Completa y parcial obstrucción aórtica para el tratamiento del choque hemorrágico en cerdos

Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo de la atención traumatológica, incluidas las estrategias para tratar la hemorragia no compresible del torso. La principal ventaja de esta técnica es que puede ayudar a probar estrategias de reanimación endovascular relevantes en un modelo de animal grande clínicamente realista con una fisiología que imita a la de los humanos. Las implicaciones de esta técnica se extienden hacia el tratamiento del shock hemorrágico, que es una de las principales causas de muerte prevenible en traumatismos.

Por lo general, las personas nuevas en este método tendrán dificultades, ya que requiere experiencia quirúrgica y conocimiento de la fisiología de los cuidados críticos. Después de confirmar un nivel apropiado de sedación con un pinzamiento de la extremidad trasera, use un laringoscopio convencional equipado con una hoja Miller iluminada de 12 pulgadas para pasar la punta de la hoja a través de la orofaringe del cerdo anestesiado. Teniendo cuidado de no dañar la mucosa oral o los dientes, avance lentamente la punta de la hoja hasta la epiglotis, levantando la epiglotis con la hoja y continuando más allá de la entrada laríngea hasta obtener una visión clara de la laringe.

Coloque un tubo endotraqueal francés de 6,5 o 7 con un estilete entre las cuerdas vocales, en la tráquea, e infle el manguito del balón con 10 a 15 centímetros cúbicos de aire para evitar fugas alrededor del manguito o aspiración del contenido gástrico. Luego, conecte el tubo endotraqueal al ventilador mecánico a través de un filtro de respiración y asegure el tubo alrededor del maxilar con cinta de algodón. Para una canulación de arterias y venas femorales, frote los sitios quirúrgicos con un volumen copioso de povidona yodada durante cinco minutos y coloque las toallas quirúrgicas estériles alrededor de los sitios quirúrgicos para preservar la esterilidad de los campos quirúrgicos.

Con un bisturí equipado con una cuchilla quirúrgica estéril número 10, identifique el pliegue inguinal y haga una incisión vertical de ocho centímetros en la ingle derecha, cuatro centímetros por encima y cuatro centímetros por debajo del pliegue inguinal derecho. Diseccione a través del tejido subcutáneo y coloque dos retractores Weitlaner en la incisión. Con pinzas de ángulo recto Mixter y una electrocauterización, diseccione a través de los tejidos conectivos y el músculo hasta que el haz neurovascular esté claramente expuesto, y diseccione cuidadosamente la arteria, teniendo cuidado de preservar el nervio lateral.

Use una aguja introductora en ángulo de calibre 20 para perforar la arteria y avance un alambre guía de punta redonda de 0.35 pulgadas a través del lumen de la aguja en ángulo. Cuando el alambre guía esté en su lugar, retire la aguja sobre el alambre guía, manteniendo una ligera presión sobre la arteriotomía para evitar sangrado, e inserte una vaina de inserción de 14 French sobre el alambre guía. A continuación, canular la arteria y la vena femoral izquierda como se acaba de demostrar.

Para la canulación de la arteria carótida y la vena yugular externa, use un bisturí de hoja número 10 para hacer una incisión vertical de seis centímetros aproximadamente dos centímetros lateral a la línea media en el lado izquierdo del cuello. Utilice la electrocauterización para diseccionar el tejido subcutáneo hasta que el músculo esternocleidomastoideo quede expuesto, y diseccionar a lo largo del borde lateral del músculo para exponer la vena yugular externa izquierda. A continuación, canular el vaso con un catéter francés de 8 como se acaba de demostrar.

Para la exposición de la arteria carótida común izquierda, se disecciona el borde medial del músculo esternocleidomastoideo, hasta observar el triángulo carotídeo, que contiene la arteria carótida, el nervio vago y la vena yugular interna. Cánula de la arteria carótida como se ha demostrado anteriormente, con un catéter de 5 French. Para la disección contralateral, se aísle la vena yugular externa derecha y la arteria carótida común derecha, como se ha demostrado para sus contrapartes laterales.

A continuación, utilice una vaina introductora de 9 French para canular la vena yugular externa derecha y coloque una sonda de flujo de la arteria carótida de cuatro milímetros alrededor de la arteria carótida común derecha. A continuación, inserte el catéter de la arteria pulmonar a través de la vaina de inserción de French 9 de 15 a 18 centímetros en la vena yugular externa derecha. Una vez que el catéter esté en su lugar, infle el globo con no más de 1,5 centímetros cúbicos de aire.

Avance el catéter y observe el monitor para evaluar la transición de la presión de la aurícula derecha al ventrículo derecho, a la arteria pulmonar, a la presión en cuña de la arteria pulmonar. A continuación, desinfle el balón y confirme que un rastro de la arteria pulmonar vuelve al monitor. Para la colocación del tubo de cistostomía, use un bisturí de hoja número 10 para hacer una incisión en la línea media del abdomen inferior de cinco centímetros y extracorpórea la vejiga urinaria.

de electrocauterización, haga una pequeña abertura en la vejiga y succione la orina, y use una sutura de polipropileno 4-0 para realizar un cierre temporal de la vejiga. Coloque un catéter Foley francés de 18 pulgadas dentro de la luz de la vejiga y use una jeringa de 10 centímetros cúbicos para inflar el balón. Luego, ate la sutura para asegurar el catéter dentro de la luz de la vejiga.

Para la inserción de un catéter con balón aórtico, inserte un alambre guía rígido Amplatz de 0,035 pulgadas y 260 centímetros a través de la vaina de inserción de 14 French. Confirmar su localización en la aorta supracelíaca mediante ecografía. A continuación, inserte el catéter de oclusión con balón sobre la guía en la aorta supracelíaca.

Después de calcular el volumen total de sangre, use una bomba automatizada para sangrar el 35% del volumen total de sangre durante 20 minutos, en bolsas de recolección de sangre estándar para su almacenamiento a cuatro grados centígrados. Cuando se haya almacenado toda la sangre, inflar el catéter de oclusión aórtica con balón con 9 a 12 centímetros cúbicos de aire, o hasta que no se note una disminución adicional de la presión arterial media distal después de un inflado adicional con balón. Después de 40 minutos de oclusión, utilice la bomba automática para reanimar al animal, con un volumen de sangre total igual al 20% del volumen total de sangre a través del catéter de la vena femoral izquierda durante 20 minutos.

Luego, desinfle el globo gradualmente durante cinco minutos. Durante la fase de inflado con balón, los animales del grupo de oclusión completa experimentan una presión arterial media proximal más alta, en comparación con los animales del grupo de oclusión parcial, mientras que la presión arterial media distal media media durante el inflado con balón es mayor en el grupo de oclusión parcial en comparación con el grupo de oclusión completa, lo que refleja el flujo aórtico distal parcial. Después de la reanimación, la presión arterial media proximal y distal aumenta en ambos grupos, y vuelve al valor basal después del desinflado del balón durante el resto de la fase de cuidados críticos.

Todos los animales experimentan taquicardia refleja inmediatamente después de la hemorragia que experimenta un aumento incremental durante la fase de inflado del balón en ambos grupos. Después de la hemorragia, la presión venosa central disminuye en ambos grupos, experimentando un aumento después del desinflado del balón y volviendo al valor basal después de la reanimación. De manera similar, el gasto cardíaco disminuye después de la hemorragia, aumenta durante el inflado del balón y vuelve al valor basal después del desinflado del balón en la reanimación en ambos grupos.

El flujo carotídeo disminuye en ambos grupos inmediatamente después de la hemorragia, y el grupo de oclusión completa muestra una mayor tasa de flujo carotídeo en comparación con el grupo de oclusión parcial. Después de la reanimación y el desinflado del balón, la tasa de flujo carotídeo se recupera hacia el valor basal en ambos grupos, pero a un nivel más bajo en el grupo de oclusión completa. Después de ver este video, debería tener una comprensión mucho mejor de cómo usar modelos animales grandes para probar la oclusión aórtica mediante estrategias endovasculares.

Además, al igual que cualquier otra operación quirúrgica, hay que tener cuidado en el manejo de los instrumentos para poder hacerlo con seguridad.