Name: Trombosis modelo de ratón de la arteria carótida y Mesenterio Embarcaciones inducida por cloruro férrico- (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-06-29T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 26 s
Description: Aprende a inducir trombosis en ratones usando cloruro férrico y microscopía intravital. Este método permite monitorear la formación de trombos en arteria carótida y vasos mesentéricos para evaluar fármacos antitrombóticos.

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Los autores desean agradecer el apoyo técnico de la Alegría Yao y el Dr. Karen Alt, así como la financiación de la NHMRC y NHF.

Todos los experimentos con animales fueron aprobados por el Medical Research Alfred y Comité de Educación del Distrito Electoral Animal Ética (E / 1534/2015 / B). Todas las manipulaciones quirúrgicas se realizaron bajo anestesia total y los animales no experimentan dolor en cualquier etapa. Todos los experimentos descritos son la no recuperación. 1. Preparación <ol><li> Cortar bandas delgadas de papel de filtro (1 mm x 2 mm). </li><li> Recién preparar 2 soluciones de cloruro férrico de 4% (w / v) y 6% (w / v) diluido en agua desionizada. Prepare la solución de rodamina 6G 0,3% en PBS, se filtra a través de 0,22 micras. </li><li> Corte un pedazo pequeño (5 mm x 1 cm) de la envoltura de plástico blanco de jeringa. </li></ol> 2. Mesenterio Arteriola formación de trombos Observado por Microscopia intravital <ol><li> Pesar un 10-12 semanas de edad C57BL / 6 de tipo salvaje del ratón y en consecuencia anestesiar con una mezcla de ketamina (100 mg / kg) y xilazina (10 mg / kg), aunque la inyección intraperitoneal. Supervisar la profundidad de la anestesia por la respuesta a los pies, la cola y / o pellizco de piel, la reactividad de pellizco córnea y los párpados, y la ausencia de movimiento bigotes. Si es necesario, inyectar una segunda dosis de ketamina (50 mg / kg) para mantener la anestesia del animal. Aplique un ungüento veterinario en los ojos para evitar la sequedad mientras que bajo anestesia. Coloca el ratón en una pequeña placa de Petri colocado sobre una almohadilla eléctrica ajustada a 37 ° C. NOTA: Aunque la inyección IP puede resultar en dolor para los animales, la duración de este malestar será mínimo (menos de 3 segundos). El dolor y las molestias asociadas con las inyecciones se reducirán al mínimo mediante el uso de personal experimentado y competente y tamaño de la aguja apropiada (25 G). Después de todos los procedimientos, la eutanasia de todos los animales utilizando una sobredosis de ketamina y xilazina seguido por dislocación cervical. </li><li> Realizar una incisión en la línea media abdominal de aproximadamente 3 cm en la piel y cortar cuidadosamente el peritoneo. </li><li> Coloque el ratón en el lado de la mascotaplato ri, exteriorizar suavemente sus intestinos y se extendió cuidadosamente el mesenterio con 2 bastoncillos de algodón para llevar un recipiente adecuado a la superficie de la placa de Petri. Seque bien con un limpiador delicado. NOTA: Para limitar el movimiento de los vasos mesentéricos, papaverina puede usarse para inhibir la peristalsis intestinal. </li><li> Remojar la cola del ratón en agua caliente para dilatar los vasos e inyectar 30 l de Rodamina 6G (0,3%) en la vena de la cola del ratón con una jeringa de 29 G para etiquetar los leucocitos y las plaquetas. </li><li> Coloque la placa de Petri bajo un microscopio invertido y se centran en la arteriola elegido utilizando el canal de campo claro. </li><li> Remojar una banda de papel de filtro con 6% (w / v) de cloruro de hierro (III) y aplicar el papel de filtro en la arteriola con dos pinzas; la primera en celebrar el papel de filtro, el segundo para presionar suavemente sobre el área de interés. Observar la formación de trombos en el primero 10 seg después de la deposición del papel de filtro. NOTA: Es muy commpor lo tanto, a dañar la microvasculatura rodeado y la precisión de la deposición del papel de filtro y la presión suavemente es importante limitar este problema. </li><li> Observar la formación de trombos por microscopía de fluorescencia (canal TRITC: excitación pico de 557 nm, pico de emisión 576 nm), a través del papel de filtro. Por lo tanto, observar los leucocitos y las plaquetas circulantes que han tenido hasta la Rodamina 6G y su agregación en el trombo es fácil de identificar. </li><li> Toma el papel de filtro después de 1 min de exposición al cloruro de hierro (III) y continuará supervisando la formación del trombo. Lave el recipiente con PBS. </li><li> Observar y registrar la formación dinámica del trombo se destaca con el etiquetado de las plaquetas y leucocitos con la Rodamina 6G. Capturar las imágenes y medir el tamaño del trombo. Las imágenes que aquí se presenta se obtuvieron con un microscopio intravital invertida, aunque un objetivo 4X, en el canal de fluorescencia TRITC. </li><li> Fespués de todos los procedimientos, la eutanasia del animal utilizando una sobredosis de ketamina y xilazina seguido por dislocación cervical. </li></ol> 3. carótida trombo Arteria Formación evaluados por Sangre Medición de Velocidad de Flujo <ol><li> Pesar un 10-12 semanas de edad C57BL / 6 de ratón y en consecuencia anestesiar con una mezcla de ketamina (100 mg / kg) y xilazina (10 mg / kg), aunque la inyección intraperitoneal. Aplique un ungüento veterinario en los ojos para evitar la sequedad mientras que bajo anestesia. </li><li> Fijar el ratón bajo un microscopio quirúrgico con cinta adhesiva en las piernas, en una almohadilla eléctrica ajustada a 37 ° C. </li><li> Hacer una pequeña almohada de un limpiador y la cinta bajo la cabeza del ratón para elevar la cabeza ligeramente. Utilice un bucle de hilo con pinzas para sacar el hocico hacia abajo (utilizar dientes superiores). Esto expondrá la región de la arteria carótida para un fácil acceso. </li><li> Realizar una pequeña 5 mm de profundidad de la incisión de la piel directamente debajo de la mandíbula, hasta el esternón. </li><li> Diseccionar la fascia y aislar un fragmento de cualquiera de la arteria carótida común izquierda o hacia la derecha por encima de la bifurcación. </li><li> Introducir cuidadosamente pinzas en-entre la arteria y el nervio para separarlos. No molestar el nervio corriendo cerca de la arteria y evitar tocar demasiado de la arteria carótida como fuere causa daños a la embarcación. Aislar una sección de un menos 5 mm de la arteria. </li><li> Seque el área de la arteria correctamente con limpiaparabrisas para evitar que cualquier líquido interfiere con el FeCl3. </li><li> Ponga la pequeña pieza de plástico blanco debajo de la parte aislada de la carótida común por lo que el FeCl3 no sumergirse en los tejidos circundantes. Para este propósito, utilizar un segundo fórceps para llevar la pieza a la primera uno luego lentamente deslice el papel de plástico debajo de la arteria. </li><li> Remojar un trozo de papel de filtro con 4% (w / v) o 6% (w / v) de cloruro férrico y lo coloca todo alrededor de la arteria. </li><li> Después de 3 minutos de exposición, despegar el papel de filtro, enjuagar con PBS y seque el área wlimpiaparabrisas i. </li><li> Coloque la sonda de flujo Doppler en todo el buque en la zona lesionada y empezar a grabar los cambios en el flujo. En la carótida común saludable de ratones adultos, el flujo es por lo general alrededor de 1 ml / min. ¡Precaución! el contacto de la sonda con cloruro férrico dañará la sonda por lo que cualquier contacto debe evitarse. Los datos presentados en este documento se obtuvieron con un metro Transonic System Inc. Flow, TS420 módulo perivascular equipado con una sonda de flujo Doppler Nano 0.5 PBS. NOTA: La concentración de cloruro férrico puede modificar la cinética de la formación de trombos resultantes en diferentes momentos de oclusión. Por lo tanto, la exposición a un 6% (w / v) de cloruro férrico da una oclusión más rápida que la exposición al 4% (w / v) de cloruro férrico. </li><li> Después de todos los procedimientos, la eutanasia de todos los animales mediante una sobredosis de ketamina y xilazina seguido por dislocación cervical y limpiar cuidadosamente la sonda Doppler. </li></ol>

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</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

El modelo de trombosis inducida por cloruro férrico es una excelente herramienta de investigación. Como se muestra en este estudio, es extremadamente fácil de implementar y cuando se utiliza en combinación con microscopía intravital o medidor de flujo Doppler, que proporciona un buen seguimiento en tiempo real de la formación de trombos. Ajuste del tiempo de exposición y la concentración de FeCl 3, sino que también ofrece la posibilidad de producir ya sea trombos no oclusivos o oclusivos. <p class="jove_c...

El estudio de los mecanismos implicados en el desarrollo de la trombosis y la evaluación de la eficacia de los fármacos anti-trombóticos requiere bien establecido modelos animales experimentales. Modelos animales grandes fueron los primeros en ser utilizados ya que proporcionan grandes vasos más similar a los humanos que los roedores 1. Sin embargo, el alto costo, las grandes instalaciones requeridas y la dificultad para manipularlos genéticamente son los principales inconvenientes para su uso y animales grandes ahora se limitan a estudios preclínicos finales una vez que las pruebas preliminares sobre roedores han dado resultados concluyentes 2. Con amplia disponibilidad de cepas transgénicas y knockout y su pequeño tamaño que minimiza la cantidad de fármacos antitrombóticos requeridos para las pruebas in vivo, los ratones se utilizan principalmente para la investigación trombosis. Por lo tanto, se han desarrollado varios modelos de trastornos trombóticos en ratones 3. Muchos modelos de trombosis establecidos interrumpen las intimuna capa de la pared del vaso, seguido por la exposición de la matriz extracelular sub endotelial para el flujo de sangre induciendo la formación de coágulos de sangre 4. El trombos puede resultar de la exposición del colágeno que desencadena la activación de las plaquetas y / o de la exposición de factor tisular que activa la cascada de coagulación 5. Se emplean a continuación varias técnicas para lograr la lesión inicial buque. Pierangeli et al. Desarrolló un modelo de rotura mecánica con una herramienta de microcirugía en la vena femoral 6. Kikushi et al. Describe un modelo que consiste en la administración de un compuesto reactivo foto (Rosa de Bengala) que se acumula en la bicapa lipídica de las células endoteliales, seguido de la excitación específica de la pared del vaso de interés con luz verde (540 nm) 7. La lesión también puede ser inducida por un corto de alta intensidad del láser de impulsos de iluminación 8. Otra técnica estableció en primer lugar en la arteria carótida de las ratasconsiste en la aplicación tópica de cloruro férrico (FeCl3) 9. En este caso, los resultados de denudación recipiente de radicales libres generados por FeCl 3 que hace que la peroxidación de lípidos y la destrucción de las células endoteliales 10. La lesión induce la expresión de varias moléculas de adhesión de activación adhesión y agregación plaquetaria, así como el reclutamiento de leucocitos. Se ha demostrado que los leucocitos, especialmente neutrófilos, juegan un papel crucial en la activación de la cascada de la coagulación de la sangre que lleva a la trombosis 11. Este método es muy adecuado para reproducir la cascada de la coagulación; los investigadores deben tener en cuenta que, en este modelo de ratón, la trombosis es típicamente inducida en vasos sanos mientras que la trombosis en los seres humanos ocurre principalmente en por ejemplo enfermo. vasos ateroscleróticos. Como este modelo es muy simple de implementar y también es eficaz en ratones, ahora es el modo de trombosis utilizado principalmentel para pequeños animales en estudios in vivo. Además, esta técnica ofrece la posibilidad de inducir la formación de trombos en una variedad de vasos. Vasos de destino pueden ser arterias o venas de gran diámetro (carótida, femoral, la vena cava) o pequeño diámetro (mesenterio, cremaster) 12-14. Más recientemente, también se utiliza en la arteria cerebral media proximal para desarrollar un modelo de accidente cerebrovascular 15. La formación de trombosis puede ser observada directamente por microscopía intravital después del marcaje fluorescente de plaquetas y leucocitos o monitoreada midiendo la disminución del flujo sanguíneo con una sonda de temperatura o una sonda Doppler 12,16,17. Varios parámetros tales como el tiempo de oclusión, el tiempo de la formación de trombos o tamaño del trombo pueden entonces ser investigadas. Las diferencias fisiológicas entre los vasos investigaron resultado en variaciones significativas en los trombos obtenido. Por lo tanto, los investigadores suelen seleccionar el vaso diana de acuerdo con los parámetros que desean Measure y / o el ajuste que quieren investigar la enfermedad. Típicamente, el modelo de la arteria carótida es más relevante para la investigación en aterotrombosis relacionada con el infarto de miocardio o un accidente cerebrovascular mientras que los estudios sobre la vena cava son más relevantes para la investigación de la trombosis venosa profunda. La accesibilidad de los diferentes vasos también determina el método utilizado para medir el crecimiento de trombos. Por ejemplo, los vasos mesentéricos son de fácil acceso haciendo que este modelo muy adecuado para la observación microscópica intravital y el estudio de la dinámica de la formación de trombos. La arteria carótida es menos accesible pero más grande que permitan a las mediciones de flujo de sangre y proporcionan un excelente modelo para estudiar la trombosis oclusiva. El modelo de trombosis inducida por cloruro férrico ha proporcionado enormes progresos en la comprensión de esta patología. Se ha utilizado en muchos estudios centrados en el papel del factor von Willebrand en la formación de trombosis 18,19. Combinado con modificaciones genéticastécnicas ficación, que ha permitido la identificación de muchos genes específicos implicados en los trastornos trombóticos. Lamrani et al. por ejemplo han demostrado que un knock-in del gen JAK2 V617F se asocia con la formación de un coágulo de aceleración de la inestable 20. Zhang et al. Han investigado la implicación fisiológica del receptor plaquetario P2Y12 y demostrado que los ratones transgénicos que sobreexpresan específicamente este receptor en plaquetas solamente, muestran una formación de trombos más rápido y estable en la arteria mesentérica lesionado con FeCl 3 21. El papel crucial de activador de plasminógeno de tipo tisular (tPA) y del activador del plasminógeno de tipo uroquinasa (uPA) en el proceso de degradación de la fibrina también ha sido investigado en este método 22. Además, este modelo también ofrece una manera sencilla y exacta de probar las capacidades de muchos fármacos fibrinolíticos novedosas in vivo. Por ejemplo, Wang et al., Han utilizado este modelo para THcorreo de validación preclínica de una novela del activador del plasminógeno recombinante dirigido contra las plaquetas activadas 23. Este método también permitió la validación de proteínas terapéuticas aisladas a partir de la saliva de garrapatas, murciélagos vampiro, y mosquitos o a partir del veneno de serpientes con la identificación específica del objetivo 24-27. Estos ejemplos demuestran la versatilidad del modelo de cloruro férrico. En este artículo, nos centramos en dos métodos y estudiamos cloruro férrico trombosis inducida en dos tipo de buque diferentes; buque mesentérica y la arteria carótida.

<table><tbody><tr><td>Papel de cromatografía Whatman</td><td>GE Healthcare 3030917</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cloruro de hierro (III) 40% (p/v)</td><td>VWR</td><td>24212.298</td><td></td></tr><tr><td>Rhodamine 6G</td><td>Sigma</td><td>R4127</td><td></td></tr><tr><td>Microscopio invertido&nbsp;</td><td>Cámara digital Olympus</td><td>IX81</td><td></td></tr> en <tr><td>blanco y negro&nbsp;</td><td>Olympus</td><td>XM10</td><td></td></tr><tr><td>Caudalímetro Doppler</td><td>Transonic</td><td>TS420</td><td></td></tr><tr><td>Sonda de flujo Nano-doppler</td><td>Transonic</td><td>0.5 PBS</td><td></td></tr><tr><td>Ketamina</td><td>Hospira&nbsp;</td><td>0409-2051-05</td><td></td></tr><tr><td>Xilacina (Rampun)</td><td>Bayer</td><td>75313&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Placa de Petri</td><td>Sarstedt</td><td>82.1472</td><td></td></tr><tr><td>Jeringa de insulina (29 G)</td><td>BD Ultrafino</td><td>326103</td><td></td></tr><tr><td>Aplicadores con punta de algodón</td><td>BSN medical</td><td>211827A</td> Suturas de dyseda <td></td></tr><tr><td>Dynek</td><td>Pty Ltd</td><td>CS30100</td><td></td></tr><tr><td>solución salina tampón de fosfato de Dulbecco (PBS)</td><td>Gibco life technologies</td><td>21600-069</td><td></td></tr><tr><td>Almohadilla térmica</td><td>Kirchner</td><td>T60</td><td></td></tr></tbody></table>

trombosis modelo de ratón de la arteria carótida y mesenterio embarcaciones inducida por cloruro férrico-

Ferric Chloride-induced Thrombosis Mouse Model on Carotid Artery and Mesentery Vessel

La trombosis grave y sus consecuencias isquémicas, como el infarto de miocardio, la embolia pulmonar y el accidente cerebrovascular, son importantes problemas de salud en todo el mundo. La lesión por cloruro férrico es ahora una técnica bien establecida para inducir de forma rápida y precisa la formación de trombos en venas o arterias expuestas de pequeño y gran diámetro. Este modelo ha desempeñado un papel clave en el estudio de la fisiopatología de la trombosis, en el descubrimiento y validación de nuevos fármacos antitrombóticos y en la comprensión del mecanismo de acción de estos nuevos agentes. En este trabajo se presenta la implementación de esta técnica en un vaso mesentérico y una arteria carótida en ratones. El método describe cómo marcar los leucocitos circulantes y las plaquetas con un tinte fluorescente y observar, mediante microscopía intravital en el mesenterio expuesto, su acumulación en la pared del vaso lesionado, lo que conduce a la formación de un trombo. En la arteria carótida, la oclusión causada por la formación de coágulos se mide mediante el monitoreo del flujo sanguíneo con una sonda Doppler.

El fluorescente observación microscopía intravital del mesenterio revelará la acumulación de Rodamina 6G etiquetado plaquetas y leucocitos lo largo de la pared de los vasos lesionados por FeCl3. La formación progresiva de un trombo parcial se supervisa en un recipiente mesenterio 200 micras (Figura 1). Un trombo aparece lentamente y es claramente identificable después de la primera minutos de exposición a FeCl 3 (Figura 1, t = 60 seg). 40 seg después de la eliminac...

En este trabajo se describe el modelo de trombosis inducida por FeCl3 en ratones. Se presenta un método para monitorizar el crecimiento de trombos mediante la observación de microscopía intravital en un vaso mesentérico y mediante la medición del flujo sanguíneo en la arteria carótida.

Trombosis modelo de ratón de la arteria carótida y Mesenterio Embarcaciones inducida por cloruro férrico-

Severe thrombosis and its ischemic consequences such as myocardial infarction, pulmonary embolism and stroke are major worldwide health issues. The ferric ...

El objetivo general de este procedimiento es monitorear la formación de un trombo inducido en un vaso sanguíneo expuesto de un ratón. Esto se logra primero exponiendo el vaso de interés. A continuación, se coloca un pequeño trozo de papel de filtro empapado con cloruro férrico sobre el vaso para inducir el trombo en el vaso mesentérico.La agregación de las células formadoras de trombos se monitorea mediante microscopía en vial sobre la arteria carótida. Los cambios en el flujo sanguíneo inducidos por el trombo se miden con un medidor de flujo Doppler. El uso de cloruro para inducir una trombosis en la arteria CED de los peces rojos fue establecido por primera vez en 1990 por el profesor Coz y colegas.Desde entonces, se ha adaptado a ratones y se ha utilizado para estudiar muchos vasos diferentes. Este método es ahora el modelo de trombosis más utilizado en nuestro campo de investigación, y ha ayudado a responder preguntas clave, como la del factor de vulnerabilidad de la pared y la aplicación del receptor plaquetario P dos Y 12 en la trombodisformación. Antes de comenzar el procedimiento, corte tiras de papel filtro de uno por dos milímetros y un pequeño trozo de plástico blanco de tres por cinco milímetros proveniente del envoltorio de una jeringa.A continuación, tras confirmar la ausencia de respuesta al pellizco de la cola, aplique pomada oftálmica en los ojos de cada animal. Luego, para inducir un trombo arterial mesentérico, coloque al ratón en un pequeño recipiente de Petri sobre una placa calefactora a 37 grados Celsius y abra el abdomen mediante una incisión de tres centímetros, seguida de una disección cuidadosa del peritoneo. Coloque al ratón de lado en el recipiente de Petri y exteriorice suavemente los intestinos.Luego, utilizando dos bastoncillos de algodón, extienda cuidadosamente el mesenterio para llevar un vaso adecuado a la superficie del recipiente y seque con cuidado el tejido con un hisopo delicado. A continuación, dilate los vasos de la cola mediante un remojo en agua tibia, seguido de una inyección intravenosa de 30 microlitros de Domine seis G recién preparado para marcar los leucocitos y plaquetas circulantes. Luego, coloque el recipiente de Petri bajo un microscopio invertido y utilice el canal de campo claro para aflojar la arteria seleccionada.Ahora, empape una tira de papel de filtro con cloruro férrico al 6% recién preparado y use un par de pinzas para tomar el papel y presionarlo cuidadosamente sobre la arteria de interés únicamente. Observe la formación del trombo mediante microscopía de fluorescencia invertida intravital a través del papel de filtro. Dentro de los primeros 10 segundos del depósito, la agregación de los leucocitos y plaquetas marcados con domine seis G en circulación permitirá una fácil identificación del trombo.Después de un minuto de exposición, retire el papel de filtro. Luego, mientras monitorea la formación del trombo, lave el vaso sanguíneo con PBS y registre la formación dinámica del trombo resaltada por las células sanguíneas marcadas. También se pueden capturar imágenes fijas del trombo para facilitar la medición de la oclusión vascular a lo largo del tiempo.Para evaluar la formación de trombos en la arteria carótida, fije las patas de un ratón anestesiado con cinta adhesiva sobre una almohadilla térmica de 37 grados Celsius colocada debajo de un microscopio quirúrgico. Luego, coloque una pequeña almohada hecha de un limpiador debajo de la cabeza del animal y utilice un lazo de hilo con pinzas para tirar del hocico hacia abajo por los dientes superiores. Cuando se exponga la región de la arteria carótida, realice una pequeña incisión en la piel directamente por debajo de la mandíbula hasta el esternón.A continuación, diseccione la fascia y aísle un fragmento de la arteria carótida común izquierda o derecha por encima de la bifurcación. Luego, introduzca cuidadosamente unas pinzas entre la arteria y el nervio para separarlos, teniendo cuidado de no dañar el nervio. A continuación, use un par de pinzas para tomar el pequeño trozo de plástico blanco y otro par para deslizarlo lentamente debajo del segmento aislado del vaso, de modo que el cloruro de hierro no impregne los tejidos circundantes.Seque cuidadosamente la arteria con toallitas. A continuación, empape una tira de papel de filtro en cloruro férrico al 4% o 6% y coloque la tira alrededor de la arteria. Después de tres minutos, retire el papel de filtro, enjuague el vaso con PBS y seque el tejido con toallitas.Luego coloque una sonda de flujo Doppler alrededor del vaso en el área lesionada y registre los cambios en el flujo. Aquí, la formación progresiva de un trombo parcial se monitoreó en un vaso mesentérico de 200 micrómetros mediante microscopía de fluorescencia intravital. En este experimento, el trombo se identificó claramente después del primer minuto de exposición al cloruro férrico.40 segundos después de la retirada del papel de filtro, la trombosis progresó rápidamente, observándose finalmente un trombo completo en la pared de toda la sección del vaso. Como demuestran estos datos, un flujo sanguíneo constante general de aproximadamente 1,1 mililitros por minuto es típico en una arteria carótida no lesionada. Después de tres minutos de exposición al 4% de cloruro férrico.En este experimento, se obtuvo un trombo oclusivo con un tiempo de oclusión de 13 minutos y 30 segundos, con una exposición al 6% de cloruro férrico. El tiempo de oclusión disminuyó en cuatro minutos completos.La observación mediante microscopía intravital proporciona una forma sencilla y precisa de evaluar in vivo la capacidad lítica de muchos fármacos novedosos mediante la visualización de la degradación del trombo. El monitoreo del flujo en la arteria cate ha sido una herramienta útil para estudiar la eficacia de fármacos antitrombóticos y para evaluar si estos pueden prevenir u ocluir la oclusión.

ferric-chloride-induced-thrombosis-mouse-model-on-carotid-artery

Research

Investigación

JoVE Journal

Medicine

Medicina

Se presenta un procedimiento de refinado del cloruro férrico (FeCl3) modelos de trombosis inducidas en la carótida y la arteria mesentérica, así como la vena, que se caracteriza de manera eficiente mediante microscopía intravital para monitorear el tiempo de oclusiva formación de trombos.

Férricos modelos murinos trombosis inducida por cloruro

Aquí, presentamos las modificaciones necesarias a un bien caracterizado y utilizado animal inducida por el cloruro férrico (FECLAS3) arteria carótida lesiones modelo pequeño para uso en un modelo de lesión vascular animales grandes. El modelo resultante puede ser utilizado para la evaluación de ensayo preclínico de las intervenciones farmacológicas y mecánicas profilácticas y trombolíticos.

Trombosis de la arteria carótida canina cloruro férrico-inducida: Un modelo Animal grande de lesión Vascular

El presente protocolo describe cómo utilizar una lesión mediada por FeCl3 para inducir trombosis arterial, y cómo recoger y preparar muestras de lesión arterial en diversas etapas de trombosis para el análisis de microscopía electrónica.

Trombosis arterial inducida por cloruro férrico y recolección de muestras para análisis de microscopía electrónica 3D

Este estudio presenta un protocolo para establecer un modelo de rata reproducible y mínimamente invasivo de trombosis del seno sagital superior inducida por cloruro férrico, utilizando un método de sutura de seda en combinación con imágenes láser de contraste moteado y ultrasonidos de alta resolución para su evaluación.

Establecimiento de una trombosis sagital superior modificada inducida por cloruro férrico

Esto describe una cirugía de ligadura de la carótida parcial, lo que provoca trastornos condiciones de flujo y posterior desarrollo de la aterosclerosis (en dos semanas) con intraplaca neovascularización (en cuatro semanas) en el ratón de la arteria carótida común. También describe un nuevo método de aislamiento de ARN de la carótida íntima, proporcionando ARN de alta pureza endoteliales.

Un modelo de Disturbed inducida por el flujo de Aterosclerosis en la arteria carótida del ratón por la ligadura parcial y un método sencillo para el aislamiento de ARN del endotelio carótida

El modelo de ratón completa estasis de la vena cava inferior trombosis cava produce cantidades cuantificables de los tejidos de la pared venosa y trombosis. Que ha demostrado ser útil para evaluar las interacciones entre la pared de la vena y el trombo oclusivo y en la evaluación de la progresión de la aguda a la inflamación crónica.

Ratón completo modelo de estasis Inferior Vena Cava trombosis

Se demuestra en el video de un método para producir una oclusión de arteria cerebral media en ratones adultos con un monofilamento intraluminal. También mostrará cómo evaluar la extensión del infarto cerebral por el cloruro de 2,3,5-trifenil tetrazolio (TTC) tinción.

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Se describe un modelo de implantación de un stent en la arteria carótida del ratón. En comparación con otros métodos similares, este procedimiento es muy rápido, simple y accesible, que ofrece la posibilidad de estudiar de una manera conveniente la reacción de la pared vascular a diferentes stents liberadores de fármacos y los mecanismos moleculares de la restenosis.

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Se describe un método para crear un modelo fiable de la hipertensión venosa cerebral en el ratón adulto. Este modelo ha sido ampliamente descrito y probado en la rata. Este nuevo homólogo en los ratones se abre la posibilidad de utilizar animales modificados genéticos y por lo tanto amplía las aplicaciones del modelo.

Adultos Mouse hipertensión venosa: Modelo: arteria carótida común a la vena yugular externa anastomosis.

Este método fue desarrollado con el objetivo de ofrecer una solución de fármaco constante a través de la arteria carótida, para evaluar la farmacocinética de nuevos fármacos en modelos de ratón.

Infusiones de la arteria carótida para farmacocinéticas y farmacodinámicas Análisis de taxanos en ratones

Aprende a inducir trombosis en ratones usando cloruro férrico y microscopía intravital. Este método permite monitorear la formación de trombos en arteria carótida y vasos mesentéricos para evaluar fármacos antitrombóticos.

Trombosis modelo de ratón de la arteria carótida y Mesenterio Embarcaciones inducida por cloruro férrico-

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