Name: Inmunoprecipitación de ADN metilado (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-01-02T00:00:00.000+00:00
Duration: 21 min 24 s
Description: Aprende el protocolo MeDIP para aislar ADN metilado de forma imparcial usando anticuerpos anti-5mC. Esta técnica de epigenética permite estudiar patrones de metilación en cáncer y desarrollo.

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Queremos agradecer a los miembros de la Brown y laboratorios de Lam por su participación en la crítica de este video y en el artículo. Este trabajo fue financiado por los fondos de los Institutos Canadienses de Investigación en Salud y la Michael Smith Fundación para la Investigación de la Salud.

Extracción de ADN y preparación de muestras ADN de una variedad de diferentes muestras (células cultivadas, fresco congelado, así como tejidos en parafina fijado en formol e incrustados) puede ser utilizado para MeDIP. Es importante usar el ADN altamente purificado sin proteínas asociadas, como las histonas. También es importante para eliminar el ARN tanto como sea posible de la muestra, ya que puede interferir con la cuantificación del ADN y la unión del anticuerpo. La cantidad de ADN utilizado para MeDIP puede variar de 200 ng a 1 mg dependiendo de la cantidad de ADN disponible. Para demostrar este protocolo, 1 ug de ADN se utiliza. El protocolo siguiente se proporciona una alta calidad ADN de doble cadena a partir de células cultivadas. Otros protocolos deben ser empleados para la extracción de ADN de otros tipos de muestras. <ol><li> Añadir 400 l de tampón de digestión a un pellet de células en un tubo de 1,7 ml Eppendorf. </li><li> Añadir 100 mg de proteinasa K en el tubo y se incuban durante la noche a 50 ° C. </li><li> Añadir 500 l de fenol pH 7 y mezclar suavemente pero a fondo por inversión. </li><li> Giran a 13 000 g durante 10 minutos a temperatura ambiente. </li><li> Quitar acuosa (superior) de la fracción a un nuevo tubo. </li><li> Repita los pasos 3 a 5 una vez. </li><li> Añadir 500 l 1:01 pH fenol / cloroformo 7 y mezclar suavemente pero a fondo por inversión. </li><li> Giran a 13 000 g durante 10 minutos a temperatura ambiente. </li><li> Quitar acuosa (superior) de la fracción a un nuevo tubo. </li><li> Agregar 40 g de RNasa A y se incuba 1 hora a 37 ° C. </li><li> Añadir 500 l de fenol pH 7 y mezclar suavemente pero a fondo por inversión. </li><li> Giran a 13 000 g durante 10 minutos a temperatura ambiente. </li><li> Quitar acuosa (superior) de la fracción a un nuevo tubo. </li><li> Repita los pasos 11 a 13 una vez. </li><li> Añadir 500 l 1:01 pH fenol / cloroformo 7 y mezclar suavemente pero a fondo por inversión. </li><li> Giran a 13 000 g durante 10 minutos a temperatura ambiente. </li><li> Quitar acuosa (superior) de la fracción a un nuevo tubo. </li><li> Añadir un volumen 1/10th acetato de sodio 3 M (40 ml) y mezclar bien. </li><li> Agregar 2 volúmenes (900 l) de etanol al 100%, mezcle bien y coloque a -20 ° C durante 20 minutos. </li><li> Giran a 13 000 g durante 20 minutos a 4 ° C. </li><li> Eliminar el etanol, dar un pulso, y retirar el etanol residual. </li><li> Añadir 500 l de etanol 70% frío para lavar. Giran a 13 000 g durante 20 minutos a 4 ° C. </li><li> Eliminar 70% de etanol, dar un pulso, y retirar el etanol residual con pipeta. </li><li> Deje secar al aire el precipitado con la tapa abierta durante 10 minutos a temperatura ambiente para eliminar todos los rastros de etanol residual. </li><li> Resuspender el ADN en 50 l de dH2O esterilizado la noche a 4 ° C. </li><li> Cuantificar el ADN utilizando un espectrofotómetro NanoDrop. Un 260: Una relación de 280 de 1.8 es ideal. </li><li> Determinar la calidad del ADN y el rango de tamaño en un gel de agarosa con escalera de 100 pb. Tan poco como 10 ng de DNA genómico se puede ejecutar en un 1,7% en gel de agarosa seguida de tinción con un colorante que es muy sensible a pequeñas cantidades de ADN como SYBR Gold. </li><li> En un tubo de silicona por ejemplo, preparar a 1 ug de ADN en un volumen total de 50 ml con el resto del volumen se esterilizan con dH 2 O. </li></ol> ADN sonicación Sonicación de ADN y el protocolo MeDIP debe realizarse en tubos de siliconzied para impedir la unión no específica de las proteínas de las paredes del tubo. Tiempos óptimos sonicación de las muestras de ADN se basan en el grado de fragmentación del ADN de la muestra determinado a partir de electroforesis en gel (paso 27). Por ejemplo, el ADN extraído de células de cultivo debe ser de muy alto peso molecular, y, posteriormente, se requieren más tratamiento con ultrasonidos que el ADN extraído de muestras de archivo que a menudo son parcialmente degradadas. Si las muestras son de peso molecular alto y uniforme, es razonable en este momento para continuar con el tratamiento con ultrasonidos como se describe en este protocolo sin verificar cada muestra individual. Si las muestras están fragmentadas como con muestras de archivo, será necesario adaptar el procedimiento de ultrasonidos probablemente por la disminución de tiempos de sonicación para obtener 300-100bp fragmentos. Si usted espera para procesar las muestras que están parcialmente degradadas, la optimización de los parámetros de ultrasonidos se puede realizar en una muestra representativa de las de interés. Con base en el grado de fragmentación del ADN observada a partir de electroforesis en gel (paso 27), el experimentador puede predeterminar el tiempo de sonicación óptimo para la muestra. Aquí se describe un método para obtener fragmentos de ADN 300-1000 pb por ultrasonidos con un dispositivo automatizado ultrasonidos (Bioruptor de Diagenode, UCD-200 TM) usando ADN de alto peso molecular. <ol><li> De agua en Biorupter debe ser a 4 ° C. </li><li> Sonicar durante 7 minutos de la configuración automática (30 segundos en 30 segundos de máxima potencia). </li><li> Quitar 800 ng (40 l) del producto sonicado y el lugar en el tubo de centrífuga siliconado 1,7 ml de la inmunoprecipitación (IP) de reacción. </li><li> Ponga a un lado restantes 200 ng (10 l) para servir como entrada (IN) de referencia de ADN (se almacenan a 4 ° C). </li&gt; </ol> IMMUNOPRECIPITATON de ADN metilado <ol><li> Desnaturalizar el ADN que será utilizado para la reacción IP (800 ng) a 95 ° C durante 10 minutos en un baño de agua. </li><li> Enfriar inmediatamente en hielo. Deje que se enfríe por completo de ADN (aproximadamente 5 minutos en hielo) antes de proceder con el siguiente paso. </li><li> Añadir 5 mg del anticuerpo monoclonal. </li><li> Añadir tampón IP (usado a temperatura ambiente a lo largo de este protocolo) a un volumen final de 500 microlitros. </li><li> Incubar durante 2 horas a 4 ° C en la rotación de soporte del tubo. </li><li> Justo antes del paso 5 se completa, preparar Dynabeads por el lavado (Pasos 6-11). En primer lugar, suspender las cuentas de fondo en el vial con el vortex. </li><li> Transferencia de 30 l (~ 2 x 10 7) de Dynabeads resuspendido por reacción, más 1, en ​​un nuevo tubo siliconado (por ejemplo, si hace ocho reacciones, eliminar las perlas suficiente para 9, es decir, 270 l). </li><li> Coloque el tubo en la rejilla magnética durante 2 minutos a temperatura ambiente. </li><li> Pipeta el sobrenadante. Al eliminar el sobrenadante, evite tocar las bolas contra la pared interior (donde las cuentas de atraer al imán) con la punta de la pipeta. </li><li> Retire el tubo del imán, y volver a suspender las bolas en un exceso de volumen de buffer de propiedad intelectual (750 l-1000 l). Coloque el tubo de vuelta en la rejilla magnética durante 2 minutos a temperatura ambiente. </li><li> Repetir el lavado una vez más, y luego volver a suspender las cuentas de lavado en buffer de propiedad intelectual en el volumen original retiró en el paso 7. </li><li> Añadir 30 l de Dynabeads lavado para cada reacción de IP </li><li> Incubar en un soporte de tubo giratorio durante 2 horas a 4 ° C. </li><li> Después de incubación, se coloca el tubo en la rejilla magnética durante 2 minutos a temperatura ambiente. </li><li> Pipeta el sobrenadante. Evite tocar la pared interior del tubo (donde las cuentas de atraer al imán) con la punta de la pipeta. Añadir 500 l de buffer de propiedad intelectual. Mezcle el contenido del tubo y vuelva a colocarlo en el estante magnético durante 2 minutos. Repetir el lavado con 500 ul buffer de propiedad intelectual de una vez. </li><li> Después de retirar el sobrenadante del último lavado, suspender las cuentas en 400 l de tampón de digestión. </li><li> El tratamiento de la reacción con 100 mg de proteinasa K y se incuba durante la noche a 50 ° C. </li></ol> Purificación de ADN immunoprecipitated <ol><li> Añadir 500 l 1:01 pH fenol / cloroformo y agitar bien 7. </li><li> Giran a 13 000 g durante 10 minutos a temperatura ambiente. </li><li> Quitar acuosa (superior) de la fracción a un nuevo tubo. </li><li> Repita los pasos 1 a 3 si la interfase entre las capas acuosa y orgánica aparece nublado. </li><li> Añada 1 / 10 del volumen 3 ª M de acetato de sodio (40 ml) y agitar. </li><li> Añadir 1 l de glucógeno (20 mg / l) y agitar. </li><li> Añadir dos volúmenes (1000 l) de etanol al 100%, vórtice, y el lugar de -20 º C durante 20 minutos. </li><li> Giran a 13 000 g durante 20 minutos a 4 ° C. </li><li> Eliminar el etanol, dar un pulso, y retirar el etanol residual. </li><li> Añadir 500 l de etanol 70% frío para lavar. Agitar brevemente, y giran a 13 000 g durante 20 minutos a 4 ° C. </li><li> Eliminar 70% de etanol, dar un pulso, y retirar el etanol residual con pipeta. </li><li> Deje secar al aire el precipitado con la tapa abierta durante 10 minutos a temperatura ambiente para eliminar todos los rastros de etanol residual. </li><li> Resuspender el ADN precipitado en 10 l esterilizados dH 2 0. </li></ol> VALIDACIÓN POR PCR <ol><li> Es posible que la prueba para asegurarse de que su procedimiento MeDIP está trabajando mediante la realización del protocolo MeDIP utilizando el ADN humano normal (hombre o mujer), y, posteriormente, ensayar una región conocida por ser enriquecido por metilación. </li><li> Eliminar 30% del producto MeDIP de tubo de PCR, y otro 30% del producto MeDIP a otro tubo de PCR. </li><li> Puesto de 10 ng de ADN en un tubo de PCR, y de 10 ng de ADN en otro tubo de PCR. Ahora debería tener cuatro por separado las reacciones de PCR de configurar. </li><li> Realizar PCR utilizando primers CTRL H19 y como se indica en la Tabla 1. </li><li> Preparar dos mezclas maestras (una para cada conjunto de cebadores) para las reacciones de PCR con 12,5 l volumen total como se indica en la Tabla 2. </li><li> Thermocycle el PCR con las condiciones establecidas en la Tabla 3. </li><li> Carrera de 5 l de los productos de PCR en un gel de agarosa al 2% para la visualización. </li><li> Los resultados esperados para MeDIP éxito se muestran en la Tabla 4. </li></ol> Tablas Tabla 1: H19 y CTRL cebadores para la validación del PCR. <table border="1"><tbody><tr><td> Primer Set </td><td> Primer avance </td><td> Primer inversa </td><td> El tamaño del producto esperado </td></tr><tr><td> H19 </td><td> H19_F 5&#39;-cgagtgtgcgtgagtgtgag </td><td> H19_R 5&#39;-ggcgtaatggaatgcttgaa </td><td> 174 pb </td></tr><tr><td> CTRL (control) </td><td> CTRL_F5&#39;-gagagcattagggcagacaaa </td><td> CTRL_R 5&#39;-gttcctcagacagccacattt </td><td> 139 pb </td></tr></tbody></table> Tabla 2. Las mezclas de las reacciones de PCR. <table border="1"><tbody><tr><td></td><td> H19 Mix (por Rxn) </td><td> CTRL Mix (por Rxn) </td></tr><tr><td&gt; ddH2O </td><td> 6.875 </td><td> 6.875 </td></tr><tr><td> Buffer 10X </td><td> 1.25 </td><td> 1.25 </td></tr><tr><td> Mezcla de dNTP (10 mM cada uno) </td><td> 0.25 </td><td> 0.25 </td></tr><tr><td> MgCl2 (50 mM) </td><td> 0.25 </td><td> 0.25 </td></tr><tr><td> Cebadores (H19_F / R o CTRL_F / R) (10 mM cada F / R) </td><td> 0.625 </td><td> 0.625 </td></tr><tr><td> Platinum Taq </td><td> 0.25 </td><td> 0.25 </td></tr></tbody></table> Tabla 3. PCR thermocyling condiciones. <table border="1"><tbody><tr><td></td><td> 95 ° C </td><td> 05:00 </td></tr><tr><td rowspan="3"> 40X </td><td> 95 ° C </td><td> Doce y media </td></tr><tr><td> 56 ° C </td><td> Doce y media </td></tr><tr><td> 72 ° C </td><td> Doce y quince </td></tr></tbody></table> Tabla 4. Espera resultados de la PCR para MeDIP éxito. <table border="1"><tbody><tr><td></td><td colspan="2" align="center"> Plantilla de ADN </td></tr><tr><td> Primer utilizados </td><td> EN </td><td> IP </td></tr><tr><td> H19 </td><td> Positiva </td><td> Positiva </td></tr><tr><td> CTRL </td><td> Positiva </td><td> Negativo </td></tr></tbody></table>

<ol><li>Beck, S., Rakyan, V. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+methylome%3A+approaches+for+global+DNA+methylation+profiling%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Genet%22%5BJournal%5D)">The methylome: approaches for global DNA methylation profiling.</a> Trends Genet. 24, 231-237 (2008).</li>
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<li>Jones, P. A., Baylin, S. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+fundamental+role+of+epigenetic+events+in+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Genet%22%5BJournal%5D)">The fundamental role of epigenetic events in cancer.</a> Nat Rev Genet. 3, 415-428 (2002).</li>
<li>Fraga, M. F., Esteller, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DNA+methylation%3A+a+profile+of+methods+and+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechniques%22%5BJournal%5D)">DNA methylation: a profile of methods and applications.</a> Biotechniques. 33, 632-649 (2002).</li>
</ol>

Hay una creciente conciencia de los juegos de rol significativo en la enfermedad de la metilación del ADN, por lo tanto el desarrollo de ensayos para medir esta modificación se están convirtiendo cada vez más importante 3, 12, 13. La técnica MeDIP es una herramienta susceptible de cribado, tanto en el de todo el genoma y el lugar específico de nivel 6, 7. Esta técnica proporciona una vista rápida de los niveles de metilación del ADN usando una cantidad limitada de partida de ADN y permite realizar ...

<table><tbody><tr><td>Sonicador Biorupter</td><td>Herramienta</td><td>Diagenode</td><td>UCD-200 TM</td><td></td></tr><tr><td>Tubos microcentrífugos SafeSeal de 1,7 ml</td><td>Otro</td><td>Sorenson BioScience</td><td>11510</td><td></td></tr><tr><td>Espectrofotómetro ND 3300</td><td>Herramienta</td><td>NanoDrop</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Anticuerpo primario: Anti-5&amp;rsquo;-metilcitosina ratón mAb</td><td>Reactivo</td><td>Calbiochem</td><td>162 33 D3</td><td></td></tr><tr><td>Anticuerpo secundario: Dynabeads M-280 Oveja anti-ratón IgG</td><td>Reactivo</td><td>Invitrogen</td><td>112-01D</td><td></td></tr><tr><td>Soporte magnético para tubos</td><td>Herramienta</td><td>Invitrogen</td><td>CS15000</td><td></td></tr><tr><td>Mini LabRoller</td><td>Herramienta</td><td>Labnet International</td><td>H5500</td><td></td></tr><tr><td>Tampón IP</td><td></td><td></td><td></td><td>10 mM NaPO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt; pH 7,0, 140 mM NaCl, 0,05 % Triton X-100. Almacenado a temperatura ambiente</td></tr><tr><td>Tampón de digestión</td><td></td><td></td><td></td><td>10 mM Tris pH 8,0, 100 mM EDTA, 0,5 % SDS, 50 mM NaCl</td></tr></tbody></table>

inmunoprecipitación de adn metilado

Methylated DNA Immunoprecipitation

La identificación de los patrones de metilación del ADN es un procedimiento común en el estudio de la epigenética, como la metilación se sabe que tiene efectos significativos en la expresión génica, y está involucrado con el desarrollo normal, así como la enfermedad<sup&gt; 4.1</sup&gt;. Por lo tanto, la capacidad de discriminar entre el ADN metilado y no metilado de ADN es esencial para la generación de perfiles de metilación de estos estudios. Inmunoprecipitación de ADN metilado (MeDIP) es una técnica eficiente para la extracción de ADN metilado de una muestra de interés<sup&gt; 5.7</sup&gt;. Una muestra de tan poco como 200 ng de ADN es suficiente para que el anticuerpo, o inmunoprecipitación (IP), la reacción. ADN se somete a sonicación en fragmentos que van desde 300-1000 pb, y se divide en immunoprecipitated (IP) y entrada (IN) porciones. ADN IP posteriormente el calor desnaturalizado y luego incubadas con anticuerpos anti-5&#39;mC, permitiendo que el anticuerpo monoclonal de unirse al ADN metilado. Después de esto, partículas magnéticas que contienen un anticuerpo secundario con afinidad por el anticuerpo primario se agregan y se incuban. Estos anticuerpos de cuentas vinculadas se une al anticuerpo monoclonal que se usa en el primer paso. ADN unido al complejo anticuerpo (ADN metilado) se separa del resto del ADN mediante el uso de un imán para tirar de los complejos de la solución. Varios lavados con buffer de propiedad intelectual se ejecutan después de quitar la consolidados, no ADN metilado. El ADN metilado / anticuerpo se digiere con proteinasa K para digerir los anticuerpos dejando sólo el ADN metilado intacto. El ADN se purifica enriquecido con fenol: cloroformo extracción para eliminar el material de proteína y luego se precipitó y se resuspendió en agua para su uso posterior. Técnicas de PCR se puede utilizar para validar la eficacia del procedimiento MeDIP mediante el análisis de los productos de amplificación de IP y en el ADN de las regiones conocidas de la falta y se sabe que contiene secuencias de metilación. El ADN purificado metilado se puede utilizar para el locus-específica (PCR) o todo el genoma (microarrays y la secuenciación) estudios de metilación, y es particularmente útil cuando se aplica en conjunción con las herramientas de investigación tales como perfiles de expresión genética y la hibridación amplia comparativo del genoma ( CGH)<sup&gt; 8</sup&gt;. La investigación adicional en la metilación del ADN se llevará al descubrimiento de nuevas dianas epigenéticos, que a su vez, puede ser útil en el desarrollo de nuevas herramientas de investigación terapéutica o pronóstico de enfermedades como el cáncer que se caracterizan por ADN aberrantemente metilados<sup&gt; 2, 4, 9-11</sup&gt;.

Este video muestra el protocolo para la inmunoprecipitación de ADN metilado (MeDIP). MeDIP es un procedimiento de dos días que selectivamente extrae fragmentos de ADN metilado de una muestra de ADN genómico utilizando anticuerpos con especificidad para el 5-metilcitosina (anti-5 MC).

Inmunoprecipitación de ADN metilado

La identificación de los patrones de metilación del ADN es un procedimiento común en el estudio de la epigenética, ya que se sabe que la metilación tiene efectos significativos sobre...

Este video demuestra un protocolo para la inmunoprecipitación de ADN metilado o meetup. Un método utilizado para aislar específicamente ADN metilado de manera imparcial. La metilación del ADN en mamíferos se caracteriza por la adición de un grupo metilo a la posición C cinco de la citosina.Cuando está presente en un dinucleótido CPG, constituye una marca epigenética reversible que desempeña un papel importante en el desarrollo normal, así como en varios procesos de enfermedades. Las funciones normales de la metilación del ADN incluyen la inactivación del cromosoma X en hembras, el silenciamiento de elementos repetitivos, la impronta genómica y el mantenimiento de la estabilidad genómica. También se ha demostrado que la metilación del ADN desempeña un papel en numerosas enfermedades, como el cáncer, el síndrome de Prader-Willi, el síndrome de ICF (inmunodeficiencia, inestabilidad centromérica y anomalías faciales) y el síndrome de Rett.En los cánceres, por ejemplo, la hipermetilación anormal y los promotores pueden provocar la silenciamiento de genes vitales supresores de tumores. Mientras que la hipometilación inadecuada provoca inestabilidad cromosómica y activación de oncogenes,

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El estándar de oro para el análisis de metilación del ADN es la secuencia del genoma de ADN de bisulfito de convertir. Este método tiene la ventaja de la mayor sensibilidad de la citosina en comparación con el 5-metilcitosina (5-MEC) de bisulfito de desaminación en condiciones ácidas. Citosinas no metiladas se puede distinguir de citosinas metiladas después de la amplificación por PCR del DNA genómico de destino.

La metilación del ADN: Bisulfito de modificación y análisis

Este video describe la técnica de dot-blot para determinar el nivel de metilación del ADN en condrocitos humanos in vitro a través de la transferencia de muestras de ADN en una membrana de nylon y la posterior visualización utilizando anticuerpos monoclonales. Esto ayuda a determinar el fenotipo de los condrocitos en varias etapas del cultivo.

Transferencia de puntos de 5-metilcitosina para determinar el grado de metilación del ADN

Secuenciación de bisulfito de representación reducida mejorada es un método para la preparación de bibliotecas de secuenciación para el análisis de metilación del ADN basado en la digestión de enzimas de restricción combinada con la conversión de bisulfito de citosina. Este protocolo requiere 50 ng de material de partida y produce datos de resolución de pares de bases en regiones genómicas ricas en GC.

Enhanced reducido Representación bisulfito secuenciación para la Evaluación de la metilación del ADN en la Resolución Base Par

La metilación del ADN es capaz de mantener niveles estables de expresión génica, así como de permitir cambios dinámicos en la expresión génica en respuesta a una variedad de estímulos. Detallamos técnicas que permiten el estudio de los cambios específicos de genes en la metilación del ADN y el efecto de estos cambios en la expresión génica.

La correlación de Gene-específica de ADN de metilación cambios con la expresión y actividad transcripcional de astrocíticos<em&gt; KCNJ10</em&gt; (Kir4.1)

Aquí se presenta un protocolo para investigar la metilación del ADN del genoma de ancho en estudios de cribado de pacientes clínicos a gran escala utilizando la secuenciación Metil-unión de captura de ADN (SEC-MBDCap o MBD-ss) la tecnología y el análisis de tuberías bioinformática posteriores.

Secuenciación de captura de ADN de unión a metil-para tejidos del paciente

Este trabajo describe un optimizado metil-CpG vinculante dominio de secuenciación de protocolo y una tubería computacional para identificar diferencial metilado CpG-ricos en regiones crónicas linfocítica leucemia (CLL) pacientes.

Análisis de metilación de ADN completo usando un método de captura de dominio de unión a metil-CpG en pacientes con leucemia linfocítica crónica

Este trabajo describe un protocolo para la inmunoprecipitación de la cromatina (ChIP) utilizando una línea de células T de ratón madura. Este protocolo es adecuado para investigar la distribución de marcas de histonas específicas en sitios específicos del promotor o en todo el genoma.

Inmunoprecipitación de cromatina (ChIP) en líneas de células T de ratón

Presentamos un método eficaz y reproducible para aislar las células progenitoras neurales de tejido cerebral embrionario y postnatal de inmunoprecipitación de cromatina (ChIP) de la histona 3 lisina 79 dimetilación (H3K79me2) - una marca de histona situada dentro de la cultura el dominio globular de la histona 3.

Aislamiento y cultivo de progenitores neuronales seguido por inmunoprecipitación de cromatina de histona 3 lisina 79 dimetilación marca

La inmunoprecipitación por cromatina (ChIP) es una poderosa herramienta para comprender los mecanismos moleculares de la regulación genética. Sin embargo, el método implica dificultades para obtener fragmentación de cromatina reproducible mediante cizallamiento mecánico. Aquí, proporcionamos un protocolo mejorado para un ensayo ChIP usando digestión enzimática.

Ensayo de inmunoprecipitación de cromatina utilizando nucleasas microcócticas en células de mamíferos

El ensayo de inmunoprecipitación de ARN metilado es un método basado en anticuerpos utilizado para enriquecer fragmentos de ARN metilados. Junto con la secuenciación profunda, conduce a la identificación de transcripciones que llevan la modificación m5C.

Ensayo de inmunoprecipitación de ARN metilado para estudiar la modificación m5C en Arabidopsis

Aprende el protocolo MeDIP para aislar ADN metilado de forma imparcial usando anticuerpos anti-5mC. Esta técnica de epigenética permite estudiar patrones de metilación en cáncer y desarrollo.

Inmunoprecipitación de ADN metilado

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