Name: En Vivo, percutánea, Aguja Based, tomografía de coherencia óptica de las masas renales (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-03-30T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 31 s
Description: Aprende a realizar tomografía de coherencia óptica percutánea guiada por ultrasonido para masas renales. Esta técnica permite obtener imágenes en tiempo real y diferenciación tumoral inmediata mediante biopsia óptica.

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Este trabajo está financiado por la Fundación para la Cura del Cáncer, la Fundación Holandesa de Tecnología (STW) y la Organización Holandesa para la Investigación y el Desarrollo en Salud (ZonMw).

El procedimiento presentado se lleva a cabo bajo un protocolo de investigación aprobado por la Junta de Revisión Institucional del Centro Médico Académico de Amsterdam, número de registro NL41985.018. Consentimiento informado por escrito se requiere de todos los participantes. 1. Sistema <ol><li> Para este experimento, utilizar un sistema OCT de dominio Fourier, que opera a una banda de longitud de onda de 1,280-1,350 nm 13. Dominio de Fourier interferometría de baja coherencia permite la exploración continua que aumenta la velocidad de adquisición de datos en comparación con los sistemas TCO de dominio de tiempo de la primera generación. Nota: El sistema octubre se interconecta con una sonda de fibra óptica, la exploración helicoidal en ~ 90 ° ángulo. Tiene un diámetro exterior de 2.7F (0,9 mm) y una longitud insertable de 135 cm. La sonda se conecta a la consola de octubre hasta un motor de accionamiento y el controlador óptico (muelle de montaje) con un rango de retroceso de 54 mm. Los conjuntos de datos de OCT adquiridas constan de 541 imágenes de cortes transversales (B-scan) wITH una resolución axial de 15 mm (Figura 1, 2). </li><li> Para garantizar mediciones de atenuación exactos y reproducibles, calibrar mediante la medición μ PTU para su aumento de las concentraciones con base en porcentaje en peso de una emulsión de grasa, (por ejemplo, Intralipid) como se describe anteriormente por Kodach et al. 14, 15. En breve: <ol><li> Diluir un lote estándar de 20% de emulsión de grasa con desmineralizada H 2 O para alcanzar concentraciones de 0,125, 0,250, 0,5, 1,0, 2,0, 4,0, 10, 15 y 20 (de stock) por ciento. <ol><li> Coloque la sonda octubre en 200 ml de mezcla de emulsión de grasa y adquirir una medición de octubre. </li><li> Referencia cruzada extraído μ octubre valores con valores conocidos en la literatura. </li></ol></li></ol></li></ol> 2. Time Out y Colocación del paciente <ol><li> Antes de iniciar el procedimiento, realice un &quot;tiempo fuera&quot; comprobar el nombre, fecha de nacimiento, procedimiento, prlado ocedural, uso de anticoagulantes, y las alergias. </li><li> Dependiendo de la localización del tumor, colocar al paciente en cualquier posición decúbito prono o lateral. Proporcionar al paciente con un apoyo adecuado y verificar si él / ella espera estar cómodo en esta posición durante un período de 20 a 40 min. </li><li> El uso de ultrasonido (US) 16, la localización del tumor y marcar el punto de entrada de la aguja en la piel con tinta permanente. NOTA: Cuando se utiliza la tomografía computarizada (TC), utilice una plantilla orientación aguja flexible para localizar la posición preferente de la aguja de acceso. </li></ol> 3. Desinfección y estéril Draping <ol><li> Ponte una gorra y la boca cubierta quirúrgica. </li><li> Limpie la piel alrededor del sitio de la punción utilizando una solución de clorhexidina / alcohol, teniendo cuidado de no quitar la marca de entrada de la aguja colocada previamente (paso 2.3). Desinfección de un área amplia evitará la necesidad de una limpieza adicional en caso de inesperado reposicionamiento aguja de acceso. </li><li> Con reGard del contenido estéril, abrir el conjunto de la punción percutánea que contiene: una jeringa de 10 ml, una aguja de aspiración romo, un G aguja de inyección 21, un bisturí, una aguja introductora co-axial 15 G, G una aguja trocar 18 y un 16 G pistola de biopsia de núcleo. </li><li> Lávese bien las manos, aplicar desinfectante de manos después. Ponte una bata quirúrgica y guantes estériles. </li><li> Cubra al paciente en paños estériles. </li><li> Aplique una cubierta estéril alrededor de la sonda de ultrasonido y fijar la guía de la aguja en su lugar. </li></ol> 4. Preparación octubre <ol><li> Inicie la consola de octubre e introduzca los datos del paciente en los campos marcados identificación del paciente, apellido, primer nombre y DOB (fecha de nacimiento), utilizando la interfaz de la consola. </li><li> Respecto del contenido estéril, descomprimir el paquete de octubre que contiene una sonda de octubre, una cubierta de muelle de montaje estéril y una jeringa luer-lock 5 ml. </li><li> Aplicar la cubierta estéril hasta el muelle de montaje de la consola octubre. Guiando el muelle de montaje no estéril requiere laayuda de un asistente. </li><li> Llene la jeringa de 5 ml con NaCl al 0,9% y adjuntarlo al puerto de descarga. Enjuague la sonda de octubre hasta que aparezca agua en la parte distal de la cubierta de la sonda. </li><li> Cargue la sonda de octubre en la base de montaje. Después de cargar la sonda girará y emitir luz roja de confirmar su correcto funcionamiento. Deja la sonda en su cubierta protectora durante el lavado y la carga para reducir al mínimo el riesgo de daños. </li><li> Retire la sonda de octubre de su cubierta. Coloque la sonda sobre una superficie dura y el uso de un bisturí para acortar la punta. Fijar la parte distal de la sonda durante el corte con el fin de minimizar la presión sobre la fibra óptica y el prisma. Cortar 5 mm distal del prisma, utilizando la (rojo) luz emitida para la orientación. </li></ol> 5. Punción <ol><li> Anestesiar la piel y las capas profundas utilizando lidocaína al 2% (20 mg / ml). Espere unos minutos que permitan la lidocaína para tener efecto. Pregunte al paciente si hay algún dolor. </li><li> Uso de la guía de la aguja, coloque la15 G co-axial la aguja introductora la verificación de la posición a través de imágenes. Si la colocación es satisfactoria, retire el obturador (núcleo aguja). </li><li> Coloque el G aguja trocar 18 a través de la aguja introductora, la perforación de la tumor. Una vez más verificar la posición de la aguja con formación de imágenes. Si la colocación es satisfactoria retirar el obturador. </li><li> Alimentar a la sonda de octubre hasta la aguja trocar hasta sentir resistencia. </li><li> Mientras que la fijación de la sonda de PTU, retraer la aguja trocar, dejando al descubierto la sonda OCT para el tejido tumoral. Manteniendo la punta de la aguja trocar dentro del tumor minimiza el retorcimiento de la sonda de PTU durante ciclos de respiración. Esto reduce el riesgo de daño de la sonda. </li><li> Octubre Scan: <ol><li> Realizar una exploración octubre, con la consola fijado en 541 B-scan por conjunto de datos. El sistema OCT utiliza aquí llevará a cabo una retirada automatizada en una longitud de 5,4 cm que no requieren ajustes de parámetros específicos. </li><li> Compruebe la exploración de calidad, artefactos y la aparición de tejido sólido (Figura 1A). Los artefactos más comúnmente aparecen como bandas circulares de pie entre el patrón normal octubre (Figura 1B). </li><li> Vuelva a colocar la sonda si persiste después de volver a analizar artefactos. </li></ol></li><li> Repita el paso 5.6 hasta un mínimo de 3 conjuntos de datos de OCT se adquieren. </li><li> Retire la sonda PTU y aguja trocar, dejando la aguja introductora en el lugar. </li><li> Armar el arma biopsia central y colocarlo a través de la aguja introductora, la verificación de la posición en la imagen. </li><li> Si la colocación es satisfactoria, disparar el arma biopsia. </li><li> Coloque el material de biopsia en el recipiente según el protocolo departamento de patología. Aquí, lugar biopsias en una placa de Petri con una incrustación de papel, suficientemente saturados con 0,9% de NaCl. </li><li> Compruebe la calidad de la biopsia central y repita el paso 5.9 y 5.10 hasta obtener material suficiente. </li></ol>

<ol><li>Jemal, A., Siegel, R., Xu, J., Ward, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cancer+statistics%2C+2010%5BTitle%5D)+AND+%22CA+Cancer+J.+Clin%22%5BJournal%5D)">Cancer statistics, 2010.</a> CA Cancer J. Clin. 60, 277-300 (2010).</li>
<li>Mathew, A., Devesa, S. S., Fraumeni, J. F., Chow, W. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Global+increases+in+kidney+cancer+incidence%2C+1973-1992%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+J.+Cancer+Prev%22%5BJournal%5D)">Global increases in kidney cancer incidence, 1973-1992.</a> Eur. J. Cancer Prev. 11, 171-178 (2002).</li>
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<li>Ljungberg, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((EAU+guidelines+on+renal+cell+carcinoma%3A+the+2010+update%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+Urol%22%5BJournal%5D)">EAU guidelines on renal cell carcinoma: the 2010 update.</a> Eur. Urol. 58, 398-406 (2010).</li>
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<li>Barwari, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Advanced+diagnostics+in+renal+mass+using+optical+coherence+tomography%3A+a+preliminary+report%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Endourol%22%5BJournal%5D)">Advanced diagnostics in renal mass using optical coherence tomography: a preliminary report.</a> J. Endourol. 25, 311-315 (2011).</li>
<li>Cauberg, E. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+measurement+of+attenuation+coefficients+of+bladder+biopsies+using+optical+coherence+tomography+for+grading+urothelial+carcinoma+of+the+bladder%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomed.+Opt%22%5BJournal%5D)">Quantitative measurement of attenuation coefficients of bladder biopsies using optical coherence tomography for grading urothelial carcinoma of the bladder.</a> J. Biomed. Opt. 15, 066013(2010).</li>
<li>Bus, M. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Volumetric+in+vivo+visualization+of+upper+urinary+tract+tumors+using+optical+coherence+tomography%3A+a+pilot+study%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Urol%22%5BJournal%5D)">Volumetric in vivo visualization of upper urinary tract tumors using optical coherence tomography: a pilot study.</a> J. Urol. 190, 2236-2242 (2013).</li>
<li>Wessels, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optical+coherence+tomography+in+vulvar+intraepithelial+neoplasia%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomedical+Optics%22%5BJournal%5D)">Optical coherence tomography in vulvar intraepithelial neoplasia.</a> Journal of Biomedical Optics. 17, (2012).</li>
<li>Yun, S. H., Tearney, G. J., de Boer, J. F., Iftimia, N., Bouma, B. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-speed+optical+frequency-domain+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Optics+Express%22%5BJournal%5D)">High-speed optical frequency-domain imaging.</a> Optics Express. 11, 2953-2963 (2003).</li>
<li>Kodach, V. M., Kalkman, J., Faber, D. J., van Leeuwen, T. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+comparison+of+the+OCT+imaging+depth+at+1300+nm+and+1600+nm%5BTitle%5D)+AND+%22Biomed.+Opt.+Express%22%5BJournal%5D)">Quantitative comparison of the OCT imaging depth at 1300 nm and 1600 nm.</a> Biomed. Opt. Express. 1, 176-185 (2010).</li>
<li>Kinkelder, R., de Bruin, D. M., Verbraak, F. D., van Leeuwen, T. G., Faber, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+retinal+nerve+fiber+layer+thickness+measurements+by+spectral-domain+optical+coherence+tomography+systems+using+a+phantom+eye+model%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biophotonics%22%5BJournal%5D)">Comparison of retinal nerve fiber layer thickness measurements by spectral-domain optical coherence tomography systems using a phantom eye model.</a> J. Biophotonics. 6, 314-320 (2013).</li>
<li>Baxter, G. M., Sihdu, P. S. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aBaxter%2C+GM+%22Ultrasound+of+the+Urogenital+System%22">Ultrasound of the Urogenital System</a>. , Thieme Medical Publishers Inc. New York, United States. (2006).</li>
</ol>

Los autores de este artículo no tienen nada que revelar.

En esta publicación nos informe sobre la viabilidad de la percutánea, la aguja basada, octubre del riñón. Este es un primer paso esencial en el desarrollo de octubre en una técnica aplicable clínicamente para la diferenciación del tumor, denominado como una &quot;biopsia óptica&quot;. Nuestros primeros 25 pacientes han demostrado percutánea octubre al ser un procedimiento sencillo y seguro. Una biopsia óptica tiene dos ventajas sobre biopsias convencionales. En primer lugar, la adquisición en tiempo real y análisis de d...

Las últimas décadas han mostrado un aumento constante en la incidencia de tumores renales 1,2. Hasta ahora, las decisiones de tratamiento en masa renal se han realizado principalmente en la base de MRI y CT características de imagen, la edad y la comorbilidad. Sin embargo, estos métodos de diagnóstico y los parámetros clínicos carecen de la sutileza para detectar realmente el potencial de malignidad de una masa renal. Una biopsia de núcleo o aspiración con aguja fina con el tejido suficiente para la evaluación patológica (de diagnóstico) proporciona la diferenciación tumoral objetiva tanto con la sensibilidad y especificidad en el rango de 95-100% 3. Por lo tanto la biopsia está ganando aceptación en la evaluación de las masas renales sospechosas 4,5. Sin embargo, las biopsias sin tejido suficiente para establecer un diagnóstico o con normalidad parénquima renal (no diagnóstico) se producen a un ritmo del 10-20% en general, e incluso hasta un 30% en pequeñas masas renales (&lt;4 cm, MER), lo que retrasa el proceso de diagnóstico debido a la necesidad frecuente para adicionalprocedimientos de biopsia de 3,5. La tomografía de coherencia óptica (OCT) es una novela técnica de imagen que tiene el potencial para superar los obstáculos mencionados en la diferenciación de la masa renal. Basado en la retrodispersión de la luz del infrarrojo cercano, OCT proporciona imágenes con una resolución axial 15 micras, con una penetración en el tejido eficaz de 2-3 mm (Figura 1, 2). La pérdida de intensidad de la señal por milímetro de penetración en el tejido, una resultante de los tejidos específicos de dispersión de la luz, se expresa como el coeficiente de atenuación (μ OCT: -1 mm) como se describe por Faber et al 6.. Características histológicas se pueden correlacionar con los valores μ octubre proporcionar un parámetro cuantitativo para la diferenciación de tejidos (Figura 3). Durante la carcinogénesis, las células malignas muestran un número aumentado, los núcleos más grandes y con forma irregular<html> un mayor índice de refracción y las mitocondrias más activos. Debido a esta sobreexpresión de componentes de la célula, un cambio en μ OCT es de esperar cuando la comparación de los tumores malignos de tumores benignos o tejido no afectado 7. Recientemente se ha estudiado la capacidad de la TCO superficial para diferenciar entre masas renales benignos y malignos 8,9. En 16 pacientes, intraoperatorias mediciones octubre de tejido tumoral se obtuvieron utilizando una sonda de octubre colocado externamente. El grupo de control compuesto por mediciones octubre de tejido no afectado en los mismos pacientes. El tejido normal mostró un coeficiente de atenuación mediana significativamente menor en comparación con el tejido maligno, lo que confirma el potencial de la OCT para la diferenciación del tumor. Este análisis cuantitativo se ha aplicado de una manera similar a la de grado otros tipos de tejido maligno, tales como carcinoma urotelial 10,11 y vulvar diferenciación neoplasia epitelial 12. ent &quot;&gt; Nuestro objetivo es desarrollar octubre en una biopsia óptica, que proporciona imágenes en tiempo real combinado con la diferenciación del tumor en el terreno. El objetivo del presente estudio es describir un percutánea, aguja basada, octubre enfoque en pacientes diagnosticados con un masa renal mejorador sólido. Esta descripción del método es, a nuestro entender, el primero en evaluar la posibilidad de aguja octubre con base de tumores renales.

<table><tbody><tr><td>Aguja introductora coaxial de 15 G/7,5 cm</td><td>Angiotech, Gainesville, EE. UU.</td><td>MCXS1612SX</td><td></td></tr><tr><td>Aguja de trocar de 18 G/20 cm</td><td>Cook medical, Bloomington, EE. UU</td>. <td>DTN-18-20.0-U Pistola de biopsia</td><td></td></tr><tr><td>rápida de núcleo rápido de 16 G/20 cm</td><td>Cook Medical, Bloomington, EE. UU</td>. <td>G07827</td><td></td></tr><tr><td>Sistema de optimización PCI Ilumien Optis (OCT & FFR)</td><td>St. Jude medical, St. Paul, USA</td><td>C408650</td><td>Parte del Kit Dragonfly. St. Jude medical, St. Paul, USA. (C4088643)</td></tr><tr><td>Catéter de imágenes Dragonfly Duo LightLab</td><td>Imaging, Westford, EE. UU</td>. <td>C408644</td><td>parte de Dragonfly Kit. St. Jude medical, St. Paul, EE. UU. (C4088643)</td></tr><tr><td>Cubierta de muelle estéril</td><td>CFI Med. Solutions, Fenton, EE. UU.</td><td>200-700-00</td><td>Parte de Dragonfly Kit. St. Jude medical, St. Paul, EE. UU. (C4088643)</td></tr><tr><td>5 ml Jeringa Luer-lock</td><td>Merit Med. Syst., South Jordan, EE. UU.</td><td>C408647</td><td></td></tr><tr><td>Jeringa de 10 ml</td><td>BD, Franklin Lakes, EE. UU.</td><td>300912</td><td></td></tr><tr><td>18 g Aguja de relleno romo</td><td>BD, Franklin Lakes, EE. UU</td>. <td>305180</td><td></td></tr><tr><td>Aguja de inyección de 21 g</td><td>BD, Franklin Lakes, EE. UU</td>. <td>301155</td><td></td></tr><tr><td>Bisturí estéril</td><td>BD, Franklin Lakes, EE. UU</td>. <td>372611</td><td></td></tr><tr><td>Solución de NaCl al 0,9%</td><td>Braun, Melsungen AG, Alemania</td><td>222434</td><td></td></tr><tr><td>Lidoca&iuml; ne Solución de HCl al 2% (20 mg/ml)</td><td>Braun, Melsungen AG, Alemania</td><td>3624480</td><td></td></tr><tr><td>Gel de ultrasonido estéril, Aquasonic 100</td><td>Parker Lab. Inc., Fairfield, EE. UU.</td><td>GE424609</td><td></td></tr><tr><td>Cubierta de ultrasonido estéril</td><td>Microtek Med., Alpharetta, EE. UU.</td><td>Contenedor de</td> patología PC1289EU <td></td></tr><tr><td>Paquete</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr>de<td>software AMIRA</td><td>Grupo de Ciencias de la Visualización FEI, Hillsboro, Plataforma de software de EE. UU</td>. <td>para análisis</td><td></td>de datos 3D Paquete</tr> de <tr><td>software FIJI (código abierto)</td><td>Código abierto, http://fiji.sc/Fiji</td><td></td><td>Software de procesamiento de imágenes de código abierto</td></tr></tbody></table>

en vivo, percutánea, aguja based, tomografía de coherencia óptica de las masas renales

In Vivo, Percutaneous, Needle Based, Optical Coherence Tomography of Renal Masses

La tomografía de coherencia óptica (OCT) es el equivalente óptico de las imágenes de ultrasonido, basadas en la retrodispersión de la luz infrarroja cercana. La OCT proporciona imágenes en tiempo real con una resolución axial de 15 μm con una penetración efectiva del tejido de 2-3 mm. Dentro de las imágenes OCT se calcula la pérdida de intensidad de la señal por milímetro de penetración en el tejido, el coeficiente de atenuación. El coeficiente de atenuación es una propiedad específica del tejido, que proporciona un parámetro cuantitativo para la diferenciación del tejido. 
Hasta ahora, las decisiones sobre el tratamiento de la masa renal se han tomado principalmente sobre la base de las características de las imágenes de RM y TC, la edad y la comorbilidad. Sin embargo, estos parámetros y métodos diagnósticos carecen de la precisión necesaria para detectar realmente el potencial maligno de una masa renal. Una biopsia con aguja gruesa o una aspiración con aguja fina exitosas proporcionan una diferenciación objetiva del tumor con sensibilidad y especificidad en el rango del 95-100%. Sin embargo, es de esperar una tasa no diagnóstica del 10-20% en general, e incluso hasta el 30% en los SRM, lo que retrasa el proceso de diagnóstico debido a la necesidad frecuente de procedimientos de biopsia adicionales. 
Nuestro objetivo es desarrollar la OCT en una biopsia óptica, proporcionando imágenes en tiempo real combinadas con la diferenciación tumoral en el lugar. Esta publicación proporciona un enfoque detallado paso a paso para la OCT percutánea basada en agujas de las masas renales.

Entre los primeros 25 tumores (23 pacientes), se realizaron un total de 24 procedimientos exitosos octubre. En un caso de un mal funcionamiento de la sonda llevó a la incapacidad para adquirir una exploración de PTU. Dos eventos adversos (AE) se produjo, que se describen en detalle en la sección de discusión. Características generales de los pacientes se encuentran en la Tabla 1. La consola de octubre ha software pre-instalado que proporciona en tiempo real las imágenes de O...

La tomografía de coherencia óptica (OCT) es una técnica de imagen de alta resolución que permite el análisis de las propiedades ópticas específicas de los tejidos, proporcionando los medios para la diferenciación de los tejidos. Desarrollamos OCT basada en agujas, que proporciona imágenes en tiempo real combinadas con la diferenciación tumoral en el lugar. En esta publicación se describe un método para la OCT percutánea basada en aguja de las masas renales.

En Vivo, percutánea, Aguja Based, tomografía de coherencia óptica de las masas renales

Optical coherence tomography (OCT) is the optical equivalent of ultrasound imaging, based on the backscattering of near infrared light. OCT provides real ...

El objetivo de este proyecto es demostrar la viabilidad de la tomografía de coherencia óptica basada en aguja percutánea de masas renales. Los conocimientos y la experiencia adquiridos en la tomografía de coherencia óptica, o OCT, ahora se están implementando in vivo en el riñón. El desarrollo de la OCT como biopsia óptica ha sido impulsado por la necesidad clínica de una técnica precisa y sencilla.Para la diferenciación tumoral. Nuestro objetivo es desarrollar la OCT hasta convertirla en una biopsia óptica que proporcione imágenes en tiempo real con diferenciación tumoral inmediata. Este video comenzará con una representación esquemática del procedimiento completo.A continuación, le mostraremos el video real del procedimiento que se lleva a cabo en nuestras salas individuales de radiología. Mediante ultrasonido, localice el tumor y marque en la piel el punto de entrada de la aguja. Utilizando una guía para aguja, coloque la aguja introductora coaxial de calibre 15. Coloque la aguja trocar de calibre 18 e introduzca la sonda OCT a través de la aguja trocar.Mientras fija la sonda OCT, retire la aguja trocar. Para exponer la sonda OCT, realice una tomografía de coherencia óptica. Retire la sonda OCT y la aguja trocar.Coloque la pistola de biopsia con aguja a través de la aguja introductora. Si la posición es satisfactoria, accione la pistola de biopsia. En esta demostración, utilizamos el sistema OCT ilumien optis disponible comercialmente, conectado a una sonda de imagen intravascular dragonfly duo.El dúo de libélula es una sonda rotacional que escanea a un ángulo de 90 grados. Tiene un diámetro exterior de 2,7 French 0,9 milímetros y una longitud insertable de 135 centímetros. Antes de comenzar el procedimiento, se realiza un procedimiento de pausa. Dependiendo de la ubicación del tumor, se coloca al paciente en posición prona o lateral. Proporcione al paciente un soporte adecuado y verifique si espera sentirse cómodo en esta posición. Durante un período de 20 a 40 minutos, utilice ultrasonido para localizar el tumor y marque con tinta permanente el punto de entrada de la aguja sobre la piel; limpie la piel alrededor del sitio de punción utilizando una solución de alcohol con clorhexidina.Teniendo cuidado de no eliminar la marca previa de entrada de la aguja con respecto al contenido estéril. Abra el juego de punción percutánea, lávese las manos minuciosamente y aplique desinfectante para manos después, póngase una bata quirúrgica y guantes estériles. Cubra al paciente con campos estériles.Coloque una cubierta estéril alrededor del transductor de ultrasonido y fije la guía de aguja al transductor. Encienda la consola e ingrese los datos del paciente. Aplique la cubierta estéril al soporte de montaje del equipo de OCT.Llene la jeringa de cinco mililitros con solución de cloruro de sodio al 0,9 % y conéctela al puerto de lavado de la sonda. Lave la sonda de OCT hasta que el agua aparezca en la parte distal de la cubierta de la sonda. Cargue la sonda de OCT en el soporte de montaje, dejando la sonda dentro de su cubierta protectora.Durante el montaje con lavado, minimice el riesgo de daño a la sonda. Coloque la sonda sobre una superficie dura y use el bisturí para acortar la punta. Corte cinco milímetros hacia distal respecto al prisma, utilizando la luz emitida como orientación.Sujete la parte distal de la sonda durante el corte. Con el fin de minimizar la presión sobre la fibra y el prisma, anestesie la piel y las capas profundas utilizando lidocaína al 2%. Espere varios minutos para permitir que la lidocaína haga efecto. Instruya al paciente para que le informe en caso de dolor.Utilizando una guía de aguja, coloque la aguja introductora coaxial de calibre 15, verificando la posición mediante imágenes. Si la colocación es satisfactoria, retire el obturador e introduzca la aguja trocar de calibre 18 a través de la aguja introductora. Perfore el tumor y verifique la posición de la aguja mediante imágenes.Si la colocación es satisfactoria, retire el obturador. Introduzca la sonda OCT por la aguja del trocar hasta sentir resistencia. Mientras fija la sonda OCT, retire la aguja del trocar para exponer la sonda al tejido tumoral.Mantener la punta de la aguja del trocar dentro del tumor minimiza el plegamiento de la sonda OCT durante los ciclos respiratorios, reduciendo el riesgo de daño a la sonda. Realice una tomografía de coherencia óptica con una consola ajustada a 541 escaneos B por conjunto de datos. Revise el escaneo en busca de artefactos de calidad y la presencia de tejido sólido.Repita el escaneo hasta obtener un mínimo de tres conjuntos de datos de OCT. Retire la sonda de OCT y la aguja trocar, dejando la aguja introductora en su lugar. Arme la pistola de biopsia con núcleo y colóquela a través de la aguja introductora.Verificar la posición mediante imágenes. Si la colocación es satisfactoria, accionar la pistola de biopsia y colocar el material de biopsia en un recipiente según el protocolo del departamento de anatomía patológica. Repetir la biopsia hasta obtener material suficiente.Los archivos de datos brutos y los archivos TIF se exportan desde la consola de OCT. Un volumen 3D se reconstruye a partir de los datos brutos mediante el paquete de software Amira. Esto proporciona una vista general tridimensional de la trayectoria escaneada.Puede observarse una clara distinción visual a medida que el escaneo atraviesa tejido sólido, tejido adiposo perineal y finalmente termina dentro de la aguja del trócar. Los archivos TIFF exportados pueden cargarse en Fiji para ser visualizados en 2D desplazándose a través de los escaneos B apilados. Combinando un espejo y Fiji, se selecciona un área de interés dentro de la zona de interés.Se seleccionan escaneos B equidistantes dentro de los escaneos B respectivos. El coeficiente de atenuación puede determinarse a lo largo de una línea recta que se extiende hacia afuera desde el centro de la sonda. Fiji tiene la opción de trazar los puntos de datos a lo largo de la línea de atenuación, creando así un gráfico.La pendiente del gráfico mostrado representa el coeficiente de atenuación o la pérdida de intensidad de la señal por milímetro de penetración en el tejido. Al correlacionar las mediciones de atenuación con los resultados de histopatología, se pueden derivar valores de corte específicos para cada tejido. Lo que proporciona los medios para la diferenciación de tumores.Un enfoque percutáneo es esencial para el desarrollo de la OCT como una biopsia óptica aplicable clínicamente. En este video, les hemos mostrado cómo realizamos la OCT percutánea guiada por ultrasonido de masas renales.

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Research

Investigación

JoVE Journal

Medicine

Medicina

Este video muestra una técnica de imagen in vivo para detectar y cuantificar la inflamación ocular en un modelo de ratón de uveítis postinfecciosa. La técnica, conocida como tomografía de coherencia óptica (OCT, por sus siglas en inglés), genera imágenes transversales de alta resolución del ojo para evaluar la progresión de la enfermedad.

Tomografía de coherencia óptica para evaluar la uveítis en un modelo de ratón

Source: Jagodzinska, J., et. al., Tomografía de Coherencia Óptica: Imágenes de las Células Gangliales de la Retina del Ratón In Vivo. J. Vis. Exp. (2017)  En este video, demostramos el uso de la tomografía de coherencia óptica de dominio espectral (SD-OCT) para obtener imágenes de las capas de la retina y evaluar los cambios estructurales en un modelo de ratón modificado genéticamente con neuropatía óptica.

Obtención de imágenes in vivo de la retina del ratón mediante tomografía de coherencia óptica

Este manuscrito describe un protocolo para la proyección de imagen en vivo de la retina de ratón con tomografía de coherencia óptica de alta resolución de dominio espectral (SD-OCT). Se centra en las células ganglionares de la retina (RGC) en la región de pepipapilar, con varios análisis y cuantificación de enfoques descritos.

Tomografía de coherencia óptica: Proyección de imagen de ratón ganglionares de la retina las células In Vivo

Presentamos la utilidad de la proyección de imagen longitudinal en vivo en el seguimiento de los cambios morfológicos del neovascularization coroides laser-inducida en ratones.

En Vivo La proyección de imagen multimodal y análisis del modelo de neovascularización coroidea inducida por láser Mouse

Aquí utilizamos bioluminiscente, rayos x y emisión de positrones la tomografía/computado tomografía la proyección de imagen para estudiar cómo inhibidor mTOR actividad impactos tumores mieloma engrafted de médula ósea en un modelo de xenoinjerto. Esto permite fisiológicamente relevantes, no invasivo y multimodales análisis del efecto anti-mieloma de tratamientos contra tumores mieloma médula engrafted en vivo.

Proyección de imagen de tomografía multimodal bioluminiscente y emisión positrónica tomografía/computacional de xenoinjertos de médula ósea del mieloma múltiple en ratones NOG

Tomografía de coherencia óptica (OCT), una tecnología de imagen tridimensional, fue utilizada para monitorear y caracterizar la cinética de crecimiento de esferoides multicelulares tumor. Cuantificación volumétrica precisa de esferoides tumorales usando un voxel contando el enfoque y la detección de tejido libre de etiqueta muerto en esferoides basado en contraste intrínseco atenuación óptica, fueron demostrados.

Longitudinal control morfológico y fisiológico de esferoides tumorales tridimensional mediante tomografía de coherencia óptica

La combinación de etiquetado de anticuerpos, limpieza óptica y microscopía de luz avanzada permite el análisis tridimensional de estructuras u órganos completos. Aquí se describe un método sencillo para combinar la inmunoetiquetado de rodajas renales gruesas, la limpieza óptica con la canela etílico y la imagen confocal que permite la visualización y cuantificación de estructuras renales tridimensionales.

Limpieza óptica e imágenes del tejido renal inmunoetiquetado

Aquí, describimos el uso de la tomografía de coherencia óptica de dominio espectral (SD-OCT) para visualizar estructuras retinianas y oculares in vivo en modelos de degeneración retiniana, glaucoma, retinopatía diabética y miopía.

Evaluaciones estructurales in vivo de enfermedades oculares en modelos de roedores mediante tomografía de coherencia óptica

Aquí, describimos una técnica de imagen in vivo utilizando tomografía de coherencia óptica para facilitar el diagnóstico y la medición cuantitativa de la retinopatía en ratones.

Aplicación de la tomografía de coherencia óptica a un modelo de retinopatía en ratones

El presente protocolo describe la implantación y evaluación del melanoma en la coroides murina mediante tomografía de coherencia óptica.

Implantación y evaluación del melanoma en la coroides murina mediante tomografía de coherencia óptica

La traslación de los hallazgos de la microscopía intravital se ve desafiada por su poca profundidad de penetración en el tejido. Aquí describimos un modelo de ratón de cámara de ventana dorsal que permite el registro conjunto de la microscopía intravital y las modalidades de imagen clínicamente aplicables (p. ej., TC, RM) para la correlación espacial directa, lo que podría agilizar la traducción clínica de los hallazgos de la microscopía intravital.

Un modelo de ratón tumoral con cámara de ventana de pliegue cutáneo dorsal para la microscopía intravital combinada y la resonancia magnética en la investigación traslacional del cáncer

Aprende a realizar tomografía de coherencia óptica percutánea guiada por ultrasonido para masas renales. Esta técnica permite obtener imágenes en tiempo real y diferenciación tumoral inmediata mediante biopsia óptica.

En Vivo, percutánea, Aguja Based, tomografía de coherencia óptica de las masas renales

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