Name: Evaluación en tiempo real de la microperfusión de la médula espinal en un modelo porcino de isquemia/reperfusión (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-12-10T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 27 s
Description: Aprende a evaluar la microcirculación medular en tiempo real mediante sondas Laser-Doppler en un modelo porcino de isquemia/reperfusión. Esta técnica mínimamente invasiva permite monitorear la microperfusión junto con la presión de líquido cefalorraquídeo y macrohemodinámica.

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Los autores desean agradecer a Lena Brix, V.M.D, Instituto de Investigación Animal, Escuela de Medicina de Hannover, así como a la Sra. Jutta Dammann, Centro de Investigación de Cuidado de Animales, Centro Médico Universitario de Hamburgo-Eppendorf, Alemania, por proporcionar cuidado animal pre y perioperatorio y su asistencia técnica en el manejo de animales. Los autores desean además agradecer al Dr. Daniel Manzoni, Departamento de Cirugía Vascular, Hôpital Kirchberg, Luxemburgo, por su asistencia técnica.

Constantin J.C. Trepte ha recibido un premio honorífico por las conferencias de Maquet. Todos los demás autores declaran no tener conflictos de intereses. Este estudio fue apoyado por la Sociedad Europea de Anestesiología Young Investigator Start-Up Grant 2018.

La LME inducida por la isquemia de la médula espinal es una complicación importante de la reparación aórtica con un tremendo impacto en el resultado del paciente1,2,3,4,10,11,12. Las terapias dirigidas a la microcirculación para prevenir y tratar la LME son las más prometedoras. El protocolo...

La lesión de la médula espinal inducida por isquemia/reperfusión (LME) es una de las complicaciones más devastadoras de la reparación aórtica asociada con un resultado reducido1,2,3,4. Las opciones actuales de prevención y tratamiento para la LME incluyen la optimización de los parámetros macrohemodinámicos, así como la normalización de la presión del líquido cefalorraquídeo (CSP) para mejorar la presión de perfusión de la médula espinal2,5,6,7,8,9. A pesar de la implementación de estas maniobras, la incidencia de LME todavía oscila entre el 2% y el 31% dependiendo de la complejidad de la reparación aórtica10,11,12.
Recientemente, la microcirculación ha ganado mayor atención13,14. La microcirculación es el área de captación de oxígeno celular e intercambio metabólico y, por lo tanto, desempeña un papel crítico en la función de los órganos y la integridad celular13. El deterioro del flujo sanguíneo microcirculatorio es un determinante importante de la isquemia tisular asociada con el aumento de la mortalidad15,16,17,18,19. El deterioro de la microcirculación de la médula espinal se asocia con una función neurológica reducida y el resultado20,21,22,23. Por lo tanto, la optimización de la microperfusión para el tratamiento de la LME es un enfoque muy prometedor. La persistencia de perturbaciones microcirculatorias, a pesar de la optimización macrocirculatoria, se ha descrito26,27,28,29. Esta pérdida de coherencia hemodinámica ocurre con frecuencia en diversas condiciones, incluyendo isquemia/reperfusión, enfatizando la necesidad de una evaluación microcirculatoria directa y terapias dirigidas a la microcirculación26,27,30.
Hasta ahora, solo unos pocos estudios han utilizado sondas láser-Doppler para la evaluación en tiempo real del comportamiento microcirculatorio de la médula espinal20,31. Los estudios existentes han utilizado a menudo técnicas de inyección de microesferas, que están limitadas por el uso intermitente y el análisis post mortem32,33. El número de mediciones diferentes utilizando la técnica de inyección de microesferas está limitado por la disponibilidad de microesferas con diferentes longitudes de onda. Además, a diferencia de las técnicas Láser-Doppler, la evaluación en tiempo real de la microperfusión no es posible, ya que el procesamiento y análisis de tejidos post mortem es necesario para este método. Aquí, presentamos un protocolo experimental para la evaluación en tiempo real de la microcirculación de la médula espinal en un modelo animal grande porcino de isquemia / reperfusión.
Este estudio fue parte de un gran proyecto en animales que combinó un estudio aleatorizado que comparó la influencia de los cristaloides frente a los coloides en la microcirculación en la isquemia / reperfusión, así como un estudio aleatorizado exploratorio sobre los efectos de los líquidos frente a los vasopresores en la microperfusión de la médula espinal. La calibración de la sonda de flujo de 2 puntos, así como la calibración del catéter de punta de presión, se han descrito previamente34. Además del protocolo reportado, se utilizaron microesferas fluorescentes para la medición de la microperfusión de la médula espinal, como se describió anteriormente, utilizando 12 muestras de tejido de la médula espinal para cada animal, con muestras 1-6 que representan la médula espinal superior y 7-12 que representan la médula espinal inferior35,36. La inyección de microesfera se realizó para cada paso de medición después de la finalización de los registros Láser-Doppler y la evaluación macrohemodinámica. La evaluación histopatológica se realizó utilizando el Kleinman-Score como se describió anteriormente37.

<table><tbody><tr><td>Caudalímetro CardioMed</td><td>Medistim AS, Oslo, Noruega</td><td>CM4000</td><td>Caudalímetro para sonda de flujo Arteria femoral</td></tr><tr><td>Sonda de flujo CardioMed, 5mm</td><td>Medistim AS, Oslo, Noruega</td><td>PS100051</td><td>Sonda de flujo Sonda de convivencia de la arteria femoral</td></tr><tr><td>,&nbsp;</td><td>Transonic Systems Inc., Ithaca, NY, EE. UU</td><td>. MA16PAU</td><td>Sonda de flujo Aorta</td></tr><tr><td>16 mm liners</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>DIVA Sevoflurane Vapor</td><td>Dr&auml; ger Medical, L&uuml; beck, Alemania</td><td></td><td>Línea</td></tr> directa de vapor <tr><td>Nivel 1 Calentador de fluidos</td><td>Smiths Medical Germany GmbH, Grasbrunn, Alemania</td><td>HL-90-DE-230</td><td>Calentador de fluidos</td></tr><tr><td>Infinity Delta</td><td>Dr&auml; ger Medical, L&uuml; beck, Alemania</td><td></td><td>Hardware de monitoreo básico</td></tr><tr><td>Infinity Hemo</td><td>Dr&auml; ger Medical, L&uuml; beck, Alemania</td><td></td><td>Hardware básico de monitorización de la presión y termodilución pulmonar LabChart</td></tr><tr><td>Pro</td><td>ADInstruments Ltd., Oxford, Reino Unido</td><td>v8.1.16</td><td>Láser Doppler sincrónico, presión arterial, ECG y flujo sanguíneo Software de adquisición</td></tr><tr><td>LiquoGuard 7</td><td>M&ouml; ller Medical GmbH, Fulda, Alemania</td><td></td><td>Sistema de drenaje de líquido cefalorraquídeo</td></tr><tr><td>Catéter de presión Millar Micro-Tip (5F, Simple, Curvo, 120cm, PU/WD)</td><td>ADInstruments Ltd., Oxford, Reino Unido</td><td>SPR-350</td><td>Catéter de punta de presión Páramo de aorta</td></tr><tr><td>VMS LDF páramo</td><td>Instrumentos, Devon, Reino Unido</td><td></td><td>Designado Láser-Doppler Hardware</td></tr> moor Software de <tr><td>investigación VMS</td><td>moor Instruments, Devon, Reino Unido</td><td></td><td>Módulo de flujo perivascular designado por software láser-Doppler</td></tr><tr><td></td><td>Transonic Systems Inc., Ithaca, NY, EE. UU</td>. <td>TS 420</td><td>Módulo de flujo para aorta con sonda de flujo</td></tr><tr><td>PiCCO 2, versión científica</td><td>Getinge AB, G&ouml; teborg, Suecia</td><td>v. 6.0</td><td>Monitorización de la presión arterial y transcardiopulmonar Hardware y software</td></tr><tr><td>PiCCO 5 Fr. 20cm</td><td>Getinge AB, G&ouml; teborg, Suecia</td><td></td><td>Línea arterial con punta de termistor&nbsp;</td></tr><tr><td>PowerLab</td><td>ADInstruments Ltd., Oxford, Reino Unido</td><td>PL 3516</td><td>Láser Doppler sincrónico, presión arterial, ECG y flujo sanguíneo Hardware de</td></tr> adquisición <tr><td>QuadBridgeAmp</td><td>ADInstruments Ltd., Oxford, Reino Unido</td><td>FE 224</td><td>Amplificador de puente de cuatro canales para láser Doppler y presión arterial invasiva</td></tr><tr><td>Silverline Silverline</td><td>Spiegelberg, Hamburgo, Alemania</td><td>ELD33.010.02</td><td>Drenaje</td></tr> <tr><td>de líquido cefalorraquídeoPaquete de software estadístico SPSS&nbsp;</td><td>IBM SPSS Statistics Inc., Armonk, Nueva York, EE. UU</td><td>. v. 27</td><td>Software estadístico</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Twinwarm Warming System</td><td>Moeck & Moeck GmbH, Hamburgo, Alemania</td><td>12TW921DE</td><td>Sistema de calentamiento</td></tr><tr><td>Universal II Manta térmica</td><td>Moeck & Moeck GmbH, Hamburgo, Alemania</td><td>906</td><td>Manta calefactora</td></tr><tr><td>VP 3 Sonda, 8 mm de longitud (fabricada individualmente)</td><td>moor Instruments, Devon, Reino Unido</td><td></td><td>Sonda Laser-Doppler</td></tr><tr><td>Zeus</td><td>Dr&auml; ger Medical, L&uuml; beck, Alemania</td><td></td><td>Máquina de anestesia</td></tr></tbody></table>

evaluación en tiempo real de la microperfusión de la médula espinal en un modelo porcino de isquemia/reperfusión

Real-Time Assessment of Spinal Cord Microperfusion in a Porcine Model of Ischemia/Reperfusion

La lesión de la médula espinal es una complicación devastadora de la reparación aórtica. A pesar de los avances para la prevención y el tratamiento de la lesión de la médula espinal, su incidencia sigue siendo considerablemente alta y, por lo tanto, influye en el resultado del paciente. La microcirculación juega un papel clave en la perfusión tisular y el suministro de oxígeno y a menudo se disocia de la macrohemodinámica. Por lo tanto, la evaluación directa de la microcirculación de la médula espinal es esencial para el desarrollo de terapias dirigidas a la microcirculación y la evaluación de los enfoques existentes con respecto a la microcirculación de la médula espinal. Sin embargo, la mayoría de los métodos no proporcionan una evaluación en tiempo real de la microcirculación de la médula espinal. El objetivo de este estudio es describir un protocolo estandarizado para la evaluación microcirculatoria de la médula espinal en tiempo real utilizando sondas de aguja Doppler con láser insertadas directamente en la médula espinal. Se utilizó un modelo porcino de isquemia/reperfusión para inducir el deterioro de la microcirculación de la médula espinal. Además, se utilizó una técnica de inyección de microesfera fluorescente. Inicialmente, los animales fueron anestesiados y ventilados mecánicamente. A partir de entonces, se realizó la inserción de la sonda de aguja Doppler con láser, seguida de la colocación del drenaje del líquido cefalorraquídeo. Se realizó una esternotomía mediana para la exposición de la aorta descendente para realizar el pinzamiento cruzado aórtico. La isquemia/reperfusión fue inducida por pinzamiento cruzado aórtico supracelíaco durante un total de 48 min, seguido de reperfusión y estabilización hemodinámica. El flujo láser-Doppler se realizó en paralelo con la evaluación macrohemodinámica. Además, se utilizó el drenaje automatizado del líquido cefalorraquídeo para mantener una presión cefalorraquídeo estable. Después de completar el protocolo, se sacrificaron animales y se recolectó la médula espinal para el análisis histopatológico y de microesferas. El protocolo revela la viabilidad de las mediciones de microperfusión de la médula espinal utilizando sondas Láser-Doppler y muestra una marcada disminución durante la isquemia, así como la recuperación después de la reperfusión. Los resultados mostraron un comportamiento comparable al de la evaluación de la microesfera fluorescente. En conclusión, este nuevo protocolo podría proporcionar un modelo animal grande útil para futuros estudios que utilicen la evaluación de microperfusión de la médula espinal en tiempo real en condiciones de isquemia / reperfusión.

Los seis animales sobrevivieron hasta la finalización del protocolo. El peso animal fue de 48,2 ± 2,9 kg; cinco animales eran machos y un animal era hembra. La inserción de la sonda de la aguja de la médula espinal, así como la medición del flujo de la médula espinal fue factible en todos los animales.
Ejemplos de registros microcirculatorios de la médula espinal en tiempo real en combinación con registros microcirculatorios cer...

La microcirculación de la médula espinal juega un papel fundamental en la lesión de la médula espinal. La mayoría de los métodos no permiten la evaluación en tiempo real de la microcirculación de la médula espinal, que es esencial para el desarrollo de terapias dirigidas a la microcirculación. Aquí, proponemos un protocolo utilizando sondas Laser-Doppler-Flow Needle en un modelo animal grande de isquemia / reperfusión.

Evaluación en tiempo real de la microperfusión de la médula espinal en un modelo porcino de isquemia/reperfusión

Spinal cord injury is a devastating complication of aortic repair. Despite developments for the prevention and treatment of spinal cord injury, its ...

Nuestro protocolo proporciona un método reproducible para la evaluación en tiempo real de la microcirculación de la médula espinal. Ofrece la capacidad de evaluar enfoques terapéuticos sobre la microcirculación de la médula espinal y las condiciones de isquemia-reperfusión. Nuestra técnica es fácil de aprender, mínimamente invasiva y nos ofrece la oportunidad de evaluar la microperfusión de la médula espinal en paralelo con la presión del líquido cefalorraquídeo y la macrohemodinámica en un modelo animal grande.La demostración del procedimiento estará a cargo del Dr. Christoph Behem y el Dr. Till Friedheim, especialistas en anestesiología y miembros científicos de nuestro laboratorio. Los demostradores adicionales serán Michael Graessler, residente en anestesiología. Después de confirmar un nivel adecuado de sedación en un cerdo de tres meses de edad y 40 kilogramos, coloque al animal en la posición lateral derecha y flexione la espalda del animal para ampliar el espacio entre las vértebras.Exponer quirúrgicamente el área paravertebral para la preparación de las apófisis espinosas y los arcos vertebrales y colocar un catéter vascular de vena periférica de calibre 14 paramediano en la médula espinal a nivel de la vértebra torácica 13 a 14 o vértebra lumbar uno a dos entre dos arcos vertebrales. Reemplace la aguja con la sonda de aguja láser Doppler y conecte la sonda al hardware y software designados para probar la calidad de la señal. Debe observarse una señal estable con una pulsatilidad moderada.Fije cuidadosamente la sonda con suturas y utilice el paneo para evitar que la sonda se disloque o se retuerza. Para la colocación percutánea de drenaje de líquido cefalorraquídeo para medir y controlar la presión cefalorraquídea, identifique el nivel de 4 a 5 o L5 a 6. Perfore la piel y el espacio subcutáneo con la aguja introductora y retire la aguja de incrustación.Coloque una jeringa llena de solución salina en la aguja introductora y use presión constante para introducir cuidadosamente la aguja en el espacio epidural. Una vez que se sienta una pérdida de resistencia, lo que indica una colocación epidural correcta, inserte la aguja de incrustación y avance la aguja de dos a tres milímetros en el espacio intratecal. Introducir el drenaje hasta una profundidad de 20 centímetros.Conecte un adaptador de bloqueo Luer y verifique la posición mediante una aspiración cuidadosa del licor. Luego, fije cuidadosamente el drenaje con suturas y conecte el drenaje al sistema de drenaje del líquido cefalorraquídeo. A continuación, exponga el cráneo detrás de la oreja izquierda y use un accesorio de perforación de seis milímetros para realizar cuidadosamente una trepanación del cráneo con orificio de perforación.Introduzca una segunda sonda láser Doppler directamente en el cerebro y use suturas para fijar cuidadosamente la sonda en su lugar. Conecte la sonda al hardware y al software para probar la calidad de la señal. Debe observarse una señal estable con pulsatilidad moderada.Desconecte todas las sondas y, con la ayuda de cuatro o cinco asistentes, coloque cuidadosamente al animal en posición supina con almohadillas, teniendo cuidado de no perturbar las sondas. Vuelva a conectar las sondas y compruebe la calidad de la señal. A continuación, iniciar el drenaje continuo del líquido cefalorraquídeo con una presión objetivo de 10 milímetros de mercurio y un volumen de drenaje de 20 mililitros por hora.Después de realizar una mini laparotomía, aumente la fracción de oxígeno inspirado a una y administre 0,1 miligramos por kilogramo de pancuronio por vía intravenosa. Diseccione suavemente el esternón del tejido circundante y luego realice la colocación de compresas retroesternales para evitar lesiones. Después de detener la ventilación, divida el hueso con una sierra oscilante y reinicie la ventilación con una fracción reducida de oxígeno inspirado a 0,3.Use la electrocauterización para reducir el sangrado y selle el esternón con cera ósea. Movilizar cuidadosamente la base del pulmón izquierdo y dividir la parte lateral izquierda del diafragma para facilitar la exposición quirúrgica. Retraiga suavemente el pulmón izquierdo para exponer la aorta descendente proximal al tronco celíaco y dividir el tejido circundante.Coloque un Overholt alrededor de la aorta descendente para asegurar una exposición adecuada y conecte una sonda de flujo alrededor de la aorta torácica descendente, luego confirme la presencia de una señal de buena calidad y conecte un asa vascular alrededor de la aorta descendente distal a la sonda de flujo para marcar el área de pinzamiento cruzado aórtico. Después de obtener una medición de referencia, administre pasos consecutivos de carga de volumen de siete mililitros por kilogramo de coloide de almidón hidroxietílico durante un período de cinco minutos por paso. Cinco minutos de equilibrio entre cada paso hasta que el aumento del gasto cardíaco sea inferior al 15%Después de completar la optimización hemodinámica, repita las mediciones.A continuación, coloque una pinza aórtica en el área previamente marcada de la aorta supracelíaca para inducir la reperfusión por isquemia en intervalos de uno, dos, cinco, 10 y 30 minutos durante un total de 48 minutos. Continúe con el pinzamiento cruzado aórtico después de cada intervalo. Después de un máximo de cinco minutos o después de la normalización del flujo de la arteria femoral, realizar una oclusión manual de la vena cava inferior para evitar aumentos de la presión arterial superiores a 100 mililitros de presión arterial media de mercurio y repetir las mediciones al final del intervalo de pinzamiento de 30 minutos antes de la reperfusión.Una vez obtenidas las mediciones, abrir gradualmente la pinza para asegurar la estabilidad hemodinámica y administrar siete mililitros por kilogramo de coloides de hidroxietilalmidón e inyecciones adicionales en bolo de 10 a 20 microgramos de norepinefrina y/o epinefrina para la estabilización. Ajuste la frecuencia respiratoria para asegurar la normocapnia según sea necesario. Después de una hora, repita las mediciones.Después de obtener las mediciones posteriores a la reperfusión, repita la carga de volumen como se muestra y obtenga otro conjunto de mediciones. 4-1/2 horas después de la inducción de la reperfusión por isquemia, obtenga el conjunto final de mediciones. Aquí, se pueden observar ejemplos de registros microcirculatorios de la médula espinal en tiempo real en combinación con registros microcirculatorios y macrohemodinámicos cerebrales durante el pinzamiento cruzado aórtico para la inducción de isquemia, así como durante el despinzamiento y la reperfusión.La interrupción del flujo aórtico descendente fue seguida por una marcada disminución del flujo de la médula espinal, mientras que la presión en la aorta ascendente aumentó. La reperfusión produjo efectos opuestos. El análisis estadístico de los parámetros macro y microcirculatorios indica una marcada reducción del flujo de la médula espinal durante la isquemia.Por el contrario, el flujo cerebral aumentó marcadamente durante la isquemia, como lo indican las medias marginales estimadas y sus intervalos de confianza. Esto se acompañó de un aumento de la frecuencia cardíaca, la presión arterial y la resistencia vascular sistémica, mientras que el gasto cardíaco y el volumen sistólico disminuyeron. El análisis de microesferas fluorescentes reveló una marcada disminución del flujo sanguíneo microcirculatorio de la médula espinal en la médula espinal inferior, mientras que no se observaron cambios significativos en la médula espinal superior.La reperfusión produjo efectos opuestos. Aunque hubo una disminución adicional en el gasto cardíaco, el volumen sistólico y la presión arterial al final del protocolo, el flujo de la médula espinal y el flujo sanguíneo microcirculatorio de la médula espinal se mantuvieron estables. La inserción de la sonda de aguja de la médula espinal requiere un conocimiento profundo de la anatomía.Además, se necesitan habilidades técnicas muy altas en el manejo de la sonda. Se deben evitar múltiples intentos para prevenir lesiones en la médula espinal, que podrían afectar la metodología.

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Este video muestra la colocación de una sonda de aguja láser Doppler en la médula espinal de un modelo porcino. Esto ayuda en la cuantificación continua del suministro de sangre a la médula espinal, una evaluación importante en la lesión de la médula espinal.

Inserción de sonda de aguja Doppler láser: una técnica para la cuantificación en tiempo real del flujo sanguíneo dentro de la médula espinal en un modelo porcino

Este video describe la técnica de colocación intratecal de un drenaje lumbar en un modelo isquémico porcino, que ayuda a drenar el líquido cefalorraquídeo a un sistema de drenaje. El sistema de drenaje controla la presión del líquido cefalorraquídeo y se drena el líquido para mantener una presión constante del líquido cefalorraquídeo.

Colocación intratecal de drenaje lumbar: una técnica para extraer líquido cefalorraquídeo de la columna lumbar en modelo porcino

La falta de comprensión mecanicista de la médula espinal lesión por isquemia-reperfusión ha obstaculizado otros aditamentos para prevenir la paraplejia después de las operaciones de aorta de alto riesgo. Por lo tanto, el desarrollo de modelos animales es imperativo. Este manuscrito demuestra menor parálisis de las extremidades reproducible después de la oclusión de la aorta torácica en un modelo murino.

Paraplejia reproducible por la oclusión de la aorta torácica en un modelo murino de la médula espinal por isquemia-reperfusión

Aquí presentamos una combinación de perfusión Doppler laser imaging (LDPI) y Láser Doppler perfusión monitorización (LDPM) para medir espinal cordón flujos de sangre local y saturación de oxígeno (SO2), así como un procedimiento estandarizado para la introducción de la médula espinal trauma en rata.

Usando a láser Doppler Imaging y seguimiento para analizar la microcirculación de la médula espinal en ratas

Aquí demostramos un protocolo para estandarizar los procedimientos de muestreo de un modelo establecido de porcino de infarto agudo de miocardio con el fin de aumentar su valor traslacional en la comprensión de la fisiopatología de la isquemia/reperfusión miocárdica y para probar a nuevos fármacos candidatos.

Mejora de un modelo de infarto de miocardio porcino pecho cerrado por normalización del tejido y procedimientos de muestreo de sangre

Este protocolo permitirá a los lectores a establecer con éxito un modelo porcino de isquemia intestinal segmentaria y posteriormente aislar células madre intestinales para el estudio de la reparación epitelial después de lesión de la cultura.

Aislamiento de células madre intestinales y de la cultura en un modelo porcino de isquemia Intestinal pequeño segmentaria

El shock hemorrágico es una complicación grave en pacientes gravemente heridos, lo que conduce a un suboferta de oxígeno potencialmente mortal. Presentamos un método estandarizado para inducir shock hemorrágico a través de la extracción de sangre en cerdos que se guía por la hemodinámica y la oxigenación cerebral microcirculatoria.

Inducción de choque hemorrágico estandarizada guiada por oximetría cerebral y monitoreo hemodinámico extendido en cerdos

El objetivo general del estudio actual es presentar las técnicas de inducción del infarto de miocardio (MI) y la insuficiencia cardíaca de infarto post-miocárdico (post-MI HF) en minipigs Göttingen de pecho cerrado y la caracterización del modelo HF post-MI en minipigs de Gotinga en comparación con los cerdos Landrace.

Insuficiencia cardíaca de infarto post-miocárdico en el modelo de oclusión coronaria/reperfusión coronaria de pecho cerrado en Göttingen Minipigs y Cerdos Landrace

Aquí se presenta un protocolo para medir la oxigenación renal en la médula y la presión parcial de oxígeno en orina no invasiva en un modelo porcino de shock hemorrágico para establecer la presión parcial de oxígeno en orina como un indicador temprano de lesión renal aguda (LRA) y un nuevo criterio de valoración de reanimación.

Monitorización no invasiva e invasiva de la hipoxia renal en un modelo porcino de shock hemorrágico

Se utilizó un sistema láser de imagen con contraste de motas para monitorizar los cambios en el flujo sanguíneo microvascular renal durante la isquemia-reperfusión unilateral tras la resección del riñón derecho en ratones.

Perfusión microvascular monitorizada mediante imagen láser de contraste de speckles durante la lesión por isquemia renal-reperfusión en ratones

Aprende a evaluar la microcirculación medular en tiempo real mediante sondas Laser-Doppler en un modelo porcino de isquemia/reperfusión. Esta técnica mínimamente invasiva permite monitorear la microperfusión junto con la presión de líquido cefalorraquídeo y macrohemodinámica.

Evaluación en tiempo real de la microperfusión de la médula espinal en un modelo porcino de isquemia/reperfusión

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