Summary
다음 프로토콜은 녹아웃 완료 세럼 교체 피더 - 프리 미디어 (KSR - FF)를 사용하여 피더 무료 문화 인간 유도 Pluripotent 줄기 (IPS) 셀을 적응을위한 지침을 제공합니다. 일단 지속적인 유지 보수를위한 지침도 제공되며, 적응.
Abstract
인간과 마우스 섬유아 세포가 배아 줄기 세포에 상당히 유사 자질을 가진 1-3 IPS 세포를 생성하는 재설정 될 수 있다고 2006 년에 발견은 약물 발견, 세포 치료와 기초 연구를위한 pluripotent 세포의 중요한 새로운 소스를 만들었습니다.
GIBCO 미디어 및 시약 년 동안 pluripotent 줄기 세포 연구의 선두에있다. DMEM가 마네 세럼 교체와 보충 마네는 배아 줄기 세포의 성장과 지금은 IPS 세포 배양 3-9위한 최고의 매체입니다. 이 황금 표준 미디어 시스템은 이제 마네의 SR 성장 팩터 칵테일의 추가와 함께 피더 무료 문화 사용할 수 있습니다.
전통적인 인간의 ES와 IPS의 세포 배양 방법은 마우 스나 인간 fibroblast 피더 레이어의 사용 또는 피더 - 에어컨 매체를 필요로합니다. 이러한 문화 방법은 규모에 노동 집약, 하드 있으며, 그것은 정의되지 않은 상황으로 인해 undifferentiated 허리의 세포를 유지하기 어렵습니다. Invitrogen은 여전히 마네의 SR의 사용을 유지하면서 당신이 피더 - 무료로 전환 엉덩이 셀 문화를 쉽게하도록 마네의 SR 성장 팩터 칵테일을 개발했습니다.
Protocol
참고 : 무균 문화 조건을 유지하기 위해서는이 프로토콜의 절차를 모두 무균 실험실 방법을 사용하여 수행하고 층류 후드 아래에 실시하고 있습니다.
시작하기 전에, 모든 미디어는 37 equilibrated되도록 ° C 적절하게 기름.
Geltrex - 코팅 문화 요리를 준비
참고 : CELLstart 코팅 문화 요리의 사용을 위해 부록을 참조하십시오
- 해동 한 천천히 2-8에서 Geltrex (1 ML) ° C의 튜브 및 넉아웃 D-MEM/F-12 99 ML에 1:100 그것을 희석. 부드럽게 솔루션을 섞는다.
참고 : 일부 IPS 세포 라인은 최적의 성장을 위해 다른 Geltrex 희석이 필요할 수 있습니다. 대체 dilutions에 대한 부록을 참조하십시오. - Geltrex 솔루션 (35 - mm 요리 1 ML, 60 mm 요리 1.5 ML) 각 문화 요리의 전체 표면을 커버.
- 건조를 방지하고 37에서 1 시간 동안 요리를 부화 Parafilm 각 접시 ° C. 봉쇄해
참고 : 최대 1 개월이 지점에서 4 ° C에서 Geltrex - 코팅 문화 요리를 저장할 수 있습니다. 밖으로 건조에서 Geltrex을 방지하기 위해 Parafilm 각 요리를 밀봉합니다. - 이전 사용하기 층류 후드에 Geltrex - 코팅 요리를 전송하고는 실온 (약 1 시간)에 평형 수 있습니다.
완료 녹아웃의 SR 공급기 - 무료 매체를 준비
- 10 μg / ML 기본 FGF 솔루션 1 ML를 준비하려면, 무균 아래에 나열된 구성 요소를 섞는다. -20 ° C에서 나누어지는 솔루션 및 저장 최대 6 개월까지.
기본 FGF 10 μg D - PBS 990 μL 10% BSA 10 μL
참고 : BSA는 같은 농도에서 HSA 또는 넉아웃의 SR로 대체 수 있습니다. - 2 MG / ML Dispase 솔루션의 50 ML를 준비하려면, 무균 아래에 나열된 구성 요소를 섞는다. 4 솔루션 및 저장 ° C 최대 2 주 동안을 소독 필터.
Dispase 100 MG D - PBS 50 ML - 전체 녹아웃의 SR 피더 - 무료 (KSR - FF) 매체 무균 아래 표에 나와있는 구성 요소를 결합 100 ML를 준비합니다.
최대 일주일을 위해 당신은 2-8 ° C에서 KSR - FF 매체를 저장할 수 있습니다.구성 요소 주식 농도 최종 농도 음량 마네 DMEM/F12 (Cat. 번호. 12660-012) - 1X 76.8 ML GlutaMAX - I (Cat. 번호 35050-061) 200 MM 2 MM 1 ML 녹아웃 SR (Cat. 번호. 10828-028) - 20% 20 ML 녹아웃 SR - GFC (Cat. 번호. A10580 - 01) 50X 1X 2 ML bFGF (Cat. 번호. PHG0024) 10 μg / ML 20 NG / ML 200 μL - 온도와 가스의 전체 매체를 미리 equilibrating 바로 전에 무균 0.1 MM 최종 농도 2 메르 캅 토 에탄올의 필요한 볼륨 (55 MM 주식 농도)을 추가합니다. 예를 들어, KSR - FF 매체의 100 ML를 준비하는 것은 2 - 메르 캅 토 에탄올 (1:550 희석) 또는 55 mm의 182 μL를 추가, 2 - 메르 캅 토 에탄올이에 대한 1X 완료 매체에 추가 2-8 ° C에서 저장될 수 있습니다 최대 일주일.
KSR - FF 중간에 iPSCs를 적응
- 시작하기 전에, 후드에서 상온에 Geltrex 코팅 요리를 미리 평형.
- 문화 MEF 피더 세포에서 iPSCs 그들은 70-80%의 합류 때까지. MEF 기반 문화 프로토콜에 대한 GIBCO 마우스 배아의 Fibroblast 수첩을 참조하십시오. 37 ° C의 물을 욕조에 Dispase 사전 따뜻한 필요한 볼륨. 필요한 볼륨에 대한 자세한 내용은 아래의 표 1을 참조하십시오.
- 37 ° C의 물 목욕 for15 분에 KSR - FF의 필요한 볼륨을 사전에이 - 평형. 필요한 볼륨에 대한 자세한 내용은 아래의 표 1을 참조하십시오.
- 문화 요리에서 매체를 기음과 Dispase 솔루션의 적절한 금액을 추가합니다. 3~5분에 대해 37 ° C에서 요리를 품다.
- 각 문화 선박에서 Dispase 솔루션을 기음과 D - PBS (2 3 회)로 부드럽게 MEF의 피더 세포를 씻어.
- 각 문화 선박을 완료 마네의 SR 매체의 적절한 금액을 추가합니다. 부드럽게 문화 선박의 표면에서 세포를 긁어 셀 스크레이퍼 또는 5 ML의 피펫을 사용합니다.
참고 : 하드 IP를 적응 세포 라인에 대한 대체 적응 프로토콜에 대한 부록을 참조하십시오, - 별도의 15 ML 원뿔 튜브에 각 문화 접시에서 세포 현탁액를 수집합니다. 전체 녹아웃의 SR 매체의 적절한 금액을 각 문화 선박 린스, 그리고 D - PBS는 세포 현탁액을 포함 15 ML 원뿔 튜브로 매체를 씻어 추가합니다. 하나의 세포로 세포 대단히 짧은 시간을 휴식하지 않는주의
- 펠렛 iPSCs 5 분 200 XG에 15 ML 원뿔 튜브를 원심 분리기.
- iPSC 펠렛에서 뜨는을 대기음. 분할 비율 (표 1)에 따라 KSR - FF 매체의 적절한 금액 펠렛을 Resuspend. 작은 대단히 짧은 시간이 표면에 잘 부착하지 않기 때문에, 작은 크기로 휴대 대단히 짧은 시간을 아프게하지 마십시오.
참고 : iPSCs이 KSR - FF 매체에 iPSC MEF 문화 미디엄에서 직접 passaged 후에 우리는 처음 3 구절에 대한 1시 2분의 분할 비율을 권장합니다. 일반적으로 1시 3분과 1시 5분 사이의 분할 비율이 적합하지만, 1시 2분에서 passaging 것은 피더 무료 문화에 적응 할 때 필요한 세포의 높은 밀도를 보장합니다. - 이전 Geltrex 코팅 요리 iPSCs을 도금하는 사전 코팅 접시에서 잔여 Geltrex 솔루션을 기음, 천천히 각 문화 요리에 세포 현탁액의 적절한 금액을 추가합니다. 참고 : 도금하기 전에 요리를 씻어하지 않습니다.
- 접시의 표면에 걸쳐 세포를 해산하는쪽으로 여러 번 앞뒤로 측면 문화 요리를 이동합니다. 부드럽게 공기 4-6%의 CO 2의 humidified 분위기 37 ° C 배양기에서 배양 접시를 놓습니다. KSR - FF로 보낸 매체 매일 교체합니다.
KSR - FF을 사용하여 Passaging 인간의 IPS 세포
- 세포 70-80% 합류하고 subcultured 준비가되었는지 확인하기 위해 현미경으로 전체 KSR - FF의 성장 인간 iPSCs을 준수. 1 그림을 참조하십시오.
참고 : 식민지가 너무 밀도 또는 너무 커질 경우, 증가 차별이 발생합니다. - 잘라와 문화를 passaging하기 전에 어떠한 차별 iPSC 식민지를 제거합니다.
- 37 ° C의 물을 욕조에 Dispase 사전 따뜻한 필요한 볼륨. 필요한 볼륨에 대한 자세한 내용은 아래의 표 1을 참조하십시오.
- 37 ° C의 물 목욕 for15 분에 KSR - FF의 필요한 볼륨을 사전에이 - 평형. 필요한 볼륨에 대한 자세한 내용은 아래의 표 1을 참조하십시오.
- 피펫을 사용하여 문화 선박에서 보낸 매체를 대기음하고, D - PBS로 두 번 세포를 씻어.
- 부드럽게 문화 선박 (예, 60 mm 문화 요리 당 Dispase 솔루션 1 ML)로 사전 예열 Dispase 솔루션을 추가합니다. 코트 전체 세포 표면에 소용돌이 문화 우주선합니다.
- 3 분 37 ° C에서 문화 함선을 품어.
- 인큐베이터에서 혈관을 제거 Dispase 솔루션을 기음, 부드럽게 D - PBS로 세포를 씻어.
- 부드럽게 세포 스크레이퍼를 사용하여 문화 접시의 표면에서 세포를 긁어 및 살균 15mL 원심 튜브에 세포를 전송합니다.
- 부드럽게 분리하지 않은 세포를 "해제 분사.", KSR - FF로 두 번 문화 접시를 씻어 수영장은 15mL 튜브에 세포와 매체를 씻어.
- 상온에서 펠릿 세포 5 분 200 XG에서 튜브를 원심 분리기.
- 조심스럽게 세포 펠렛을 방해하지 않고 표면에 뜨는를 대기음하고 폐기.
- 부드럽게 튜브가 완전히 튜브 바닥에서 세포 펠렛을 이동시키다을 버려.
- 부드럽게 5mL serological 피펫을 사용하여 사전 equilibrated KSR - FF의 세포를 resuspend. 씹다하지 마십시오. 참고 : 부드럽게 손상을 방지하기 위해 무력을 사용하지 않고 세포를 resuspend하는 단계에서 중요한 그것입니다.
- 원하는 분할 비율에 신선한 60 mm Geltrex - 코팅 접시에 세포를 전송하고 표면을 가로질러 세포를 해산하는쪽으로 여러 번 앞뒤로 측면 문화 요리 이동합니다.
- 의 humidified 분위기 37 ° C 배양기에서 배양 접시를 플레이스4~6%는 공중에 2 CO.
- 그 다음날, 부드럽게 세포 파편을 제거하는 KSR - FF로 보낸 매체를 대체합니다. 이후 매일 지출 매체를 교체합니다. IPS 세포는 매일 그들로 (약 매 4~5일) 필요한 통로 관찰. Passaging은 세포가 70~80%의 합류에 도달했을 때 권장합니다. IPS 세포 cryopreservation 융해 들어, "완료 마네 세럼 교체 피더 - 무료 매체를 사용하여 Cryopreserving 인적 IPS 세포 복구하기"라는 제목의 프로토콜을 참조하십시오.
예상 결과
그림 1. 아래의 위상 콘트라스트 이미지는 완전 넉아웃 세럼 교체 피더 - 무료 매체를 사용하여 Geltrex - 코팅 문화 요리에 성장 iPSCs를 보여줍니다. iPSCs 큰 핵 및 세포질 부족한 특징 hESCs에 형태학 유사한 나타냅니다. (40x 확대)
| 구성 요소 | 35mm 디시 | 60mm 디시 | 100mm 디시 |
| 완료 녹아웃 SR 미디어 | 2 ML | 4 ML | 10 ML |
| Geltrex 솔루션 | 1 ML | 1.5 ML | 4-5 ML |
| Dispase | 0.5 ML | 1 ML | 3-4 ML |
| rinsing을위한 D - PBS | 2 ML | 4 ML | 10 ML |
표 1. 추천 볼륨
Disclosures
이 문서의 저자는이 문서에서 사용되는 시약 및 악기를 생산하는 생명 기술에 의해 고용됩니다.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Knockout DMEM/F12 | Cat. no. 12660-012 | Note: see appendix for the use of alternative DMEM products | |
| GlutaMAX-I | Cat. No. 35050-061 | ||
| KnockOut Serum Replacement | KnockOut SR, Cat. no. 10828-028 | ||
| KnockOut Serum Replacement Growth Factor Cocktail | KnockOut SR-GFC, Cat. no. A10580-01 | ||
| FGF-basic, human recombinant protein, 10 μg | bFGF, Cat. no. PHG0024 | Note: see appendix for alternative bFGF pack sizes. | |
| 2-Mercapt–thanol | Cat. no. 21985-023 | ||
| Dispase | Cat. no. 17105-041 | Note: see appendix for alternative passaging methods. | |
| Geltrex hESC-Qualified Reduced Growth Factor Basement Matrix, 1 mL | Cat. no. A10480-01 | ||
| Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline (D-PBS) without calcium and magnesium | Cat. no. 14190-144 | ||
| Sterile Tissue Culture Hood | |||
| Incubator set at 37°C | |||
| Pipette-Aid | |||
| Water Bath set at 37°C | |||
| Sterile serological pipettes (5 mL, 10 mL) | |||
| Centrifuge | |||
| 15 mL centrifuge tubes | |||
| 60mm Tissue Culture treated dishes |
References
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