciones científicas.

Establecimiento de un modelo murino de lesión cerebral hipóxico-isquémica neonatal

Fuente: Jantzie, L. L., et. al. Modelado de la encefalopatía del prematuro mediante hipoxia-isquemia prenatal con lipopolisacárido intraamniótico en ratas. J. Vis. Exp. (2015)Este video muestra un protocolo para inducir condiciones hipóxico-isquémicas e inflamatorias en ratas fetales mediante la restricción del flujo sanguíneo uterino y la inyección de LPS, modelando la neuroinflamación y el desarrollo cerebral interrumpido relevante para los estudios de nacimientos prematuros.

Inducción de condiciones hipóxico-isquémicas e inflamatorias para modelar la encefalopatía en ratas prenatales

La encefalopatía del prematuro abarca las anomalías del sistema nervioso central asociadas con las lesiones del parto prematuro. Este informe describe un modelo de rata clínicamente relevante de hipoxia-isquemia sistémica transitoria en el útero y administración de lipopolisacáridos intraamnióticos (LPS) que imita la corioamnionitis, y el impacto relacionado de los estímulos infecciosos y la subperfusión placentaria en el desarrollo del SNC.

Modelado Encefalopatía del Prematuro El uso prenatal hipoxia-isquemia con lipopolisacárido intraamniótica en ratas

La investigación sobre la neurotoxicidad del desarrollo inducida por la anestesia (AIDN) se ha centrado en los roedores, que no son ampliamente aplicables a los seres humanos. Los modelos de primates no humanos son más relevantes, pero son costo prohibitivos y difíciles de usar para la experimentación. El lechón, por el contrario, es un modelo animal clínicamente relevante y práctico, ideal para el estudio de la neurotoxicidad anestésica.

Uso de un Modelo de Cochinillo para el Estudio de la Neurotoxicidad de Desarrollo inducida por Anestesia (AIDN): Un Enfoque de Neurociencia Translacional

Este manuscrito describe un método para grabaciones continuas de video EEG utilizando electrodos de profundidad múltiple en ratones neonatales sometidos a hipoxia-isquemia.

Electroencefalograma de video continuo durante la hipoxia-isquemia en ratones neonatales

Este modelo de lechón implica instrumentación quirúrgica, asfixia hasta el paro cardíaco, reanimación y observación posterior a la reanimación. El modelo permite múltiples muestreos por animal, y mediante el uso de presión arterial invasiva continua, ECG y monitoreo no invasivo del gasto cardíaco, proporciona conocimiento sobre hemodinámica y fisiopatología cardíaca en asfixia perinatal y reanimación cardiopulmonar neonatal.

Un modelo de asfixia perinatal de lechón para estudiar la lesión cardíaca y la hemodinámica después de un paro cardíaco, reanimación y el retorno de la circulación espontánea

Este protocolo describe el desarrollo de un modelo de lechón neonatal de lesión pulmonar aguda que modela los eventos patogénicos tempranos que ocurren en el pulmón prematuro, incluida la cantidad de surfactante subadecuada, hiperoxia, ventilación a alta presión e inflamación, para facilitar la comprensión de los desencadenantes moleculares de la displasia broncopulmonar y mejorar la traducción terapéutica.

Desarrollo de un modelo de lesión pulmonar aguda de lechones neonatales que recrea el entorno temprano de los pulmones de los lactantes prematuros

Estamos midiendo la sensibilidad y la activación de las células mástil mecánica perigenital en la próstata de macho C57BL / 6 ratones que se sometieron a un paradigma principios de estrés de la vida - la separación materna neonatal, con el fin de inducir un modelo preclínico de síndrome de dolor pélvico / crónica prostatitis crónica.

Evaluación de perigenital Sensibilidad y Prostática mástil activación celular en un modelo de ratón de la separación materna neonatal

Aprende a establecer un modelo de lechones con encefalopatía hipóxico-isquémica perinatal para investigar lesiones cerebrales neonatales. Este método utiliza EEG integrado por amplitud para titular hipoxia controlada y evaluar resultados mediante resonancia magnética y neuropatología.

Un modelo del cochinillo de Neonatología encefalopatía hipóxico-isquémica

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